Summary
Ein 3D-System zur Kultivierung menschlichen Chondrozyten in ein hohes Maß an Gelenkflüssigkeit beschrieben. Synovialflüssigkeit spiegelt den natürlichen Mikroumgebung für Gelenkknorpel, und kann leicht erreicht werden und gespeichert werden. Dieses System kann daher für die Untersuchung Knorpelregeneration und zum Screening von Therapeutika zur Behandlung von Arthritis verwendet werden.
Abstract
Knorpelabbau ist ein zentrales pathologisches Merkmal der Arthrose, eine führende Ursache von Behinderungen in den USA. Knorpel in den Erwachsenen nicht sehr effizient regenerieren in vivo, und als Ergebnis führt Arthrose, Knorpel Verlust irreversibel und wird von chronischen Schmerzen und Unbeweglichkeit 1,2 begleitet. Cartilage Tissue Engineering bietet vielversprechende Möglichkeiten, sich zu regenerieren und wiederherstellen Gewebe-Funktion. Diese Technologie umfasst in der Regel Aussaat Chondrozyten in natürlichen oder synthetischen Gerüsten und Kultivieren der resultierenden 3D in einem ausgewogenen Medium bauen über einen Zeitraum von Zeit, mit dem Ziel der Technik ein biochemisch und biomechanisch ausgereifte Gewebe, das in eine Fehlstelle in vivo 3-6 können transplantiert werden . Das Erreichen einer optimalen Voraussetzung für Wachstum und Chondrozyten-Matrix Ablagerung ist für den Erfolg von Knorpel Tissue Engineering unverzichtbar.
In der nativen Gelenkspalt, Knorpel an der articdere Oberfläche des Knochens ist in Gelenkflüssigkeit gebadet. Diese klare und viskose Flüssigkeit liefert Nährstoffe an die avaskuläre Gelenkknorpel und enthält Wachstumsfaktoren, Zytokine und Enzyme, die wichtig sind für Chondrozytenmetabolismus 7,8. Darüber hinaus erleichtert Synovialflüssigkeit reibungsarme Bewegung zwischen knorpeligen Oberflächen hauptsächlich durch Sekretion zwei Hauptkomponenten, Hyaluronsäure und lubricin 9 10. Im Gegensatz dazu ist Gewebezüchtung Knorpel meist in künstlichen Medien kultiviert. Während dieser Medien eher in der Lage sind, mehr definierten Bedingungen für das Studium Chondrozytenmetabolismus bieten, Synovialflüssigkeit am besten reflektiert die natürliche Umwelt, von denen Chondrozyten wohnen in.
In der Tat hat Synovialflüssigkeit den Vorteil, leicht zu beschaffen und zu speichern, und können oft regelmäßig durch den Körper wieder aufgefüllt werden. Mehrere Gruppen haben das Kulturmedium mit Gelenkflüssigkeit ergänzt wachsende Mensch, Rind, Kaninchen und Hund chondrocytes, aber meist nur geringe Mengen von Gelenkflüssigkeit (unter 20%) 11-25 verwendet. Während Huhn, Pferd und Mensch Chondrozyten in das Medium mit höherer Prozentsatz der Gelenkflüssigkeit gezüchtet haben, wurden diese Kultur Systemen zweidimensionalen 26-28. Hier präsentieren wir unsere Methode der Züchtung menschlichen Chondrozyten in ein 3D-System mit einem hohen Anteil von Gelenkflüssigkeit (bis zu 100%) über einen Zeitraum von 21 Tagen. Dabei überwanden wir eine große Hürde durch die hohe Viskosität der Gelenkflüssigkeit vor. Dieses System bietet die Möglichkeit des Studiums humanen Chondrozyten in Synovialflüssigkeit in einer 3D-Umgebung, die weiter mit zwei weiteren wichtigen Faktoren (Sauerstoff-Partialdruck und mechanischer Belastung) 29,30, dass die natürliche Umwelt darstellen für Knorpel, die natürliche Milieu für imitieren können kombiniert werden Knorpel Wachstum. Darüber hinaus kann dieses System auch für die Bestimmung von Gelenkflüssigkeit Aktivität auf Chondrozyten verwendet werden und bieten eine Plattform für die EntwicklungKnorpelregeneration Technologien und therapeutische Optionen für Arthritis.
