Summary

Fremstilling af akutte Subventricular Zone Slices for Calcium Imaging

Published: September 19, 2012
doi:

Summary

En fremgangsmåde til at indlæse subventricular zone (SVZ) celler med calcium indikatorfarvestoffer til optagelse calcium aktivitet er beskrevet. Den postnatale SVZ indeholder tætpakkede celler, herunder neurale progenitorceller og neuroblaster. Snarere end at bruge bad loading vi injicerede farvestoffet ved tryk inde i vævet giver bedre farve diffusion.

Abstract

The subventricular zone (SVZ) er en af ​​de to neurogene områder i den postnatale hjernen. The SVZ indeholder tætpakkede celler, herunder neurale progenitorceller med astrocytiske features (kaldet SVZ astrocytter), neuroblaster og mellemliggende progenitorceller. Neuroblaster født i SVZ tangentialt migrere en stor afstand til lugtekolben, hvor de differentierer til interneuroner. Intercellulære signalering gennem adhæsionsmolekyler og diffunderbare signaler spiller vigtige roller i kontrollerende neurogenese. Mange af disse signaler udløser intercellulær calcium aktivitet, der transmitterer information i og mellem celler. Calcium aktivitet er således afspejler aktiviteten af ​​ekstracellulære signaler og er en optimal måde at forstå funktionel intercellulær signalering blandt SVZ celler.

Calcium-aktivitet er blevet undersøgt i mange andre regioner og celletyper, herunder modne astrocytter og neuroner. Men den traditionelle metode til load celler med calcium indikatorfarvestof (dvs. bad loading) var ikke effektiv ved pålæsning alle SVZ celletyper. Faktisk den cellulære tæthed i SVZ udelukker farvestoffet diffusion inde i vævet. Desuden vil fremstilling sagittale udsnit bedre bevarer den tredimensionelle arrangement af SVZ celler, især strømmen af ​​neuroblast migration på den rostrale-caudale akse.

Her beskriver vi metoder til at forberede sagittale sektioner og indeholder SVZ, at lastningen af ​​SVZ celler med calcium indikatorfarvestof, og købet af calcium aktivitet med time-lapse film. Vi anvendte Fluo-4:00 farvestof til lastning SVZ astrocytter hjælp trykpåføring inde i vævet. Calcium-aktivitet blev registreret ved hjælp af en konfokal mikroskop giver en præcis løsning for skelne de enkelte celler. Vores tilgang er anvendelig til andre neurogene zoner, herunder den voksne hippocampus subgranular zone og embryonale neurogene zoner. Endvidere kan andre typer af farvestofferpåføres ved anvendelse af den beskrevne fremgangsmåde.

Protocol

1. Udarbejdelse af løsninger, dissektion og Vibratome Opløsninger skal fremstilles ved den korrekte osmolaritet og pH (tabel 1). Sammenlignet med kunstig cerebrospinalvæske (ACSF), der dissektion opløsning fremstillet med lavere koncentrationer af natrium og calcium, og højere koncentrationer af magnesium. Derved mindskes excitotoksicitet virkninger under udskæring. Både dissektion og ACSF løsninger skal være mættet med 95% O2 / 5% CO2 ved gennembobli…

Discussion

Calcium billeddannelse af SVZ-celler er blevet anvendt til at studere mønstrene på spontan aktivitet i neuroblaster 10, receptorkanalen ekspression i både neuroblaster og astrocytter 4,6,8 og astrocytiske calcium bølger 3. Da celler i SVZ er enten umodne eller har gliale egenskaber, de ikke fyre handling potentialer 11,12, hvilket betyder, at millisekund ændringer i spændingspotentiale vejledende aktivitet i modne netværk ikke finder anvendelse i denne region. Derfor op…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra NIH (DC007681, AB), CT Stem Cell tilskud (AB), Pardee fundament (AB), Predoctoral Ruth L. Kirschstein National Research Service Awards (NRSA) (SZY), og en NSF Graduate Research Fellowship (BL). Vi takker Bordey lab medlemmer for personer kommentarer til manuskriptet. Det foreliggende materiale er baseret på arbejde delvis støttet af staten Connecticut under Connecticut Stem Cell Research Grants Program. Dens indhold er udelukkende forfatternes ansvar og repræsenterer ikke nødvendigvis de officielle synspunkter i staten Connecticut, Institut for Folkesundhed i staten Connecticut eller CT Innovations, Incorporated.

Materials

Solute Company Catalog Number Dissection (mM)
Sucrose Sigma S0389 Dissection: 147 mM
ACSF: 0 mM
NaCl Sigma S9888 Dissection: 42 mM
ACSF: 126 mM
KCl Sigma P3911 Dissection: 2.5 mM
ACSF: 2.5 mM
MgCl2.6H2O Sigma M9272 Dissection: 4.33 mM
ACSF: 1 mM
NaH2PO4.H2O Sigma S8282 Dissection: 1.25 mM
ACSF: 1.25 mM
Glucose Sigma G8270 Dissection: 10 mM
ACSF: 10 mM
NaHCO3 Sigma S6014 Dissection: 26 mM
ACSF: 26 mM
CaCl2.2H2O Sigma C3306 Dissection: 1.33 mM
ACSF: 2 mM

Table 1. Chemical list and recipes of dissection solution and ACSF.

