Summary

अलगाव और संस्कृति नवजात माउस cardiomyocytes की

Published: September 06, 2013
doi:

Summary

प्राथमिक माउस cardiomyocyte संस्कृतियों myofibrillar संगठन और समारोह की जांच के लिए निर्णायक उपकरणों में से एक हैं. निम्नलिखित प्रोटोकॉल नवजात माउस दिल से प्राथमिक cardiomyocytes के अलगाव और संस्कृति का वर्णन करता है. परिणामस्वरूप cardiomyocyte संस्कृतियों बाद में biomechanical, जैव रासायनिक और सेल जैविक assays की एक किस्म के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है.

Abstract

संवर्धित नवजात cardiomyocytes लंबे myofibrillogenesis और myofibrillar कार्यों का अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया गया है. संवर्धित cardiomyocytes आसान जांच और हेरफेर जैव रासायनिक रास्ते की, और अनायास cardiomyocytes पिटाई के biomechanical संपत्तियों पर उनके प्रभाव के लिए अनुमति देते हैं.

निम्नलिखित 2 दिन प्रोटोकॉल नवजात माउस cardiomyocytes के अलगाव और संस्कृति का वर्णन करता है. हम आसानी से, नवजात शिशुओं से दिल टुकड़े करना हृदय के ऊतकों को अलग कर देना और हृदय सेल आबादी से cardiomyocytes को समृद्ध करने के लिए दिखा. हम सेल हदबंदी के लिए अलग एंजाइम घोला जा सकता है के उपयोग, और सेल व्यवहार्यता पर उनके प्रभाव पर चर्चा की. पृथक cardiomyocytes बाद में रूपात्मक, electrophysiological, जैव रासायनिक, सेल जैविक या biomechanical assays के एक किस्म के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है. हम केवल व्यावसायिक रूप से उपलब्ध समाधान का उपयोग करके, मजबूती और reproducibility के लिए प्रोटोकॉल अनुकूलित और एंजाइम घोला जा सकता है कि शओउ थोड़ा बहुत से बहुत परिवर्तनशीलता. हम भी cardiomyocytes के अलगाव और संस्कृति के साथ जुड़े आम समस्याओं से निपटने, और अलगाव और संस्कृति शर्तों के अनुकूलन के लिए विकल्प की एक किस्म की पेशकश करते हैं.

Introduction

कृंतक हृदय कोशिकाओं की सफल हदबंदी और संस्कृति के लिए जल्द से जल्द रिपोर्ट वापस 1960 के 1,2 करने के लिए तारीखें. फिर भी, Harary और फ़ार्ले सुसंस्कृत cardiomyocytes "आवधिक सिकुड़ना की आवश्यकताओं के अध्ययन के लिए एक अनूठी प्रणाली प्रदान कर सकता है [, और हो सकता है] [पिटाई] प्रक्रिया के लिए विभिन्न चयापचय मार्ग के योगदान का निर्धारण करने का एक साधन प्रदान" देखा. युवा चूहों, और मूल प्रोटोकॉल से Harary और फ़ार्ले पृथक और सुसंस्कृत cardiomyocytes वर्षों में रूपांतरित किया और कई वैज्ञानिकों द्वारा संशोधित किया गया है, सामान्य अलगाव और संवर्धन प्रक्रिया बहुत नहीं बदली है. हालांकि, बेहतर एंजाइमों 3, मानकीकृत समाधान 4,5, और अलगाव की प्रक्रिया 6-9 दौरान कोशिकाओं की रक्षा के लिए प्रतिवर्ती चैनल और मायोसिन ATPase अवरोध करनेवाला BDM के अलावा काफी सेल उपज और व्यवहार्यता में सुधार हुआ है.