Protocol
Ein 3D-System zur Kultivierung von menschlichen Chondrozyten in der Synovialflüssigkeit
In dieser Arbeit haben wir die menschliche Chondrozyten in Alginatkügelchen mit einem modifizierten Herstellung-schlug Encapsulation Protokoll (Lonza, und 31) gekapselt. Mit Hilfe dieser 3D-Konstrukte, haben wir ein System zur Kultivierung von Zellen in einem Kulturmedium, das abwechslungsreiche Prozentsätze der menschlichen Synovialflüssigkeit entwickelt und bewertet diese 3D-Konstrukte für die Knorpel-Genexpression.
1. Bereiten menschlichen Chondrozyten (HAC) für die dreidimensionale (3D)-Kapselung
- Tauwetter ein Fläschchen (1 ml) des menschlichen Chondrozyten (HAC) (Lonza) (Passage 2) in 37 ° C Wasserbad für 1 min.
- Mix mit 1 ml Chondrozyten Nährmedien (Lonza) und Zentrifuge bei 3000 rpm für 3-5 min, um die Zellen zu sammeln. Überstand verwerfen.
- Resuspendieren Zellpellet in Chondrozyten Nährmedien (Lonza).
- Platte von Zellen in einer 10 cm GewebeKultur-Platte (BD Biosciences), und die Kultur in Chondrozyten Nährmedien (Lonza), bis die Zellen konfluent. HAC sollte in einem Durchgang Zahl nicht höher als 3 oder 4 (P3 oder P4) verwendet werden.
- Wash HAC auf dem Teller mit 155mm NaCl anstelle des Standard-PBS, durch trypsinzation gefolgt, um Zellen für die Alginat-Bead-Kapselung zu sammeln. Sobald Zellen sind freistehend, Spin-down der Zellen bei 3000rpm für 5min. Die Zellen sind nun bereit für 3D-Kapselung.
2. Encapsulate HAC in 3D-Perlen
Resuspendieren HAC in 1,2% Alginat-Lösung (Sigma) in einer Dichte von 8x10 5 Zellen / ml. Die Zellzahlen wurden vor der Einkapselung, bestimmt mit einem Standard-Zell-Zähler. Es ist sehr wichtig, gut zu mischen, um eine gleichmäßige Verteilung der Zellen in die Perlen zu sichern.
- Pipette die HAC / Alginat-Lösung Mischung in eine 12 ml Spritze an einer 22-Gauge-Nadel (Tyco Healthcare, Inc.).
- Inzwischen bereiten ein 50 mL Becherglas mit 102 mM CaCl 2 bei einem Volumen 5 Mal, dass der HAC / aginate Lösung. Platzieren Sie einen Rührstab in das Becherglas und rühren die 102 mM CaCl 2-Lösung langsam (bei ca. 150 rpm).
- Halten Sie die Spritze Spitze ca. 6 cm über der Oberfläche der CaCl 2-Lösung und fügen Sie den HAC / Alginat-Gemisch in die CaCl 2-Lösung getropft. Im Allgemeinen sind die daraus resultierenden Alginatkügelchen 2mm im Durchmesser mit einer Verkapselung Dichte von etwa 10 4 Zellen / Perle. Hinweis: Die Höhe der Spritze über die CaCl 2-Lösung ist wichtig. Kürzere Strecke wird in Tropfenform statt kugelförmige Perlen geformt führen, wodurch ungleichmäßige mechanische Integrität und Verkapselung von Zellen.
- Lassen Sie die Kugeln in die CaCl 2-Lösung für 20-25 min rühren. Während andere Alginat Kapselungsprotokolle eine viel kürzere Inkubationszeit von 10min zeigen, fanden wir, dass längere Inkubationszeit mit der CaCl 2-Lösung die Integrität der verbessert werdenAnzeigen.
