Summary

نقل الجينات في أجنة الدجاج أقدم من قبل<em> OVO السابقين</em> Electroporation

Published: July 27, 2012
doi:

Summary

وصفت وهناك طريقة لنقل الجينات إلى أجنة الدجاج في مراحل الحضانة في وقت لاحق (أقدم من هامبورغ وهاملتون مرحلة (سمو) 22). هذا الأسلوب يتغلب على عيوب<em> في البيضة</emتطبق> electroporation إلى أجنة الدجاج وأقدم هو تقنية مفيدة لدراسة وظيفة الجين والتنظيم في مراحل أقدم التنموية.

Abstract

الجنين الدجاج ويوفر نظام نموذجا ممتازا لدراسة وظيفة الجين والتنظيم أثناء التطور الجنيني. في electroporation OVO هو وسيلة قوية لالافراط في التعبير عن الجينات الخارجية أو أسفل تنظيم الجينات الذاتية في الجسم الحي في أجنة الدجاج 1. ويمكن هياكل مختلفة مثل جينات الحمض النووي الترميز البلازميدات 2-4، صغيرة تدخل الحمض النووي الريبي (سيرنا) البلازميدات صغيرة الاصطناعية RNA oligos و [أليغنوكليوتيد] morpholino العقاقير 7 transfected بسهولة في أجنة الدجاج بواسطة electroporation. ومع ذلك، يقتصر تطبيق في electroporation البيضة إلى الأجنة في مراحل الحضانة في وقت مبكر (الذين تقل أعمارهم عن مرحلة HH20 – وفقا لهامبورغ وهاملتون) وهناك بعض المساوئ لتطبيقه في الأجنة في مراحل لاحقة (أقدم من مرحلة HH22 – ما يقرب من 3.5 أيام التنمية). على سبيل المثال، الغشاء المحي في مراحل لاحقة هو أوسوحليف تمسك الغشاء يجب وفتح نافذة في وعاء يسبب تمزق في الأوعية، مما أدى إلى وفاة الأجنة، وتغطي أقدم الأجنة بواسطة السفن المحي والسقاء، حيث أنه من الصعب الوصول إليها والتلاعب في الأجنة، أقدم أجنة تحرك بقوة ويصعب السيطرة على التوجه من خلال نافذة صغيرة نسبيا في وعاء.

في هذا البروتوكول نظهر سابق الأسلوب electroporation OVO لنقل الجينات في أجنة الدجاج في المراحل المتأخرة (أقدم من مرحلة HH22). لelectroporation OVO السابقين، تستزرع الأجنة في أطباق بتري (9) وتنتشر على نطاق واسع المحي والأوعية السقاء. في ظل هذه الظروف، يتم الوصول إليها بسهولة الأجنة أقدم الدجاج والتلاعب بها. ولذلك، هذا الأسلوب يتغلب على عيوب في electroporation OVO تطبيقها على الأجنة أقدم الدجاج. باستخدام هذه الطريقة، يمكن البلازميدات transfected بسهولة إلى أجزاء مختلفةمن أجنة الدجاج أقدم 10-12.

Protocol

1. سابق الثقافة OVO وضعت جديدة البويضات المخصبة على الجانب الطويل في حاضنة القسري مشروع-(BSS160، Ehret، ألمانيا) على 37،5 درجة مئوية مع رطوبة 60٪ للحضانة. لا ينبغي أن البيض المخزنة في 12 درجة مئوية لمدة أطول من أسبوع واح?…

Discussion

هذا البروتوكول يوفر دليلا لنقل الجينات إلى أجنة أقدم الدجاج (على سبيل المثال، في السقف البصري في E6) بواسطة electroporation OVO السابقين. وتمتد هذه الطريقة على استخدام electroporation إلى أجنة الدجاج وكبار السن ويمكن تطبيقها بسهولة على العديد من المختبرات لدراسة وظيفة الجينات <em…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل عن طريق منحة من مؤسسة البحوث الألمانية (DFG؛ LU1455/1-1).

Materials

Name Company Catalog Number
Electroporator Nepa Gene, Japan CUY21-Edit
Electrodes Nepa Gene, Japan CUY661-3×7
Egg incubator Ehret, Germany BSS160
Embryo incubator BINDER GmbH, Germany  
Fluorescent microscope Keyence, Deutschland GmbH BZ-8000
Petri dish Greiner Bio-One GmbH, Germany  
Microelectrode puller World Precision Instruments, Germany PUL-100

References

  1. Momose, T., Tonegawa, A., Takeuchi, J., Ogawa, H., Umesono, K., Yasuda, K. Efficient targeting of gene expression in chick embryos by microelectroporation. Dev. Growth Differ. 41, 335-344 (1999).
  2. Luo, J., Ju, M. J., Lin, J., Yan, X., Markus, A., Mix, E., Rolfs, A., Redies, C. Cadherin-20 expression by motor neurons is regulated by Sonic hedgehog during spinal cord development. NeuroReport. 20, 365-370 (2009).
  3. Luo, J., Ju, M. J., Redies, C. Regionalized cadherin-7 expression by radial glia is regulated by Shh and Pax7 during chicken spinal cord development. Neuroscience. 142, 1133-1143 (2006).
  4. Nakamura, H., Katahira, T., Sato, T., Watanabe, Y., Funahashi, J. Gain- and loss-of-function in chick embryos by electroporation. Mech. Dev. 121, 1137-1143 (2004).
  5. Dai, F., Yusuf, F., Farjah, G. H., Brand-Saberi, B. RNAi-induced targeted silencing of developmental control genes during chicken embryogenesis. Dev. Biol. 258, 80-90 (2005).
  6. Rao, M., Baraban, J. H., Rajaii, F., Sockanathan, S. In vivo comparative study of RNAi methodologies by in ovo electroporation in the chick embryo. Dev. Dyn. 231, 592-600 (2004).
  7. Kos, R., Tucker, R. P., Hall, R., Duong, T. D., Erickson, C. A. Methods for introducing morpholinos into the chicken embryo. Dev. Dyn. 226, 470-477 (2003).
  8. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. J. Morphol. 88, 49-92 (1951).
  9. Auerbach, R., Kubai, L., Knighton, D., Folkman, J. A simple procedure for the long-term cultivation of chicken embryos. Dev. Biol. 10, 391-394 (1974).
  10. Luo, J., Treubert-Zimmermann, U., Redies, C. Cadherins guide migrating Purkinje cells to specific parasagittal domains during cerebellar development. Mol. Cell. Neurosci. 25, 138-152 (2004).
  11. Luo, J., Redies, C. Ex ovo electroporation for gene transfer into older chicken embryos. Dev. Dyn. 233, 1470-1477 (2005).
  12. Treubert-Zimmermann, U., Heyers, D., Redies, C. Targeting axons to specific fiber tracts in vivo by altering cadherin expression. J. Neurosci. 22, 7617-7626 (2002).
check_url/4078?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Luo, J., Yan, X., Lin, J., Rolfs, A. Gene Transfer into Older Chicken Embryos by ex ovo Electroporation. J. Vis. Exp. (65), e4078, doi:10.3791/4078 (2012).

View Video