Summary

Ett enkelt protokoll för att extrahera hemocyter från Wild Larver

Published: November 15, 2012
doi:

Summary

Insect hemocyter utför många viktiga funktioner, både immuna och icke-immuna, under alla stadier av insekter utveckling. Vår nuvarande kunskap om hemocyte typer och funktion kommer från studier av insekter genetiska modeller. Här presenterar vi en metod för att extrahera, kvantifiera och visualisera hemocyter från vilda larver.

Abstract

Insect hemocyter (motsvarande däggdjur vita blodkroppar) spelar en viktig roll i flera fysiologiska processer genom en insekt livscykel 1. I larvstadier av insekter som hör till order Lepidoptera (malar och fjärilar) och Diptera (riktiga flugor), är hemocyter bildas av lymfkörtelområde (en specialiserad hematopoetisk orgel) eller embryonala celler och kan genomföras till den vuxna stadiet. Embryonala hemocyter är involverade i cellmigration under utveckling och kemotaxi reglering vid inflammation. De tar också del i cell apoptos och är nödvändiga för embryogenes 2. Hemocyter medierar cellulära armen av insekten medfödda immunsvar som inbegriper flera funktioner, såsom cellspridning, cellaggregering, bildning av noduler, fagocytos och inkapsling av främmande inkräktare 3. De är också ansvariga för att iscensätta specifika insekter humorala försvar vid infektion, till exempel produktion av antimikrobiella peptider och andra effektormolekyler molekyler 4, 5. Hemocyte morfologi och funktion har huvudsakligen studerats i genetiska eller fysiologiska insekter modeller, inklusive bananfluga, Drosophila melanogaster 6, 7, myggor Aedes aegypti och Anopheles gambiae 8, 9 och tobak hornworm, Manduca sexta 10, 11. Det finns dock lite information för närvarande om mångfald, klassificering, morfologi och funktion hemocyter i icke-modell insektsarter, speciellt de som samlats in från det vilda 12.

Här beskriver vi en enkel och effektiv protokoll för att extrahera hemocyter från vilda larver. Vi använder näst sista stadiet Lithacodes Fasciola (gul-shouldered slug mal) (Figur 1) och Euclea delphinii (taggig ek slug) larver (Lepidoptera: Limacodidae) och visar att tillräckliga mängder hemolymfa (insekt blod)kan isoleras och hemocyte nummer räknas från enskilda larver. Denna metod kan användas för att effektivt studera hemocyte typer i dessa arter samt i andra ordningen fjärilar larver skördats från fältet, eller det kan lätt kombineras med immunologiska analyser som syftar till att undersöka hemocyte funktion efter infektion med mikrobiella eller parasitära organismer 13.

Protocol

1. Material Förberedelser Förbered nålar (1-2 um spets och 3-4 mm spets) med borosilikatglas kapillärrör och en mikropipett avdragare. Instrumentinställningar: Ramp: 561, Hastighet: 20, värme: 560, delay: 1, pull: 100, tryck: 500. Bered samlingen lösningen: 60% av Graces medium (GM) kompletterat med 10% fetalt bovint serum (FBS) och 20% av antikoagulerande buffert (98 mM NaOH, 186 mM NaCl, 1,7 mM EDTA och 41 mM citronsyra, pH 4,5 ). Ovanstående lösning framställs färska under sterila bet…

Representative Results

Protokollet som beskrivs häri medger insamling av en minimal volym av 10-20 pl insekt hemolymfa från enskilda fjärilslarver. Hemocyter samlas med denna metod är fria från celler klumpar, defekter melaninnivå, vävnad skräp eller andra föroreningar. Därför hemocyter kan lätt observeras och räknades under mikroskop, och flera insekter kan observeras inom några Hosur. Vi konstaterade att majoriteten av hemocyter i våra prover bestod av plasmatocytes 3 ​​(hemocyter sprider asymmetriskt) …

Discussion

Metoder för att extrahera hemocyter från medicinskt viktiga insekter och fjärilsarter insekter modell har tidigare rapporterats 9, 14. Hemocyte extraktionsmetoder anpassas enligt de insektsarter, utvecklingsstadiet av insekten och dess morfologiska särdrag. Till exempel, kan hemolymfa isolering från Manduca larver lätt utföras genom snipping den krökta hornet nära slutet av buken 15. Eftersom slug larver (Limacodidae) saknar denna buken struktur har vi utvecklat en tydlig protokol…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