- Entfernen Sie die CaCl 2-Lösung, waschen Sie die Perlen 2-3 mal in 2-3 Volumina NaCl, und dann noch einmal in die Differenzierung der Chondrozyten Medium (Lonza). Während andere Alginat Perle Kapselung Protokolle mit einzubeziehen einen Filter für die oben genannten Waschverfahren, fanden wir, dass die Alginatkügelchen oft gefangen werden in den Filter und austrocknen, wodurch die Effizienz der Kapselung. Wir fanden es am effizientesten, damit die Perlen auf den Boden des Bechers vor der Entsorgung regeln die Lösung.
- Verwenden Sie ein Standard-Spatel auf die Perlen in Kulturschalen übertragen. Wir in der Regel Kultur 12 Perlen pro 3 cm auch für 2 Tage in Chondrozyten Wachstumsmedium zu ermöglichen Chondrozyten auf die Verkapselung Prozess in dem Medium, den sie vor der Umstellung auf die Differenzierung der Chondrozyten Medium (Lonza) mit Gelenkflüssigkeit angebaut wurden anzupassen.
3. Kultur Chondrozyten in Synovialflüssigkeit Kulturmedium
- Frische Gelenkflüssigkeit kann aus einem o erhaltenutpatient Klinik (Wir erhalten Synovialflüssigkeit von der Tufts Medical Center). Die Gelenkflüssigkeit kann in 15ml Falcon-Röhrchen an das Labor übertragen werden, und sofort bei 3000 rpm für 15 Minuten zentrifugiert, um Zelltrümmer zu entfernen. Aliquot zellfreien Synovialflüssigkeit in 1,5 ml Reaktionsgefäße, um zu vermeiden wiederholtes Einfrieren und Auftauen. Überstand kann bei -80 ° C bis zur Verwendung gelagert werden.
- Vor der Kultivierung Mix der Gelenkflüssigkeit mit Chondrozyten-Differenzierung Medium (CDM, Lonza) bei unterschiedlichen Volumenverhältnisse, mit einer konstanten Konzentration von 100 mM Ascorbinsäure und 9 mM CaCl 2 (diese Spur von CaCl 2 ist es, die Integrität der Alginat sorgen Perlen).
- Halten Sie die Platte auf einem Schaukelstuhl-Plattform in einem 37 ° C Inkubator (rocking-Frequenz: etwa 75 mal / min), um Nährstoffe Verteilung innerhalb der Alginatkügelchen helfen, und zur Verringerung der Verklumpung der Perlen. Dies ist besonders wichtig, da wir diese Kultur Chondrozyten über einen längeren Zeitraum (bis zu 4 Wochen). Note: Während Chondrozyten Wachstum und die Differenzierung Medien (Lonza) zwei häufig verwendete Antibiotika Gentamycin und Amphotericin enthalten, haben wir nicht alle Antibiotika zu ergänzen, wenn wir unterschiedliche Anteil der Synovialflüssigkeit verwendet für Chondrozyten kultiviert. Keine Kontamination wurde niemals beobachtet.
- Ändern Medien Mischungen alle 2-3 Tage. Die Viskosität der Gelenkflüssigkeit hat eine wichtige Hürde in Kultivierung Chondrozyten in Alginatkügelchen während der langfristigen Kulturen eingekapselt worden. Wir fanden es am effektivsten, Synovialflüssigkeit-ergänzt Medium mit 102mm CaCl 2 (50% V / V), die verstärkt auch die Integrität der Alginatkügelchen verdünnen. Auf diese Weise kann das Medium langsam mit einer Pipette entfernt werden, ohne Beschädigung der Perlen.
4. Ernte-HAC in Alginatkügelchen zur Genexpressionsanalyse
Besondere Vorsicht ist bei der Ernte der HAC von der Alginatkügelchen zur Genexpressionsanalyse werden.
- Waschen Sie die Alginatkügelchen 3 Times in 102 mM CaCl 2 für ca. 5 min jeder Zeit.