नवजात cardiomyo बनाम वयस्कcytes

नवजात चूहों या चूहों से अलग और सुसंस्कृत cardiomyocytes वयस्क cardiomyocytes की संस्कृतियों पर कई फायदे हैं. वयस्क माउस या चूहा 10 से cardiomyocytes के अलगाव की तुलना में जब अग्रणी, नवजात माउस या चूहा दिल के लिए अलगाव की प्रक्रिया, आसान और कम महंगा है. नवजात cardiomyocytes बहुत सेल उपज में वृद्धि, हदबंदी के बाद एक कैल्शियम युक्त मध्यम में reintroduction के लिए अब तक कम संवेदनशील होते हैं. वयस्क cardiomyocytes आमतौर पर संकुचन प्रेरित करने के लिए पेसिंग की आवश्यकता होती है, जबकि आम तौर पर अनायास चढ़ाना के बाद कोशिकाओं को 20 घंटे की धड़कन में यह परिणाम है कि redifferentiation चक्र – एक और बड़ा लाभ यह है कि नवजात माउस cardiomyocytes एक और अधिक तेजी dedifferentiation से गुजरना है. वयस्क cardiomyocytes ट्रांसजेनिक डीएनए के सफल प्रसव के लिए वायरल वैक्टर की आवश्यकता होती है, जबकि नवजात cardiomyocytes, अधिक आसानी से भी लिपोसोमल अभिकर्मक तरीकों के साथ transfectable हैं. नवजात cardiomyocyte के विपरीतएस, वयस्क कृंतक cardiomyocytes 11-13 की संस्कृति myofibrillar गिरावट और सिकुड़ा तंत्र के अंतिम reestablishment की जांच के लिए अनुमति देता है. वयस्क cardiomyocytes में इन विशेषता morphological परिवर्तन 1-2 सप्ताह की अवधि में पाए जाते हैं. dedifferentiation – redifferentiation चक्र जिससे मानव cardiomyopathies 14 में मनाया रोग परिवर्तन की नकल उतार, भ्रूण जीन कार्यक्रम के reexpression के साथ है. नवजात cardiomyocytes की संस्कृति से अधिक वयस्क चूहे cardiomyocytes की एक और लाभ यह समय की लंबी अवधि के लिए संस्कृति करने की क्षमता इन कोशिकाओं है.

माउस cardiomyocytes बनाम चूहा

चूहे नवजात cardiomyocytes के अलगाव और संस्कृति व्यवहार्य कोशिकाओं की उच्च पैदावार और बढ़ अभिकर्मक दरों सहित माउस नवजात cardiomyocytes, उस पर कुछ फायदे हैं. हालांकि, हृदय रोगों के लिए आनुवंशिक रूप से संशोधित माउस मॉडल का व्यापक उपयोग (जैसे </ उन्हें> फैली हुई cardiomyopathy 15 के लिए मॉडल के रूप में पेशी लिम प्रोटीन पीटकर माउस) नवजात चूहों से व्युत्पन्न cardiomyocytes के लिए अलगाव की प्रक्रिया का अनुकूलन करने के लिए प्रेरित किया है. नवजात चूहे और माउस cardiomyocytes अलग करने के लिए इस्तेमाल किया प्रोटोकॉल लगभग समान हैं, अधिक से अधिक देखभाल बाद के लिए एक उपयुक्त एंजाइम मिश्रण के चयन में लिया जाना चाहिए. दरअसल, नवजात माउस cardiomyocytes एक कम सेल उपज और व्यवहार्यता, जिसके परिणामस्वरूप आम तौर पर overdigestion लिए अतिसंवेदनशील होते हैं. नवजात चूहों से व्युत्पन्न cardiomyocytes नवजात चूहे दिल से ली गई कोशिकाओं की तुलना में कुछ हद तक छोटे होते हैं इसके अलावा, चढ़ाना घनत्व, समायोजित किया जाना चाहिए.

रूपात्मक, electrophysiological, जैव रासायनिक, सेल जैविक और biomechanical मापदंडों के साथ ही myofibrillogenesis की प्रक्रिया के लिए की जांच के लिए कई प्रयोग के साथ, सुसंस्कृत नवजात cardiomyocytes के अध्ययन के लिए सबसे बहुमुखी प्रणालियों में से एक बन गए हैंइन विट्रो में हृदय सेल काम करता है. एक सफल परख करने के लिए पहला कदम हालांकि, नवजात माउस cardiomyocytes अलग करने के लिए एक आसान और विश्वसनीय पद्धति पर निर्भर करता है. हमारे प्रोटोकॉल कई स्रोतों से अपनी कार्यप्रणाली ड्रॉ और reproducibility और मजबूती के लिए अनुकूलित किया गया था. हम cardiomyocyte उपज और व्यवहार्यता को प्रभावित करने वाले कारकों पर चर्चा, और अलगाव और संस्कृति शर्तों के अनुकूलन के लिए विकल्प की एक किस्म प्रदान करते हैं.

