Summary

Optagelse elektrisk aktivitet fra Identificerede Neuroner i ubeskadiget Brain af transgene fisk

Published: April 30, 2013
doi:

Summary

I denne video, vil vi vise, hvordan man optager elektriske aktivitet fra identificerede enkeltstoffer neuroner i en hel hjerne forberedelse, som bevarer komplekse neurale kredsløb. Vi bruger transgene fisk, hvor gonadotropin-releasing hormon (GnRH) neuroner er genetisk kodet med et fluorescerende protein til identifikation i den intakte hjerne forberedelse.

Abstract

Forstå cellens fysiologi af neurale kredsløb, der regulerer kompleks adfærd er stærkt forbedret ved hjælp af modelsystemer, hvor dette arbejde kan udføres i en intakt hjerne forberedelse, hvor neurale kredsløb af CNS forbliver intakt. Vi bruger transgene fisk, hvor gonadotropin-releasing hormon (GnRH) neuroner er genetisk kodet med grønt fluorescerende protein til identifikation i den intakte hjerne. Fisk har flere populationer af GnRH neuroner og deres funktioner er afhængige af deres placering i hjernen og GnRH gen, de udtrykker 1.. Vi har fokuseret vores demonstration den GnRH3 neuroner beliggende i de terminale nerver (TN) er forbundet med de olfaktoriske pærer med den intakte hjerne transgene Medaka fisk (figur 1B og C). Undersøgelser tyder på, at Medaka TN-GnRH3 neuroner er neuromodulatory, der handler som en transmitter af oplysninger fra det ydre miljø til det centrale nervesystem; they ikke spille en direkte rolle i reguleringen af hypofyse-gonade-funktioner, som gør den velkendte hypothalamus GnRH1 neuroner 2, 3. Den tonic mønster af spontan handling potentiale affyring af TN-GnRH3 neuroner er en iboende egenskab 4-6, hyppigheden hvoraf moduleres af visuelle referencer fra artsfæller 2 samt neuropeptidet kisspeptin 1 5. I denne video, bruger vi en stabil linje af transgen Medaka hvor TN-GnRH3 neuroner udtrykker et transgen indeholdende promoter region Gnrh3 knyttet til øget grønt fluorescerende protein 7 for at vise dig, hvordan du identificerer neuroner og overvåge deres elektriske aktivitet i hele hjernen forberedelse 6..

Protocol

1.. Dissektion af Brains fra Adult Medaka Bedøve voksen mand eller kvinde (figur 1A) ved at nedsænke i 5 ml MS-222 (150 mg / l, pH 7,4), vente et par minutter efter gæller bevægelser er ophørt før decapitating. Alle procedurer blev godkendt af Institutional Animal Care og brug Udvalg University of California-Los Angeles. Halshugge fisken i fisk saltvand ved caudale ende af Laag med en saks i et 60-mm diameter petriskål. Transfer fisk hoved til en 35-mm petriskål, h…

Representative Results

Et eksempel på bilaterale klynger af GFP-mærkede TN-GnRH3 neuroner fra det udskårne hjerne Medaka fisk er vist i figurerne 1B og 1C. Hver klynge indeholder omkring 8-10 GnRH neuroner. De spontane neuronale aktiviteter target TN-GnRH3 blev registreret i den nuværende-clamp-tilstand (I = 0) med typiske fyring satser af 0,5-6 Hz. Mønsteret af handling potentiale fyring er typisk en tonic eller slå mønster, med en temmelig regelmæssig interspike interval. Sample spor er vist i <stro…