- Rufen Sie die Chondrozyten, indem 55 mM NaCitrate bei einem Volumen 4-5 mal, dass der Perlen. Es ist wichtig, dass die Alginatkügelchen total in die NaCitrate Lösung eingetaucht. Shake oder Rock für 20-30 min.
- Spin down den Zellen und den Überstand verwerfen.
- Für die RT-PCR-Analyse, Zellpellet in Zell-Lyse-Puffer (Qiagen RNA Isolation Kit), und fahren Sie mit RNA Aufreinigung.
5. Fix HAC in Alginatkügelchen für die histologische Analyse
Besondere Sorgfalt ist darauf zu achten, die HAC aus dem 3D-Perlen für die histologische Analyse der Ernte werden.
- Waschen Sie die Alginatkügelchen 3 mal in 102 mM CaCl 2 für ca. 5 min jeder Zeit. Um das Gerät vollständig abzuwaschen das zähflüssige Gelenkschmiere, fanden wir es am effektivsten, mit Chondrozyten-Differenzierung Medium (Lonza) über Nacht zu waschen, rocking in einem 37 ° C Inkubator (rocking-Frequenz: etwa 75 Mals / min). Die Chondrozyten-Wachstumsmedium wurde verwendet, um das Überleben der Chondrozyten in dieser verlängerten waschen zu gewährleisten und maximale Durchdringung des Fixiermittels zu ermöglichen.
- Fix die Perlen in 70% Ethanol über Nacht, und fahren Sie mit histologische Analyse. Um DAPI-Färbung, inkubieren Alginatkügelchen mit DAPI-Lösung (500ng/ml) für 1 Stunde unter leichtem Schütteln, und waschen für 3-mal mit 102mm CaCl 2 für je 15 min Zeit. Dapi Bilder können dann unter einem Fluoreszenzmikroskop betrachtet werden. Die Perlen können auch geschnitten für Alcianblau und H & E Färbung.
6. Repräsentative Ergebnisse
Unsere 3D-Kultivierung Methode für den menschlichen Chondrozyten in hohen Prozentsätzen der Gelenkflüssigkeit ist in der schematischen Darstellung in Abbildung 1 gezeigt, dargestellt. Nach humanen Chondrozyten in Alginatkügelchen verkapselt waren, durften sie in Medium mit unterschiedlichen Verhältnissen der Gelenkflüssigkeit ergänzt wachsen. Wegen der Viskosität der Gelenkflüssigkeit, ist es wichtig,Kultur Chondrozyten unter ständiger rocking Bedingungen verhindern das Verklumpen des Knorpels Konstrukte und um eine gleichmäßige Verteilung der Nährstoffe zu gewährleisten. Es ist auch wichtig, die Alginatkügelchen ausgiebig zu waschen, bevor das Abrufen der Chondrozyten, so dass die Festsetzung oder Lysepuffer können die Perlen zu durchdringen (Abb. 1). Hellfeld (BF) Bilder von Chondrozyten in der Alginat-Beads sind in Abb. 2 dargestellt. DAPI-Färbung wurde durchgeführt, um usniform Verteilung der Zellen innerhalb der Kügelchen (Abb. 2) zu bestätigen. Am Ende der 21-tägigen Kultur Periode wurde Genexpressionsanalyse mittels qRT-PCR durchgeführt. Die Referenz-Gen GAPDH wurde zur Normierung für alle PCRs verwendet, wie es war bestimmt einer der zuverlässigsten Hinweis Gene für qPCR-Analyse auf Chondrozyten 32 sein. Ein Beispiel ist in Abb. dargestellt. 3, wo wir analysierten die Ergebnisse von menschlichen Chondrozyten in der Synovialflüssigkeit von sechs Patienten mit Osteoarthritis zusammengefasst kultiviert. Im Einklang mit der Tatsache, dass die Chondrozyten ausLonza in 2D Kulturen, was zwangsläufig zu Entdifferenzierung 33 würde führen erweitert worden, fanden wir, dass Tag 0 Chondrozyten exprimiert minimal Ebenen der Knorpelmatrix Gene (Abb. 3). 