Protocol

निम्नलिखित प्रक्रिया नवजात माउस cardiomyocytes के अलगाव और संस्कृति के लिए एक दो दिवसीय प्रोटोकॉल 16,17 वर्णन करता है. सभी समाधान बाँझ या बाँझ छान रहे हैं. सभी उपकरण 75% इथेनॉल के साथ सतह नसबंदी द्वारा निष्फल रहे…

Representative Results

इस प्रोटोकॉल का उपयोग करना, हम 8 एक दिन पुराने नवजात चूहों (आंकड़े 1 ए, 1 बी, पूरक मूवी S1) से दिलों को अलग किया. धोने और कैंची (आंकड़े 1C-1F) के साथ दिलों क़ीमा के बाद, ऊतक टुकड़े कोमल आंदोलन के साथ 4 डिग?…

Discussion

हृदय रोगों का अध्ययन करने के लिए पशु मॉडल का उपयोग हृदय अनुसंधान में मानक बन गया है. इन मॉडलों में से करीब जैव रासायनिक लक्षण वर्णन (यानी जैव रासायनिक या biomechanical उत्तेजनाओं को हृदय कोशिकाओं की प्रत्यक?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम प्रो अवकाश प्राप्त ज्यां क्लाड Perriard और एवलिन Perriard नवजात चूहे और माउस cardiomyocytes के लिए अलगाव की तकनीक में परिचय के लिए (प्रौद्योगिकी, स्विट्जरलैंड के स्विस फेडरल इंस्टीट्यूट) के लिए आभारी हैं. हम उनके समर्थन के लिए प्रो जू चेन और प्रो सिल्विया इवांस (UCSD, यूएसए) धन्यवाद देना चाहूंगा. ई की प्रयोगशाला में काम एक एमआरसी कैरियर स्थापना अनुदान द्वारा वित्त पोषित किया गया था. एसएल एनआईएच / NHLBI (HL107744) से स्वतंत्रता पुरस्कार के लिए एक K99/R00 मार्ग द्वारा समर्थित है. TMM अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन (11POST7310066) से एक postdoctoral फैलोशिप द्वारा समर्थित किया गया.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
BDM (2,3-Butanedione monoxime) 6-8 Sigma B-0753 prepare 0.2M stock solution in HBSS (without Ca2+, Mg2+), filter sterilize, can be kept at 4 °C up to 6 months; Caution: Prolonged usage of BDM other than during isolation procedure may result in non-beating cells, decreased cell viability and/or significantly altered gene-expression during cardiomyocyte culture46,47.
Collagenase/Dispase Roche 10269638001 can be substituted with collagenase type II from Worthington
Collagenase type II3 Worthington CLS-2 substitute for Collagenase/Dispase mix from Roche
1x trypsin solution (0.25%) with EDTA e.g. cellgro 25-053-CI  
1x Penicillin/ Streptomycin solution with EDTA in HBSS e.g. cellgro 30-002-Cl  
1x PBS (without Ca2+, Mg2+) e,g, cellgro 21-040-CV  
HBSS (Hank’s balanced salt solution; without Ca2+, Mg2+) 4 e.g. cellgro 21-022-CV  
DMEM high glucose e.g. cellgro 10-013-CV  
M-199 e.g. cellgro 10-060-CV  
fetal bovine serum e.g. cellgro 35-011-CV cell-culture grade
horse serum e.g. cellgro 35-030-CV cell-culture grade
Leibovitz L-155 e.g. cellgro 10-045-CV  