TMS stöddes av Harlan Lita Fellowship (GWU) under denna studie. Finansiering för fältet insamling och avel L. Fasciola och E. delphinii lämnades av NSF bevilja DEB 0642438 till JTL.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Micropipette puller Sutter Instruments P-1000
Borosilicate glass tubes Sutter Instruments B100-50-10 OD: 1.0, ID: 0.50 mm
Grace’s Medium Sigma G8142
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific SH3007102 Heat inactivated
Dumont #5 Forceps Fine science tools 11252-40
Neubauer hemocytometer Hausser Scientific 3200
Plastic tubing Tri-Tech TT-3-32OD OD: 3/32”, ID: 1/32′
Glass medical syringe Fortuna Optima D-97877 50 ml volume
Blunt end needle Small Parts NE-162PL-25 16 Gauge x 1″ length

Referências

  1. Hartenstein, V. Blood cells and blood cell development in the animal kingdom. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22, 677 (2006).
  2. Wood, W., Jacinto, A. Drosophila melanogaster embryonic haemocytes: masters of multitasking. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8 (7), 542 (2007).
  3. Strand, M. R. The insect cellular immune response. Insect Sci. 15 (1), 1 (2008).
  4. Fauvarque, M. O., Williams, M. J. Drosophila cellular immunity: a story of migration and adhesion. J. Cell Sci. 124 (9), 1373 (2011).
  5. Nehme, N. T., Quintin, J., Cho, J. H., Lee, J., Lafarge, M. C., Kocks, C., Ferrandon, D. Relative roles of the cellular and humoral responses in the Drosophila host defense against three gram-positive bacterial infections. PLoS One. 6 (3), e14743 (2011).
  6. Ulvila, J., Vanha-Aho, L. M., Rämet, M. Drosophila phagocytosis – still many unknowns under the surface. APMIS. 119 (10), 651 (2011).
  7. Moreira, C. G., Regan, J. C., Zaidman-Remy, A., Jacinto, A., Praq, S. Drosophila hemocyte migration: an in vivo assay for directional cell migration. Methods Mol. Biol. 769, 249 (2011).
  8. Hillyer, J. F. Mosquito immunity. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 218 (2010).
  9. Castillo, J. C., Robertson, A. E., Strand, M. R. Characterization of hemocytes from the mosquitoes Anopheles gambiae and Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol. 36 (12), 891 (2006).
  10. Jiang, H., Vilcinskas, A., Kanost, M. R. Immunity in lepidopteran insects. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 181 (2010).
  11. Eleftherianos, I., Xu, M., Yadi, H., ffrench-Constant, R. H., Reynolds, S. E. Plasmatocyte-spreading peptide (PSP) plays a central role in insect cellular immune defenses against bacterial infection. J. Exp. Biol. 212 (12), 1840 (2009).
  12. Ribeiro, C., Brehélin, M. Insect haemocytes: what type of cell is that. J. Insect Physiol. 52 (5), 417 (2006).
  13. Beetz, S., Brinkmann, M., Trenczek, T. Differences between larval and pupal hemocytes of the tobacco hornworm, Manduca sexta, determined by monoclonal antibodies and density centrifugation. J. Insect Physiol. 50 (9), 805 (2004).
  14. Beetz, S., Holthusen, T. K., Koolman, J., Trenczek, T. Correlation of hemocyte counts with different developmental parameters during the last larval instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta. Arch. Insect Biochem. Physiol. 67 (2), 63 (2008).
  15. Eleftherianos, I., Joyce, S., ffrench-Constant, R. H., Clarke, D. J., Reynolds, S. E. Probing the tri-trophic interaction between insects, nematodes and Photorhabdus. Parasitology. 137 (11), 1695 (2010).
  16. Qayum, A. A., Telang, A. A Protocol for Collecting and Staining Hemocytes from the Yellow Fever Mosquito Aedes aegypti. J. Vis. Exp. (51), e2772 (2011).
check_url/pt/4173?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Stoepler, T. M., Castillo, J. C., Lill, J. T., Eleftherianos, I. A Simple Protocol for Extracting Hemocytes from Wild Caterpillars. J. Vis. Exp. (69), e4173, doi:10.3791/4173 (2012).

View Video