3D-Kultivierung von Chondrozyten mit Chondrozyten-Differenzierung Medium (Lonza) oder Medium mit Gelenkflüssigkeit ergänzt deutlich erhöht Knorpel Genexpression von Kollagen, Aggrecan und MMP13, die Chondrozyten re-Differenzierung zeigt by Day 21 (Abb. 3) 34. Erhöhung des Anteils der Gelenkflüssigkeit in den Medien führte zu einem vergleichbaren Grad der Knorpelmatrix Marker Kollagen II und Aggrecan mRNA-Expression (Abb. 3a und 3b). Darüber hinaus Chondrozyten in 100% Synovialflüssigkeit kultivierten sogar zeigten eine Abnahme der Knorpel abbauende Enzym MMP13 mRNA-Expression als mit den kultivierten in Medium allein (Abb. 3c) verglichen. Interessanterweise ist die Expression von Zelltod Indikator Caspase 3 allmählich nahm mit zunehmendem Verhältnis von Gelenkflüssigkeit, was darauf hindeutet, dass synovial Flüssigkeit Kultivierung hat zu einer verminderten Apoptose Ebenen (Abb. 3D) geführt. Deshalb zeigen unsere Ergebnisse, dass Kultivierung menschlicher Chondrozyten in ein hohes Maß an Gelenkflüssigkeit in einer 3D-Umgebung eine praktikable Technologie ist.
Tabellen und Abbildungen
Abbildung 1. Schematische Darstellung des Verfahrens zur Kultur menschlichen Chondrozyten in hohen Prozentsätzen der Gelenkflüssigkeit in 3D Alginatkügelchen. Erstens sind Chondrozyten und Alginat-Lösung gemischt. Beim Auftragen tropfenweise zu der CaCl 2-Lösung werden Chondrozyten innerhalb der vernetzten Ca-Alginat-Hydrogel-Kügelchen immobilisiert. Diese 3D-Konstrukte werden dann in der Chondrozyten-Differenzierung Medium (Lonza) mit unterschiedlichen Verhältnissen des menschlichen Synovialflüssigkeit kultiviert. Nach 21 Tagen der Kultivierung unter einem Schaukelstuhl Zustand sind Alginatkügelchen enthaltenden Zellen intensiv, wonach die Zellen für die Gen abgerufen werden gewaschenExpressions-Analyse.
Abbildung 2. Hellfeld (BF) und DAPI Bilder von menschlichen Chondrozyten gekapselt Kulturen mit 0%, 30%, 50%, 70% und 100% Synovialflüssigkeit. Chondrozyten wurden kugelförmig in alle Kulturbedingungen. Bilder von Hellfeld (BF) und DAPI wurden überlagert, um die Lage und Verteilung der Chondrozyten zu bestätigen. Intarsien, vergrößerten Bildern. Pfeilspitzen, Kolokalisation von Chondrozyten in BF und DAPI-Färbung Bilder.
Abbildung 3. QRT-PCR-Analyse von verkapselten menschlichen Chondrozyten am Tag 0 (D0) ein nach 21 Tagen der Kultivierung (D21) in Medium mit unterschiedlichen Verhältnissen der Gelenkflüssigkeit (SF) (0%, 30%, 50%, 70 ergänzt % und 100%). Die Ergebnisse von vier unabhängigen Proben werden hier gezeigt. GAPDH wurde als interne Referenz für alle PCRs verwendet.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
In diesem Bericht haben wir eine Methode, die für die Kultivierung humaner Chondrozyten ermöglicht in einer 3D-Umgebung in Medium, das hohe Konzentrationen von menschlichen Gelenkflüssigkeit enthält. Synovialflüssigkeit ist eine der wichtigsten Komponenten, die die natürliche Umwelt darstellen in der Gelenkpfanne, wo Chondrozyten befinden. Allerdings hat die Viskosität der Gelenkflüssigkeit eine große Herausforderung für die dreidimensionale langfristige Kultivierung von Chondrozyten wurde. Zur Überwindung der Herausforderung zur Erhaltung auch Nährstoff-Verteilung in einer 3D-Konstruktion in einer zähflüssigen Umgebung und zu verhindern, Aggregation, legten wir Knorpel-Konstrukte unter ständiger Bewegung auf dem Schüttler. Zur Verbesserung der strukturellen Integrität des Knorpels Konstrukte, modifizierten wir das traditionelle Verfahren der Aussaat Chondrozyten in einer Alginat-Hydrogel einschließlich der Optimierung der Länge der Zeit für Wulstbildung und Medien wechselnden Verfahren 31. Solche Verfahren sind wichtig, wennKnorpel-Konstrukte sind in der viskosen Synovialflüssigkeit während der langfristigen Kulturen behandelt.