AraC (Cytosine-B-D-arabino-furanoside hydrochloride) Sigma C-6645 proliferation inhibitor, prepare 1 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C
phenylephrine Sigma P-6126 chronotropic agent, prepare 100 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C or -20 °C
isoproterenol hydrochloride Sigma I-6501 chronotropic agent, prepare 1 mM stock solution in H2O, filter sterilize, store at 4 °C or -20 °C
0.1% collagen solution Sigma C-8919 extracellular matrix for coating
3 mg/ml collagen type 1 solution Advanced BioMatrix 5005-B alternative to Sigma collagen solution
cell strainer e.g. Fisherbrand 22363548 appropriate filter size:40 μm-100 μm
syringe filter 0.2 μm e.g. Fisherbrand 09-719C for sterile filtration of digestion medium
straight scissors e.g. Fine Sciences Tools 91460-11  
curved scissors e.g. Fine Science Tools 91461-11  
Dumont No. 7 forceps e.g. Fine Science Tools 91197-00  
perforated spoon e.g. Fine Science Tools 10370-19 optional, for transfer of heart tissue
Trypan blue e.g. Gibco 15250-061 live cell staining
Neubauer hemocytometer e.g. Prosource Scientific 3500 alternatively use: disposable hemocytometer C-chip or automated cell counting systems
50 ml Falcon tubes e.g. Fisherbrand 14-432-23  
15 ml Falcon tubes e.g. Fisherbrand 05-527-90  
20 ml syringe e.g. BD Medical 14-820-19  
10 ml serological pipette e.g. Falcon 357551  
30 mm cell culture dish e.g. Nunc 153066 for standard culture of cardiomyocytes
30 mm cell culture dish, glass bottom MatTek P35G-0-10-C for live cell imaging with inverted microscope
10 cm cell culture dish e.g. Nunc 172958 for preplating
Escort III Sigma L3037 for liposomal transfection, alternatively use lipofectamin 2000
Lipofectamine 2000 Life Technologies, Invitrogen 52887 substitute for Escort III
      Buffers and media:
  • Isolation medium (filter sterilize)
    20 mM BDM
    0.0125% trypsin
    in HBSS4 (without Ca2+, Mg2+)
  • Digestion medium (filter sterilize)
    20 mM BDM
    1.5 mg/ml Roche Collagenase/Dispase enzyme mix
    in L15 medium
  • Plating medium
    65% DMEM high glucose
    19% M-199
    10% horse serum
    5% fetal calf serum
    1% penicillin/streptomycin
  • Maintenance medium
    78% DMEM high glucose
    17% M-199
    4% horse serum
    1% penicillin/streptomycin
    optional:
    1 μM AraC
    1 μM isoproterenol or 0.1 mM phenylephrine
The plating and maintenance medium can be stored at 4 °C for up to 6 months.