      [header]
Name Company Catalogue Number Comments
Vibratome Leica VT 1000S  
Super Glue Surehold or 3M Surehold 3G Super Glue or 3M Vet-Bond  
Dissection tools Roboz or Ted Pella    
Fluo-4 AM calcium-sensitive dye Invitrogen F14201  
Oregon Green BAPTA-1 AM calcium-sensitive dye Invitrogen O6807  
Pluronic F-127 20% solution in DMSO Invitrogen P3000MP  
Upright confocal microscope Olympus FV300 or FV1000  
Water-immersion objectives Olympus LUMPlanFl 40 x W/IR (NA 0.80); LUMPlanFl 60 x W/I (NA 0.90)  
Micromanipulators Sutter MPC-200/MPC-325/MPC-385  
Pressure controller Parker Hannifin Picospritzer <3 PSI during application
Pipette puller Sutter or Narshige Sutter P-97 or Narshige PP-830  
Glass pipettes Sutter BF150-110-10 I.D.:1.10, O.D.: 1.50
Peristaltic pump Harvard Apparatus Model 720 flow rate: 1 ml/min
Chamber bath Warner Instruments RC-26 GLP Low profile allows for objective clearance
Tubing Tygon    
Temperature Controller Warner Instruments TC-324B/344B  

Table 2. Materials/equipment list.

Referências

  1. Peretto, P., Giachino, C., Aimar, P., Fasolo, A., Bonfanti, L. Chain formation and glial tube assembly in the shift from neonatal to adult subventricular zone of the rodent forebrain. J. Comp Neurol. 487, 407-427 (2005).
  2. Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J. C., Bordey, A. Imaging and recording subventricular zone progenitor cells in live tissue of postnatal mice. Front. Neurosci. 4, 10-3389 (2010).
  3. Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J. C., Bordey, A. Gap junction-mediated calcium waves define communication networks among murine postnatal neural progenitor cells. Eur. J. Neurosci. , (2011).
  4. Platel, J. C., Dave, K. A., Gordon, V., Lacar, B., Rubio, M. E., Bordey, A. NMDA receptors activated by subventricular zone astrocytic glutamate are critical for neuroblast survival prior to entering a synaptic network. Neuron. 65, 859-872 (2010).
  5. Platel, J. C., Dupuis, A., Boisseau, S., Villaz, M., Albrieux, M., Brocard, J. Synchrony of spontaneous calcium activity in mouse neocortex before synaptogenesis. Eur. J. Neurosci. 25, 920-928 (2007).
  6. Young, S. Z., Platel, J. C., Nielsen, J. V., Jensen, N. A., Bordey, A. GABAA increases calcium in subventricular zone astrocyte-like cells through L- and T-type voltage-gated calcium channels. Front. Cell. Neurosci. 4, 8 (2010).
  7. Bolteus, A. J., Bordey, A. GABA Release and Uptake Regulate Neuronal Precursor Migration in the Postnatal Subventricular Zone. J. Neurosci. 24, 7623-7631 (2004).
  8. Platel, J., Heintz, T., Young, S., Gordon, V., Bordey, A. Tonic activation of GLUK5 kainate receptors decreases neuroblast migration in a whole mount preparation of the subventricular zone. J. Physiol. (Lond). 586, 3783-3793 (2008).
  9. Nam, S. C., Kim, Y., Dryanovski, D., Walker, A., Goings, G., Woolfrey, K., Kang, S. S., Chu, C., Chenn, A., Erdelyi, F., Szabo, G., Hockberger, P., Szele, F. G. Dynamic features of postnatal subventricular zone cell motility: a two-photon time-lapse study. J. Comp. Neurol. 505, 190-208 (2007).
  10. Lacar, B. L., Platel, J. C., Bordey, A. GABA controls Ca2+ activity-dependent network synchrony in the adult neurogenic forebrain. , (2007).
  11. Liu, X., Bolteus, A. J., Balkin, D. M., Henschel, O., Bordey, A. GFAP-expressing cells in the postnatal subventricular zone display a unique glial phenotype intermediate between radial glia and astrocytes. Glia. 54, 394-410 (2006).
  12. Wang, D. D., Krueger, D. D., Bordey, A. Biophysical properties and ionic signature of neuronal progenitors of the postnatal subventricular zone in situ. J. Neurophysiol. 90, 2291-2302 (2003).
  13. Tian, L., Hires, S. A., Mao, T., Huber, D., Chiappe, M. E., Chalasani, S. H., Petreanu, L., Akerboom, J., McKinney, S. A., Schreiter, E. R., Bargmann, C. I., Jayaraman, V., Svoboda, K., Looger, L. L. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nat. Methods. 6, 875-881 (2009).
  14. Zhao, Y., Araki, S., Wu, J., Teramoto, T., Chang, Y. F. An expanded palette of genetically encoded Ca(2) indicators. Science. 333, 1888-1891 (2011).
  15. Shigetomi, E., Kracun, S., Sofroniew, M. V., Khakh, B. S. A genetically targeted optical sensor to monitor calcium signals in astrocyte processes. Nat. Neurosci. 13, 759-766 (2010).
check_url/pt/4071?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J., Bordey, A. Preparation of Acute Subventricular Zone Slices for Calcium Imaging. J. Vis. Exp. (67), e4071, doi:10.3791/4071 (2012).

View Video