Wir glauben, diese Methode wird uns erlauben, die Biologie des menschlichen Chondrozyten in ihrer natürlichen milleu, der Gelenkflüssigkeit zu studieren. Eine mögliche Sorge ist, dass Reagenz Diffusion nicht ideal für Chondrozyten in Alginatkügelchen gekapselt und aufgewachsen in einer zähflüssigen Umgebung. So für die Untersuchung der Wirkung bestimmter Reagenzien entwickelt, Knorpel, kann eine bessere Diffusion durch eine Verringerung der Größe der Alginatkügelchen und durch Perfusion Systeme Reagenz Verteilung in Synovialflüssigkeit erleichtern erreicht werden. Während unser repräsentatives Ergebnis von Züchtung normalen humanen Chondrozyten in der Synovialflüssigkeit von Patienten mit Osteoarthritis abgeleitet gewonnen wurde, glauben wir, diese Methode extrapoliert werden, um Gelenkflüssigkeit aus einem ansonsten gesunden Menschen oder andere gesunde Wirbeltieren zu nutzen. Da Synovialflüssigkeit Aktivität kann auf die kombinatorische Aktivitäten korreliert werdenVerbindungen von vielen biochemischen Faktoren in der Flüssigkeit vorhanden, kann der Nettoeffekt der Gelenkflüssigkeit auf Chondrozyten-Genexpression in unser System mit der Schwere der Erkrankung korreliert werden und wird letztlich helfen uns, die intraartikulären Milieu vor und nach der Behandlung zu verstehen. Darüber hinaus kann unsere Methode auch auf die Möglichkeit der Verwendung von patienteneigenen Synovialflüssigkeit zur Kultivierung von autologen Chondrozyten des Gelenkknorpels, die individuell zugeschnitten ist regenerieren führen. Zu diesem Zweck kann dieses System einen Einblick in das Studium der biomechanischen Kräfte durch Synovialflüssigkeit auf technisch Knorpel sowie 35 zu ermöglichen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Wir haben nichts zu offenbaren.
Acknowledgments
Wir möchten Robin Nye (Tufts Medical Center), Tomoya Uchimura und Dana Cairns (Tufts University) für die Bereitstellung von Hilfe bei der Gelenkflüssigkeit Lagerung und Zentrifugation danken. Diese Arbeit wurde von den NIH (1R01AR059106-01A1) für LZ finanziert
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Table of specific reagents and equipment: | |||
| Name of the Reagent | Company | Catalogue Number | Comments |
| Alginate (Alginic Acid sodium salt) | Sigma-Aldrich | A2158-250G | 2.4% solution stored at 40°C |
| Calcium Chloride Dihydrate, Granular | JT Baker | A19339 | |
| Chondrogenic Growth media | Lonza Inc. | CC-3156 (base media) | |
| CC-4409 (supplement) | |||
| Chondrogenic Differentiation Media | Lonza Inc. | CC-3226 (base media) | |
| CC-4408 (supplement) | |||
| Human articular chondrocytes | Lonza Inc. | CC-2550 | |
| Dapi (4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) | Sigma-Aldrich | D9542 | |
| RNeasy mini kit (for RNA extraction) | Qiagen | 74104 | |
| PCR reagents: SYBR-green | Quanta Biosciences | 95053-500 | |
| 12 ml syringe | Tyco Healthcare, Covidien | 512852 | |
| 22-Gague Hypodermic Needle | Tyco Healthcare, Covidien | 8881 | |
| Microscope | Olympus Corporation | IX71 | |
| Platform rocker | Thermo Fisher Scientific, Inc. | Vari-mix | |
| Collagen IIa-forward | 5’-TTC ATC CCA CCC TCT CAC AGT-3’ | ||
| Collagen IIa-reverse | 5’-CCTCTGCCTTGACCCGAA-3’ | ||
| MMP13-forward | 5’-TGT GCC CTT CTT CAC ACA GAC ACT-3’ | ||
| MMP13-reverse | 5’-GAG AGC AGA CTT TGA GTC ATT GCC-3’ | ||
| Caspase 3-forward | 5’-TCA TTA TTC AGG CCT GCC GTG GTA-3’ | ||
| Caspase 3-reverse | 5’-TGG ATG AAC CAG GAG CCA TCC TTT -3’ | ||
References
- Centers for Disease Control and P. Projected state-specific increases in self-reported doctor-diagnosed arthritis and arthritis-attributable activity limitations--United States, 2005-2030. MMWR. Morb. Mortal. Wkly. Rep. 56, 423-425 (2007).