Discussion

GnRH 3: GFP transgene fisk giver unikke modeller til at studere neurofysiologiske mekanismer bag neuronal integration og regulering i central kontrol af adfærd, der både direkte og indirekte involveret i reproduktion 3, 8-10. En af de betydelige fordele ved denne model er, at mange GnRH3 neuroner udtrykker GFP er tæt på den ventrale overflade af hjernen, der giver mulighed for forholdsvis let adgang til de neuroner elektrofysiologiske optagelse uden at forstyrre neurale kredsløb 6, 9, 11, 1…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Meng-Chin Lin og Ms Yuan Dong til teknisk bistand. Dette arbejde blev støttet af en bevilling fra National Institutes of Health HD053767 (underleverance til NLW) og af midler fra Institut for Fysiologi og kontor vicekansler for forskning, University of California-Los Angeles (NLW).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Microscope Olympus BX50W (Upright)
Amplifier Axon Instruments Axoclamp 200B
A-D converter Computer Interference Corp. Digidata ITC-18
Cooled CCD camera PCO Computer Optics Sensicam
Xenon lamp Sutter Instruments Co.
GFP filter set Chroma Technologies
Imaging Software Intelligent Imaging Innovations Slidebook software
Electrophysiology Data Acquisition Software Axon Instruments Axograph software
Electrophysiology Data Acquisition Software AD Instruments Inc. PowerLab
Headstage for electrophysiology Axon Instruments CV 203BU
Micromanipulator Sutter Instrument Co MP-285
Recording Chamber Platform Warner Instrument Corp. P1
Recording Chamber Warner Instrument Corp. RC-26G
Electrode Puller Sutter instruments P87
Filament for electrode puller Sutter Instruments FB330B 3.0 mm wide trough filament
1.5 mm glass capillaries World Precision Instruments 1B150-4 Microelectrode for recording
Syringe Becton Dickinson 309586 3 ml
MS-222 Sigma E10521-10G Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt
Fish saline mM: 134 NaCl; 2.9 KCl; 2.1 CaCl2; 1.2 MgCl2; 10 HEPES
Electrode solution (loose-patch) mM: 150 NaCl; 3.5 KCl; 2.5 CaCl2; 1.3 MgCl2; 10 HEPES; 10 glucose
Electrode solution (whole-cell patch) mM: 112.5 K-gluconate; NaCl; 17.5 KCl; 0.5 CaCl2; 1 MgCl2; 5 MgATP; 1 EGTA; 10 HEPES; 1 GTP; 0.1 leupeptin;10 phospho-creatine

References

  1. Kah, O., Lethimonier, C., Lareyre, J. J. Gonadotrophin-releasing hormone (GnRH) in the animal kingdom. J. Soc. Biol. 198 (1), 53-60 (2004).
  2. Ramakrishnan, S., Wayne, N. L. Social cues from conspecifics alter electrical activity of gonadotropin-releasing hormone neurons in the terminal nerve via visual signals. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 297 (1), R135-R141 (2009).
  3. Abe, H., Oka, Y. Mechanisms of neuromodulation by a nonhypophysiotropic GnRH system controlling motivation of reproductive behavior in the teleost. 57 (6), 665-674 (2011).
  4. Oka, Y. Tetrodotoxin-resistant persistent Na+ current underlying pacemaker potentials of fish gonadotrophin-releasing hormone neurones. J. Physiol. 482 (Pt. 1), 1-6 (1995).
  5. Zhao, Y., Wayne, N. L. Effects of Kisspeptin1 on Electrical Activity of an Extrahypothalamic Population of Gonadotropin-Releasing Hormone Neurons in Medaka. PLoS One. 7 (5), e37909 (2012).
  6. Wayne, N. L., et al. Whole-cell electrophysiology of gonadotropin-releasing hormone neurons that express green fluorescent protein in the terminal nerve of transgenic medaka (Oryzias latipes). Biol. Reprod. 73 (6), 1228-1234 (2005).
  7. Okubo, K., et al. Forebrain gonadotropin-releasing hormone neuronal development: insights from transgenic medaka and the relevance to X-linked Kallmann syndrome. Endocrinology. 147 (3), 1076-1084 (2006).
  8. Okubo, K., et al. A novel form of gonadotropin-releasing hormone in the medaka, Oryzias latipes. Biochem. Biophys. Res. Commun. 276 (1), 298-303 (2000).
  9. Ramakrishnan, S., et al. Acquisition of spontaneous electrical activity during embryonic development of gonadotropin-releasing hormone-3 neurons located in the terminal nerve of transgenic zebrafish (Danio rerio). Gen. Comp. Endocrinol. 168 (3), 401-407 (2010).
  10. Abraham, E., et al. Targeted gonadotropin-releasing hormone-3 neuron ablation in zebrafish: effects on neurogenesis, neuronal migration, and reproduction. Endocrinology. 151 (1), 332-340 (2010).
  11. Wayne, N. L., Kuwahara, K. Beta-endorphin alters electrical activity of gonadotropin releasing hormone neurons located in the terminal nerve of the teleost medaka (Oryzias latipes. Gen. Comp. Endocrinol. 150 (1), 41-47 (2007).
  12. Oka, Y. Three types of gonadotrophin-releasing hormone neurones and steroid-sensitive sexually dimorphic kisspeptin neurones in teleosts. J. Neuroendocrinol. 21 (4), 334-338 (2009).
  13. Molleman, A. . Patch Clamping: An Introductory Guide To Patch Clamp Electrophysiology. , (2003).
check_url/50312?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhao, Y., Wayne, N. L. Recording Electrical Activity from Identified Neurons in the Intact Brain of Transgenic Fish. J. Vis. Exp. (74), e50312, doi:10.3791/50312 (2013).

View Video