Summary

Användning av LysoTracker att upptäcka programmerad celldöd i embryon och Skilja embryonala stamceller

Published: October 11, 2012
doi:

Summary

Vi presenterar ett enkelt protokoll för att visualisera områden programmerad celldöd (PCD) i musembryon och differentiera embryonala stamceller (ES) cellodlingar med en lättlöslig färg kallas LysoTracker.

Abstract

Programmerad celldöd (PCD) förekommer hos vuxna för att upprätthålla normal vävnad homeostas och under embryologiska utveckling att forma vävnader och organ 1,2,6,7. Under utvecklingen kan giftiga kemikalier eller genetiska förändringar orsaka en ökning av PCD eller ändra PCD mönster resulterar i utvecklingsstörningar och fosterskador 3-5. För att förstå etiologin av dessa defekter kan studiet av embryon kompletteras med in vitro-analyser som använder differentierande embryonala stamceller (ES-celler).

Apoptos är en väl studerad formen av PCD som involverar både inre och yttre signalering att aktivera kaspas enzymet kaskaden. Karakteristiska cellförändringar inkluderar membran blåsbildning, kärnkraft krympning och DNA-fragmentering. Andra former av PCD inte innebär kaspasaktivering och kan vara slutresultatet av långvarig autophagy. Oavsett PCD vägen, döende celler måste avlägsnas. Hos vuxna immuncellerna perfOrm denna funktion, medan embryon, där immunförsvaret ännu inte har utvecklat sker avlägsnandet av en alternativ mekanism. Denna mekanism innebär angränsande celler (kallas "icke-professionella fagocyter") tar på en fagocytisk roll-de känner igen den "äter mig"-signal på ytan av den döende cellen och uppsluka den 8-10. Efter omvälvning är skräp förs till lysosom för nedbrytning. Sålunda oberoende av PCD mekanism, kan en ökning i lysosomal aktivitet korreleras med ökad celldöd.

För att studera PCD, en enkel analys för att visualisera lysosomer i tjocka vävnader och flerskiktade differentierande kulturer kan vara användbara. LysoTracker färgämnet är en lättlöslig liten molekyl som kvarhålles i sura subcellulära fack såsom lysosomen 11-13. Färgämnet tas upp genom diffusion och genom cirkulationen. Eftersom penetrationen är inte ett hinder, visualisering av PCD i tjocka vävnader och flera lager kulturer är möjligt 12,13 </sup>. Däremot är TUNEL (terminalt deoxinukleotidyltransferas dUTP nick slutet märkning) analys 14, begränsad till små prover, histologiska sektioner och kulturer monolager eftersom förfarandet kräver inträde / permeabiliteten av en terminal transferas.

I motsats till Anilin blå, som diffunderar och löses av lösningsmedel, är LysoTracker Röd DND-99 fixerbar, ljusa och stabil. Färgning kan visualiseras med standard lysrör eller konfokalmikroskopi i hel-fäste eller avsnitt med vattenbaserade eller lösningsmedelsbaserade monteringsmedia 12,13. Här beskriver vi protokoll som använder denna färg att titta på konsekvent politik för utveckling i normal och Sonic hedgehog null embryon mus. Dessutom visar vi analys av PCD att skilja kulturer ES cell och presentera en enkel kvantifiering metod. Sammanfattningsvis kan LysoTracker färgning vara ett bra komplement till andra metoder för att upptäcka PCD.

Protocol

1. LysoTracker Färgning av musembryon Generera musembryon genom att placera unga (5-6 veckor gamla) kvinnor i manliga stud burar. Övervaka följande morgon för uppkomsten av en vaginal plugg som indikerar att parning har skett. Om honan är gravid, är middagstid på dagen kallas 0,5 DPC (dagar efter samlag). Förfarandet som presenteras här är perfekt för embryon 7-13 DPC. Den embryonala dagen av intresse, avliva honan enligt godkända protokoll och ta bort livmodern. Ta bort embryon från de…

Discussion

Viktiga kännetecken för apoptos inkluderar detektion av DNA-skada med TUNEL-analysen, tillsammans med detekteringen av kaspas-aktivitet (detekterad med mAb eller en bindningsmolekyl såsom zVAD-fmk), observation av cellulära förändringar, och presentationen av fosfatidylserin (PS ) på membranytan (detekteras av Annexin V-bindning). Det finns vissa nackdelar med var och en av dessa analyser. Till exempel tränger terminalen transferas används i TUNEL-analysen inte utöver några cellager. Även Annexin V kan marke…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar medlemmar i Mariani labbet för att få hjälp att redigera protokollet. Detta arbete har finansierats av en CIRM postdoktoral utbildning Grant (JLF), en CIRM BRIDGES praktik (TZTT), Robert E. och maj R. Wright Foundation (FVM) och University of Southern California (FVM).