- Theis, K. A., Murphy, L., Hootman, J. M., Helmick, C. G., Yelin, E. Prevalence and correlates of arthritis-attributable work limitation in the US population among persons ages 18-64: 2002 National Health Interview Survey Data. Arthritis Rheum. 57, 355-363 (2007).
- Chung, C., Burdick, J. A.
- Glowacki, J.
- Chokalingam, K., Hunter, S. A., Gooch, C. 3D-In vitro Effects of Compression and Time in Culture on Aggregate Modulus and on Gene Expression and Protein content of Collagen Type II in Murine Chondrocytes. Tissue Eng. Part A. , (2009).
- Butler, D. L., Goldstein, S. A., Guilak, F. Functional tissue engineering: the role of biomechanics. J. Biomech. Eng. 122, 570-575 (2000).
- Goldring, M. B., Goldring, S. R.
- Zvaifler, N. J., Firestein, G. S.
- Rhee, D. K., Marcelino, J., Baker, M. The secreted glycoprotein lubricin protects cartilage surfaces and inhibits synovial cell overgrowth. J. Clin. Invest. 115, 622-631 (2005).
- Campo, G. M., Avenoso, A., Nastasi, G. Hyaluronan reduces inflammation in experimental arthritis by modulating TLR-2 and TLR-4 cartilage expression. Biochim. Biophys. Acta. , (2011).
- van de Lest, C. H., van den Hoogen, B. M., van Weeren, P. R. Loading-induced changes in synovial fluid affect cartilage metabolism. Biorheology. 37, 45-55 (2000).
- Saxne, T., Heinegard, D., Wollheim, F. A. Human arthritic synovial fluid influences proteoglycan biosynthesis and degradation in organ culture of bovine nasal cartilage. Coll. Relat. Res. 8, 233-247 (1988).
- Lee, D. A., Salih, V., Stockton, E. F., Stanton, J. S., Bentley, G. Effect of normal synovial fluid on the metabolism of articular chondrocytes in vitro. Clin. Orthop. Relat. Res. , 228-238 (1997).
- Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Chondrocyte nonresponsiveness to insulin-like growth factor 1 in experimental arthritis. Arthritis Rheum. 32, 894-900 (1989).
- Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van Wyk, J. J., van de Putte, L. B. Insulin-like growth factor stimulation of chondrocyte proteoglycan synthesis by human synovial fluid. Arthritis Rheum. 32, 66-71 (1989).
- Joosten, L. A., Schalkwijk, J., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Chondrocyte unresponsiveness to insulin-like growth factor-1. A novel pathogenetic mechanisms for cartilage destruction in experimental arthritis. Agents Actions. 26, 193-195 (1989).
- Schuerwegh, A. J., Dombrecht, E. J., Stevens, W. J. Synovial fluid and peripheral blood immune complexes of patients with rheumatoid arthritis induce apoptosis in cytokine-activated chondrocytes. Rheumatol. Int. 27, 901-909 (2007).
