Summary

Construção de Matrizes Microdrive para gravações Neurais crônica na Awake Mice comportam

Published: July 05, 2013
doi:

Summary

A concepção e montagem de microdrives no registros eletrofisiológicos in vivo de sinais do cérebro do rato é descrito. Anexando pacotes de microeletrodos para portadores de driveable resistentes, estas técnicas permitem gravações neurais de longo prazo e estável. O design leve permite o desempenho comportamental irrestrito pelo animal após a implantação da unidade.

Abstract

Registros eletrofisiológicos State-of-the-art de cérebros de animais se comportando livremente permitem aos pesquisadores examinar simultaneamente potenciais de campo locais (LFPs) de populações de neurônios e os potenciais de ação das células individuais, como o animal se engaja em tarefas experimentalmente relevantes. Microdrives cronicamente implantados permitem gravações do cérebro para durar por períodos de várias semanas. Unidades miniaturizados e componentes leves permite que esses gravações a longo prazo para ocorrer em pequenos mamíferos, tais como ratos. Usando tetrodes, que consistem em feixes firmemente trançado de quatro eléctrodos, em que cada fio tem um diâmetro de 12,5 um, é possível isolar neurónios fisiologicamente activos superficiais nas regiões do cérebro tais como o córtex cerebral, hipocampo dorsal e subículo, bem como regiões mais profundas, tais como o estriado e amígdala. Além disso, esta técnica segura, de alta fidelidade as gravações neurais estáveis ​​como o animal é desafiado com uma variety de tarefas comportamentais. Este manuscrito descreve várias técnicas que foram otimizados para gravar a partir do cérebro do rato. Primeiro, vamos mostrar como fabricar tetrodes, carregá-los em tubos de driveable e dourar as pontas, a fim de reduzir a sua impedância de mohms a gama kohms. Em segundo lugar, vamos mostrar como construir um conjunto microdrive personalizado para transportar e mover os tetrodes verticalmente, com o uso de materiais mais baratos. Em terceiro lugar, vamos mostrar os passos para a montagem de um Microdrive disponível comercialmente (Neuralynx VersaDrive), que é projetado para transportar tetrodes independentemente móveis. Por fim, apresentamos resultados representativos de potenciais de campo locais e sinais single-unit obtidos no subiculum dorsal de ratos. Estas técnicas podem ser facilmente modificado para acomodar diferentes tipos de conjuntos de eléctrodos e os regimes de gravação no cérebro do rato.

Introduction

A utilização da técnica de microeléctrodo para gravar sinais neuronais extracelulares in vivo, tem uma longa tradição e valorizados na neuroscience 1, 2. A capacidade de gravar a atividade elétrica de várias regiões do cérebro em animais se comportando livremente, no entanto, uma tecnologia mais recente que está se tornando cada vez mais comuns, como os pacotes de software para a aquisição, análise e discriminação de sinais neurais torna-se mais sofisticada e user-friendly 3, 4. Os avanços tecnológicos do lado do software foram também acompanhadas por uma redução no peso e volume dos dispositivos implantáveis, que foram dimensionados de maneira suficiente para gravar em pequenos mamíferos, tais como ratos. A utilização de componentes de plástico leves (principalmente), os investigadores são capazes de construir microdrives que permitem o posicionamento independente de eléctrodos ou tetrodos para segmentar uma ampla variedade de regiões cerebrais 5-7. Mesmo estruturas cerebrais profundas, tais como o6 amígdala e do estriado 5, pode ser rotineiramente alvo com a seleção de um parafuso de unidade adequadamente longo. Estas técnicas de gravação permitem aos pesquisadores obter sinais neurais de alta fidelidade e estão em registrar a atividade elétrica dos neurônios registrados intracelular 8, 9. Usando esses tipos de microdrives, registramos com sucesso-unidades individuais de ratos por até dois meses após o implante 10. Além disso, a natureza dos dispositivos leve (cerca de 1,5-2,0 g) resultou em desempenho comportamental, que é comparável aos ratos não-implantados em muitas funções comportamentais. Em particular, temos demonstrado que camundongos implantados apresentam desempenho normal na novela tarefa de reconhecimento de objeto 10 ea tarefa lugar de objeto (dados não publicados).

O uso de microdrives acoplados a vários tetrodes permite aos pesquisadores para monitorar e analisar a atividade neural no nível de redeao mesmo tempo, a gravação de múltiplas unidades individuais dentro do cérebro. Gravação com estas tetrodes tem várias vantagens importantes para fins de identificação da unidade e possibilita a aquisição de alta precisão e discriminação de múltiplas unidades individuais 11. Nós descrevemos como fabricar e ouro placa pacotes tetrode e posteriormente carregá-los em portadores de eletrodos de driveable. Um tipo de suporte da unidade descrevemos está disponível comercialmente eo outro é um projeto simples, mas facilmente expansível, unidade que pode acomodar várias operadoras e arranjos tetrode sem um investimento significativo de recursos.