Referências

  1. Harary, I., Farley, B. In vitro studies of single isolated beating heart cells. Science. 131, 1674-1675 (1960).
  2. Harary, I., Farley, B. In vitro studies on single beating rat heart cells. I. Growth and organization. Exp. Cell Res. 29, 451-465 (1963).
  3. Worthington Biochemical Corp. . Worthington Enzyme Manual. , (2012).
  4. Hanks, J. H., Wallace, R. E. Relation of oxygen and temperature in the preservation of tissues by refrigeration. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 71, 196-200 (1949).
  5. Leibovitz, A. The Growth and Maintenance of Tissue-Cell Cultures in Free Gas Exchange with the Atmosphere. Am. J. Hyg. 78, 173-180 (1963).
  6. Mulieri, L. A., Hasenfuss, G., Ittleman, F., Blanchard, E. M., Alpert, N. R. Protection of human left ventricular myocardium from cutting injury with 2,3-butanedione monoxime. Circ. Res. 65, 1441-1449 (1989).
  7. Thum, T., Borlak, J. Butanedione monoxime increases the viability and yield of adult cardiomyocytes in primary cultures. Cardiovasc Toxicol. 1, 61-72 (2001).
  8. Verrecchia, F., Herve, J. C. Reversible blockade of gap junctional communication by 2,3-butanedione monoxime in rat cardiac myocytes. Am. J. Physiol. 272, 875-885 (1997).
  9. Allen, T. J., Chapman, R. A. The effect of a chemical phosphatase on single calcium channels and the inactivation of whole-cell calcium current from isolated guinea-pig ventricular myocytes. Pflugers Arch. 430, 68-80 (1995).
  10. Mitcheson, J. S., Hancox, J. C., Levi, A. J. Cultured adult cardiac myocytes: future applications, culture methods, morphological and electrophysiological properties. Cardiovasc. Res. 39, 280-300 (1998).
  11. Piper, H. M., Probst, I., Schwartz, P., Hutter, F. J., Spieckermann, P. G. Culturing of calcium stable adult cardiac myocytes. J. Mol. Cell Cardiol. 14, 397-412 (1982).
  12. Claycomb, W. C., Palazzo, M. C. Culture of the terminally differentiated adult cardiac muscle cell: a light and scanning electron microscope study. Dev. Biol. 80, 466-482 (1980).
  13. Eppenberger, M. E., et al. Immunocytochemical analysis of the regeneration of myofibrils in long-term cultures of adult cardiomyocytes of the rat. Dev. Biol. 130, 1-15 (1988).
  14. Eppenberger, H. M., Hertig, C., Eppenberger-Eberhardt, M. Adult rat cardiomyocytes in culture A model system to study the plasticity of the differentiated cardiac phenotype at the molecular and cellular levels. Trends Cardiovasc Med. 4, 187-193 (1994).
  15. Arber, S., et al. MLP-deficient mice exhibit a disruption of cardiac cytoarchitectural organization, dilated cardiomyopathy, and heart failure. Cell. 88, 393-403 (1997).
  16. Toraason, M., Luken, M. E., Breitenstein, M., Krueger, J. A., Biagini, R. E. Comparative toxicity of allylamine and acrolein in cultured myocytes and fibroblasts from neonatal rat heart. Toxicology. 56, 107-117 (1989).
  17. Worthington Biochemical Corp. . Worthington Tissue Dissection Guide. , (2012).
  18. Bashor, M. M. Dispersion and disruption of tissues. Methods Enzymol. 58, 119-131 (1979).
  19. Speicher, D. W., McCarl, R. L. Pancreatic enzyme requirements for the dissociation of rat hearts for culture. In Vitro. 10, 30-41 (1974).
  20. Gross, W. O., Schopf-Ebner, E., Bucher, O. M. Technique for the preparation of homogeneous cultures of isolated heart muscle cells. Exp Cell Res. 53, 1-10 (1968).
  21. Freshney, R. I. . Culture of animal cells : a manual of basic technique and specialized applications. , (2010).
  22. Lange, S., Perera, S., Teh, P., Chen, J. Obscurin and KCTD6 regulate cullin-dependent small ankyrin-1 (sAnk1.5) protein turnover. Mol Biol Cell. , (2012).
  23. Sen, A., Dunnmon, P., Henderson, S. A., Gerard, R. D., Chien, K. R. Terminally differentiated neonatal rat myocardial cells proliferate and maintain specific differentiated functions following expression of SV40 large T antigen. J. Biol. Chem. 263, 19132-19136 (1988).
  24. Evans, H. J., Goodwin, R. L. Western array analysis of cell cycle protein changes during the hyperplastic to hypertrophic transition in heart development. Mol. Cell Biochem. 303, 189-199 (2007).
  25. Bakunts, K., Gillum, N., Karabekian, Z., Sarvazyan, N. Formation of cardiac fibers in Matrigel matrix. Biotechniques. 44, 341-348 (2008).
  26. Fink, C., et al. Chronic stretch of engineered heart tissue induces hypertrophy and functional improvement. FASEB J. 14, 669-679 (2000).