- Hegewald, A. A., Ringe, J., Bartel, J. Hyaluronic acid and autologous synovial fluid induce chondrogenic differentiation of equine mesenchymal stem cells: a preliminary study. Tissue Cell. 36, 431-438 (2004).
- Xu, Q. R., Dong, Y. H., Chen, S. L., Bao, C. D., Du, H. Degeneration of normal articular cartilage induced by late phase osteoarthritic synovial fluid in beagle dogs. Tissue Cell. 41, 13-22 (2009).
- Kruger, J. P., Endres, M., Neumann, K., Haupl, T., Erggelet, C., Kaps, C. Chondrogenic differentiation of human subchondral progenitor cells is impaired by rheumatoid arthritis synovial fluid. J. Orthop. Res. 28, 819-827 (2010).
- Steinhagen, J., Bruns, J., Niggemeyer, O. Perfusion culture system: Synovial fibroblasts modulate articular chondrocyte matrix synthesis in vitro. Tissue Cell. 42, 151-157 (2010).
- Yang, K. G., Saris, D. B., Verbout, A. J., Creemers, L. B., Dhert, W. J. The effect of synovial fluid from injured knee joints on in vitro chondrogenesis. Tissue Eng. 12, 2957-2964 (2006).
- Skoog, V., Widenfalk, B., Ohlsen, L., Wasteson, A. The effect of growth factors and synovial fluid on chondrogenesis in perichondrium. Scand. J. Plast. Reconstr. Surg. Hand. Surg.. 24, 89-95 (1990).
- Nuver-Zwart, I., Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Effects of synovial fluid and synovial fluid cells on chondrocyte metabolism in short term tissue culture. J. Rheumatol. 15, 210-216 (1988).
- Beekhuizen, M., Bastiaansen-Jenniskens, Y. M., Koevoet, W. Osteoarthritic synovial tissue inhibits proteoglycan production in human osteoarthritic cartilage; Establishment and characterisation of a long-term coculture. Arthritis Rheum. , (2011).
- Rodrigo, J. J., Steadman, J. R., Syftestad, G., Benton, H., Silliman, J. Effects of human knee synovial fluid on chondrogenesis in vitro. Am. J. Knee. Surg. 8, 124-129 (1995).
- van den Hoogen, B. M., van de Lest, C. H., van Weeren, P. R. Loading-induced changes in synovial fluid affect cartilage metabolism. Br. J. Rheumatol. 37, 671-676 (1998).
- Webb, G. R., Westacott, C. I., Elson, C. J. Osteoarthritic synovial fluid and synovium supernatants up-regulate tumor necrosis factor receptors on human articular chondrocytes. Osteoarthritis Cartilage. 6, 167-176 (1998).
- Kook, S. H., Son, Y. O., Lee, K. Y. Hypoxia affects positively the proliferation of bovine satellite cells and their myogenic differentiation through up-regulation of MyoD. Cell. Biol. Int. 32, 871-878 (2008).
- Knobloch, T. J., Madhavan, S., Nam, J., Agarwal, S., Agarwal, S. Regulation of chondrocytic gene expression by biomechanical signals. Crit. Rev. Eukaryot. Gene. Expr. 18, 139-150 (2008).
- Guo, J. F., Jourdian, G. W., MacCallum, D. K. Culture and growth characteristics of chondrocytes encapsulated in alginate beads. Connect. Tissue. Res. 19, 277-297 (1989).
- Toegel, S., Huang, W., Piana, C. Selection of reliable reference genes for qPCR studies on chondroprotective action. BMC. Mol. Biol. 8, 13-13 (2007).
- Lin, Z., Fitzgerald, J. B., Xu, J. Gene expression profiles of human chondrocytes during passaged monolayer cultivation. J. Orthop. Res. 26, 1230-1237 (2008).
- Goessler, U. R., Bieback, K., Bugert, P. Human chondrocytes differentially express matrix modulators during in vitro expansion for tissue engineering. Int. J. Mol. Med. 16, 509-515 (2005).
- Anat, J. 121, 107-118 (1976).