Materials

Name of the reagent Company   Catalogue number
LysoTracker Red DND-99 Invitrogen #L-7528  
Hanks BSS Invitrogen 14025-076  
Paraformaldehyde EMD EM-PX0055-3  
Vectashield VECTOR H-1200  
DMEM Cellgro 10-013-CV  
Non-essential amino acids Cellgro 25-025-CI  
Sodium pyruvate Cellgro 25-000-CI  
FBS Hyclone SH30071.02  
Pen-Strep Invitrogen 15140-122  
b-Mercaptoethanol, 50 mM Invitrogen 21985-023  
LabTek-II Chamber slides
(8-well)
Nalge Nunc International 154534  
0.1% Gelatin Millipore ES-006-B  
Dulbecco’s PBS (D-PBS) Cellgro 21-031-CV  
     

Solution Recipes

4% Paraformaldehyde

For 100 ml:

  1. Mix 4 g paraformaldehyde, 90 ml H2O, and NaOH (a drop of 2N NaOH). The paraformaldehyde will not go into solution until you have added some NaOH to increase the pH.
  2. Stir and heat at 60 °C until all the powder is in solution (~10-20 min). Do not overheat.
  3. Add ~10 ml 10x PBS to achieve a final volume of 100 ml.
  4. Store at -20 °C in convenient (~10 ml or ~40 ml) aliquots.

WARNING: Paraformaldehyde in ‘frill’ form (compressed small pellets) is less powdery and can therefore be measured outside of a hood. However you should still wear a protective dust mask (N95 at least) during handling.

EB Culture Media

For 500 ml EB Media:

DMEM: 404.5 ml
FBS: 75.0 ml
L-Glutamine: 5.0 ml
Penicillin/Streptomycin: 5.0 ml
Non-essential amino acids: 5.0 ml
Sodium pyruvate: 5.0 ml
β-Mercaptoethanol: 500 μl

Referências

  1. Baehrecke, E. H. How death shapes life during development. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 779-787 (2002).
  2. Meier, P., Finch, A., Evan, G. Apoptosis in development. Nature. 407, 796-801 (2000).
  3. Ikonomidou, C. Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome. Science. 287, 1056-1060 (2000).
  4. Dunty, W. C., Chen, S. Y., Zucker, R. M., Dehart, D. B., Sulik, K. K. Selective vulnerability of embryonic cell populations to ethanol-induced apoptosis: implications for alcohol-related birth defects and neurodevelopmental disorder. Alcohol Clin. Exp. Res. 25, 1523-1535 (2001).
  5. Price, O. T., Lau, C., Zucker, R. M. Quantitative fluorescence of 5-FU-treated fetal rat limbs using confocal laser scanning microscopy and Lysotracker. Cytometry A. 53, 9-21 (2003).
  6. Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. Programmed cell death in animal development. Cell. 88, 347-354 (1997).
  7. Fuchs, Y., Steller, H. Programmed cell death in animal development and disease. Cell. 147, 742-758 (2011).
  8. Qu, X. Autophagy gene-dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development. Cell. 128, 931-946 (2007).
  9. Grimsley, C., Ravichandran, K. S. Cues for apoptotic cell engulfment: eat-me, don’t eat-me and come-get-me signals. Trends Cell Biol. 13, 648-656 (2003).
  10. Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses. Mol. Cell. 14, 277-287 (2004).
  11. Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release. Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).
  12. Zucker, R. M., Hunter, S., Rogers, J. M. Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos. Cytometry. 33, 348-354 (1998).
  13. Zucker, R. M., Hunter, E. S., Rogers, J. M. Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy. Methods. 18, 473-480 (1999).
  14. Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J. Cell Biol. 119, 493-501 (1992).
  15. Foty, R. A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720 (2011).
  16. Chiang, C. Manifestation of the limb prepattern: limb development in the absence of sonic hedgehog function. Dev. Biol. 236, 421-435 (2001).
  17. Ishibashi, M., McMahon, A. P. A sonic hedgehog-dependent signaling relay regulates growth of diencephalic and mesencephalic primordia in the early mouse embryo. Development. 129, 4807-4819 (2002).
  18. Schuldiner, M. Induced neuronal differentiation of human embryonic stem cells. Brain Res. 913, 201-205 (2001).
  19. Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro. Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).
  20. Dumont, A. Hydrogen peroxide-induced apoptosis is CD95-independent, requires the release of mitochondria-derived reactive oxygen species and the activation of NF-kappaB. Oncogene. 18, 747-757 (1999).
  21. Hampton, M. B., Orrenius, S. Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide: implications for apoptosis. FEBS Lett. 414, 552-556 (1997).
  22. Wood, W. Mesenchymal cells engulf and clear apoptotic footplate cells in macrophageless PU.1 null mouse embryos. Development. 127, 5245-5252 (2000).
  23. Scott, R. C., Juhasz, G., Neufeld, T. P. Direct induction of autophagy by Atg1 inhibits cell growth and induces apoptotic cell death. Curr. Biol. 17, 1-11 (2007).
  24. Rodriguez-Enriquez, S., Kim, I., Currin, R. T., Lemasters, J. J. Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy (mitophagy) in rat hepatocytes. Autophagy. 2, 39-46 (2006).
  25. Bampton, E. T., Goemans, C. G., Niranjan, D., Mizushima, N., Tolkovsky, A. M. The dynamics of autophagy visualized in live cells: from autophagosome formation to fusion with endo/lysosomes. Autophagy. 1, 23-36 (2005).
  26. Boya, P., Mellen, M. A., de la Rosa, E. J. How autophagy is related to programmed cell death during the development of the nervous system. Biochem. Soc. Trans. 36, 813-817 (2008).
  27. Galluzzi, L. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death Differ. 16, 1093-1107 (2009).
  28. Klionsky, D. J. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes. Autophagy. 4, 151-175 (2008).
check_url/pt/4254?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Fogel, J. L., Thein, T. Z. T., Mariani, F. V. Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (68), e4254, doi:10.3791/4254 (2012).

View Video