  27. Nawroth, J. C., et al. A tissue-engineered jellyfish with biomimetic propulsion. Nat. Biotechnol. 30, 792-797 (2012).
  28. Das, M., et al. Long-term culture of embryonic rat cardiomyocytes on an organosilane surface in a serum-free medium. Biomaterials. 25, 5643-5647 (2004).
  29. DeQuach, J. A., et al. Simple and high yielding method for preparing tissue specific extracellular matrix coatings for cell culture. PLoS One. 5, e13039 (2010).
  30. VanWinkle, W. B., Snuggs, M. B., Buja, L. M. Cardiogel: a biosynthetic extracellular matrix for cardiomyocyte culture. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 32, 478-485 (1996).
  31. Karliner, J. S., Simpson, P. C., Taylor, J. E., Honbo, N., Woloszyn, W. Adrenergic receptor characteristics of cardiac myocytes cultured in serum-free medium: comparison with serum-supplemented medium. Biochem Biophys Res Commun. 128, 376-382 (1985).
  32. Steinhelper, M. E., et al. Proliferation in vivo and in culture of differentiated adult atrial cardiomyocytes from transgenic mice. Am. J. Physiol. 259, H1826-H1834 (1990).
  33. Ahuja, P., Perriard, E., Perriard, J. C., Ehler, E. Sequential myofibrillar breakdown accompanies mitotic division of mammalian cardiomyocytes. J. Cell Sci. 117, 3295-3306 (2004).
  34. Iwaki, K., Sukhatme, V. P., Shubeita, H. E., Chien, K. R. Alpha- beta-adrenergic stimulation induces distinct patterns of immediate early gene expression in neonatal rat myocardial cells. fos/jun expression is associated with sarcomere assembly; Egr-1 induction is primarily an alpha 1-mediated response. J. Biol. Chem. 265, 13809-13817 (1990).
  35. Kirshenbaum, L. A., MacLellan, W. R., Mazur, W., French, B. A., Schneider, M. D. Highly efficient gene transfer into adult ventricular myocytes by recombinant adenovirus. J. Clin. Invest. 92, 381-387 (1993).
  36. Maeda, Y., et al. Adeno-associated virus-mediated transfer of endothelial nitric oxide synthase gene inhibits protein synthesis of rat ventricular cardiomyocytes. Cardiovasc Drugs Ther. 15, 19-24 (2001).
  37. Zhao, J., et al. Lentiviral vectors for delivery of genes into neonatal and adult ventricular cardiac myocytes in vitro and in vivo. Basic Res. Cardiol. 97, 348-358 (2002).
  38. Djurovic, S., Iversen, N., Jeansson, S., Hoover, F., Christensen, G. Comparison of nonviral transfection and adeno-associated viral transduction on cardiomyocytes. Mol. Biotechnol. 28, 21-32 (2004).
  39. van Bever, L., et al. Pore loop-mutated rat KIR6.1 and KIR6.2 suppress KATP current in rat cardiomyocytes. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, 850-859 (2004).
  40. Sakai, K., Akima, M., Tsuyama, K. Evaluation of the isolated perfused heart of mice, with special reference to vasoconstriction caused by intracoronary acetylcholine. J. Pharmacol Methods. 10, 263-270 (1983).
  41. Reichelt, M. E., Willems, L., Hack, B. A., Peart, J. N., Headrick, J. P. Cardiac and coronary function in the Langendorff-perfused mouse heart model. Exp Physiol. 94, 54-70 (2009).
  42. Tian, R. Assessment of cardiac function and energetics in isolated mouse hearts using 31P NMR spectroscopy. J. Vis. Exp. (42), e2069 (2010).
  43. Liao, R., Podesser, B. K., Lim, C. C. The continuing evolution of the Langendorff and ejecting murine heart: new advances in cardiac phenotyping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303, H156-H167 (2012).
  44. Zakharova, L., Nural-Guvener, H., Gaballa, M. A. Cardiac explant-derived cells are regulated by Notch-modulated mesenchymal transition. PLoS One. 7, e37800 (2012).
  45. Rudy, D. E., Yatskievych, T. A., Antin, P. B., Gregorio, C. C. Assembly of thick, thin, and titin filaments in chick precardiac explants. Dev. Dyn. 221, 61-71 (2001).
  46. Thum, T., Borlak, J. Reprogramming of gene expression in cultured cardiomyocytes and in explanted hearts by the myosin ATPase inhibitor butanedione monoxime. Transplantation. 71, 543-552 (2001).
  47. Kabaeva, Z., Zhao, M., Michele, D. E. Blebbistatin extends culture life of adult mouse cardiac myocytes and allows efficient and stable transgene expression. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 294, H1667-H1674 (2008).
check_url/pt/50154?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ehler, E., Moore-Morris, T., Lange, S. Isolation and Culture of Neonatal Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (79), e50154, doi:10.3791/50154 (2013).

View Video