Summary

Использование Цистометрия в мелких грызунов: исследование мочевого пузыря Chemosensation

Published: August 21, 2012
doi:

Summary

Цистометрия является эффективным методом для оценки функции мочевого пузыря мелких животных<em> В естественных условиях</em>. Мочевой пузырь постоянно переплетаются со скоростью управляется через внутрипузырного катетер, в то время как мочеиспускательный канал остается свободным для мочеиспускания. Это позволяет для повторного наполнения и опорожнения мочевого пузыря, в то время как внутрипузырного давления и объема мочеиспускания записываются.

Abstract

<p class="jove_content"> Нижних мочевых путей (LUT) функционирует как динамический резервуар, который способен хранить мочу и эффективно изгнать его в удобное время. При хранении мочи, однако, мочевого пузыря подвергается в течение длительного времени, чтобы отходы. Действуя как жесткий барьер, эпителиальной выстилки LUT, уротелия, позволяет избежать повторного поглощения вредных веществ. Кроме того, вредные химические вещества стимулируют ноцицептивных иннервации мочевого пузыря и начало мочеиспускания сокращений, которые изгнать содержимое мочевого пузыря. Интересно, что чувствительность мочевого пузыря к вредным химическим веществам успешно применяется в клинической практике, внутрипузырно вливая TRPV1 агонист капсаицина для лечения нейрогенной гиперактивности мочевого пузыря<sup> 1</sup>. Это подчеркивает преимущества просмотра мочевого пузыря, хемосенсорной органов и подсказки для дальнейших клинических исследований. Тем не менее, этические вопросы, серьезно ограничивают возможности для выполнения, у человека, инвазивных измерений, которые необходимы, чтобы разгадать молекулярных основ LUT клинической фармакологии. Способ преодолеть это ограничение является использование нескольких моделей животных<sup> 2</sup>. Здесь мы описываем реализацию цистометрии у мышей и крыс, техника, которая позволяет проводить измерения внутрипузырного давления в условиях контролируемой перфузия мочевого пузыря.</p><p class="jove_content"> После лапаротомии, катетер имплантировали в мочевой пузырь купола и тоннельного подкожно в межлопаточной области. Тогда мочевого пузыря могут быть заполнены с контролируемой скоростью, в то время как мочеиспускательный канал остается свободным для мочеиспускания. Во время повторяющихся циклов наполнения и мочеиспускания, внутрипузырного давления может быть измерена с помощью имплантированного катетера. Таким образом, изменения давления могут быть определены и проанализированы. Кроме того, одновременное измерение объема мочеиспускания позволяет отличительной мочеиспускания сокращений, не являющихся мочеиспускания сокращений<sup> 3</sup>.</p><p class="jove_content"> Важно отметить, что в связи с различиями в мочеиспускании управления грызунов и человека, цистометрической измерений в эти животные имеют лишь ограниченное значение поступательного<sup> 4</sup>. Тем не менее, они весьма важную роль в изучении патофизиологии мочевого пузыря и фармакологии в экспериментальных доклинических настройки. Недавние исследования с помощью этой методики выявило ключевую роль новых молекулярных игроков в механо-и химио-сенсорные свойства мочевого пузыря.</p>

Protocol

1. Лабораторных животных Животных (мышей, крыс) размещаются в специализированном лечебном учреждении животных с 12-час цикле свет-темнота и вволю доступ к воде и стандартных гранул пищи. Оба пола и возраста животных являются важными параметрами, которые должны быть стандартиз…

Discussion

Цистометрии техники, представленные здесь позволяет проводить в естественных условиях измерения функции мочевого пузыря на животных моделях. Крысы являются, вероятно, наиболее часто используемые модели на животных. Мыши сложнее в использовании, но имеют преимущество использова…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантами от бельгийского федерального правительства (IUAP P6/28), Научно-исследовательский фонд Фландрии (FWO) (G.0565.07 и G.0686.09), Astellas Европейский фонд Award 2009 и Научно-исследовательского совета KU Leuven (GOA 2009/07, EF/95/010 и PFV/10/006). PU и мы научных сотрудников научно-исследовательского фонда Фландрии (FWO). MB является членом Марии Кюри. DDR фундаментальных клинических сотрудник FWO.

Materials

Name of the reagent Commercial name, company, Catalogue number Comments
urethane Urethane, Sigma-Aldrich 315419 group 2B carcinogen
isoflurane Isoba, Schering-Plough Animal Health    
polyethylene catheter Intramedic Polyethylene tubing PE50, Becton Dickinson 427411  
surgical microscope Op-Mi 6, Carl Zeiss Op-Mi 6  
purse-string suture Prolene 6/0, Ethicon 8610H  
fascia and skin suture Ethilon 4/0 or 5/0, Ethicon 662G or 661G  
postoperative analgesics Temgesic, Schering-Plough Animal Health   dosage for rats: 0.05 mg/kg
amplifier 78534c monitor, Hewlett Packard    
analytical balances and balance data acquisition software FZ 300i, A&D FZ-300i  
infusion pumps pump 33, Harvard apparatus HA33  
cystometry recording system Dataq instruments, DI-730 series and Windaq/Lite DI-730-USB Windaq/Lite  
temperature registration Fluke 52 KJ thermometer 52 KJ  
pressure transducers Edwards Lifesciences, pressure monitoring set T322247A  

Referências

  1. Everaerts, W., Gevaert, T., Nilius, B., De Ridder, D. On the origin of bladder sensing: Tr(i)ps in urology. Neurourol. Urodyn. 27, 264-2673 (2008).
  2. Fry, C. H. Animal models and their use in understanding lower urinary tract dysfunction. Neurourol. Urodyn. 29, 603-608 (2010).
  3. Gevaert, T. Deletion of the transient receptor potential cation channel TRPV4 impairs murine bladder voiding. J. Clin. Invest. 117, 3453-3462 (2007).
  4. Andersson, K. E., Soler, R., Fullhase, C. Rodent models for urodynamic investigation. Neurourol. Urodyn. 30, 636-646 (2011).
  5. Everaerts, W. Inhibition of the cation channel TRPV4 improves bladder function in mice and rats with cyclophosphamide-induced cystitis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 19084-19089 (2010).
  6. Everaerts, W. The capsaicin receptor TRPV1 is a crucial mediator of the noxious effects of mustard oil. Curr. Biol. 21, 316-321 (2011).
  7. Yoshiyama, M., Roppolo, J. R., Thor, K. B., de Groat, W. C. Effects of LY274614, a competitive NMDA receptor antagonist, on the micturition reflex in the urethane-anaesthetized rat. Br. J. Pharmacol. 110, 77-86 (1993).
  8. Yoshiyama, M., Roppolo, J. R., de Groat, W. C. Effects of MK-801 on the micturition reflex in the rat–possible sites of action. J. Pharmacol. Exp. Ther. 265, 844-850 (1993).
  9. Boudes, M. Functional Characterization of a Chronic Cyclophosphamide-Induced Overactive Bladder Model in mice. Neurourol. Urodyn. , (2011).
  10. Yoshiyama, M. Sex-related differences in activity of lower urinary tract in response to intravesical acid irritation in decerebrate unanesthetized mice. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 295, R954-R960 (2008).
  11. McMahon, S. B., Abel, C. A model for the study of visceral pain states: chronic inflammation of the chronic decerebrate rat urinary bladder by irritant chemicals. Pain. 28, 109-127 (1987).
  12. Du, S., Araki, I., Yoshiyama, M., Nomura, T., Takeda, M. Transient receptor potential channel A1 involved in sensory transduction of rat urinary bladder through C-fiber pathway. Urology. 70, 826-831 (2007).
  13. Streng, T., Santti, R., Talo, A. Similarities and differences in female and male rat voiding. Neurourol. Urodyn. 21, 136-141 (2002).
  14. Igawa, Y. Cystometric findings in mice lacking muscarinic M2 or M3 receptors. J. Urol. 172, 2460-2464 (2004).
  15. Schroder, A., Newgreen, D., Andersson, K. E. Detrusor responses to prostaglandin E2 and bladder outlet obstruction in wild-type and Ep1 receptor knockout mice. J. Urol. 172, 1166-1170 (2004).
  16. Chen, Q. Function of the lower urinary tract in mice lacking alpha1d-adrenoceptor. J. Urol. 174, 370-374 (2005).
  17. May, V., Vizzard, M. A. Bladder dysfunction and altered somatic sensitivity in PACAP-/- mice. J. Urol. 183, 772-779 (2010).
  18. Thorneloe, K. S., Meredith, A. L., Knorn, A. M., Aldrich, R. W., Nelson, M. T. Urodynamic properties and neurotransmitter dependence of urinary bladder contractility in the BK channel deletion model of overactive bladder. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 289, 604-610 (2005).
check_url/pt/3869?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Uvin, P., Everaerts, W., Pinto, S., Alpízar, Y. A., Boudes, M., Gevaert, T., Voets, T., Nilius, B., Talavera, K., De Ridder, D. The Use of Cystometry in Small Rodents: A Study of Bladder Chemosensation. J. Vis. Exp. (66), e3869, doi:10.3791/3869 (2012).

View Video