Protocol

1. Tetrode Fabrication Comece usando isolados 12,5 um (0,0005 ") de diâmetro do núcleo de fio de platina-irídio da Califórnia fio fino. O comprimento do fio deve ser cortado a um comprimento adequado para a estrutura de alvo. Por exemplo, para cortar o fio, pelo menos, 30 cm de comprimento para direcionar o subiculum dorsal ou hipocampo. Dobrar o fio sobre o centro de modo que existem dois fios paralelos, que será de 15 cm de comprimento. Drapejá o ponto médio deste fio ao longo de um br…

Representative Results

<p class="jove_content"> Após a implantação do microdrive e baixando os eléctrodos com os objectivos pretendidos do cérebro, a um sistema de aquisição de dados amplificado, como por exemplo um Neuralynx lince-8, é necessário para a gravação de sinais neurais. Gravações neurais representativas de potenciais de campo locais (LFPs) e potenciais de ação single-unit (muitas vezes denominados "picos") a partir da dorsal subiculum rato são mostrados na<strong> Figura 2</strong>. LFP sinais foram amostrados a 3 kHz e …

Discussion

Nós descrevemos um conjunto de técnicas para a construção de microdrives leves e compactas para a gravação de unidade extracelular e atividade potencial de campo em camundongos. Ao construir microdrives personalizados com bases formadas a partir de vidro acrílico (metacrilato de metila), o núcleo do sistema pode ser facilmente adaptado para várias unidades e para o direcionamento de uma grande variedade de regiões neurais. Nós modificamos com sucesso o sistema de gravação de múltiplos alvos cerebrais e com…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Daniel Carpi por sua ajuda e início contribuições para este projeto. Agradecemos também Lucrecia Novoa por sua assistência com obras de arte e imagens. Este trabalho foi financiado pelo NIH / NIAID programa de concessão 5P01AI073693-03.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
0.0005″ (12.5 μM) diameter Platinum-Iridium wire California Fine Wire CFW#100-167 HML VG insulated www.calfinewire.com
0.002″ (50 μM) diameter Stableohm 675 wire California Fine Wire CFW# 100-188 HML insulated Ni-Cr
polyamide tubing Polymicro Technologies 1068150020 99 micron I.D., 166 micron O.D. www.polymicro.com
brass guides World Plastics Inc 3.3 x 6.6 mm
Delrin blocks World Plastics Inc 3.13 x 2.5 mm
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 00-90 x 1/2 drive screw www.jimorrisco.com
hex brass nuts J.I. Morris Co. 00-90
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 000-120 x 3/32 EIB mount and ground screw
plexiglass acrylic Canal Street Plastics 5 mm thick, clear, www.cpcnyc.com
cyanoacrylate Krazy Glue 2 g tube
electronic interface board Neuralynx EIB-18 www.neuralynx.com
non-cyanide gold solution SIFCO SIFCO 5355 www.sifcoasc.com
VersaDrive 4 Neuralynx four tetrode model
tetrode assembly station Neuralynx
motorized tetrode spinner Neuralynx tetrode spinner 2.0
VersaDrive jig Neuralynx
soldering iron Radio Shack 64-2802B www.radioshack.com
nanoZ Neuralynx
small bit drill/driver Ram Products Rampower 35 with footpedal controller, www.ramprodinc.com
drill bits Small Parts, Inc. 3/32″ bits, www.smallpartsinc.com
dissecting microscope Olympus SZ-60 www.olympusamerica.com
heat gun Alphawire Fit gun 3 use setting “1” only, www.alphawire.com
26 AWG copper wire Arcor Electronics F26 for ground wires, www.arcorelectronics.com
soldering flux Eagle 2 oz, #205
0.02″ diameter solder Kester 24-6337-0010 www.kester.com
benchtop vise Vacu-Vise Model 300
fiber optic light Nikon MKII dual light arms, www.nikon.com
5-min epoxy Allied Electronics 25 ml, www.alliedelec.com
fine tweezers Roboz Surgical Instrument Co. RS-4907, RS-5010 INOX material, www.roboz.com
micro dissecting scissors Roboz Surgical Instrument Co. RS-5880

Table 1. Materials and reagents used for constructing tetrodes and microdrives.

Referências

  1. Recce, M. L., O’Keefe, J. The tetrode: a new technique for multi-unit extracellular recording. Soc. Neurosci. Abstr. 15, 1250 (1989).
  2. O’Keefe, J., Recce, M. Phase relationship between hippocampal place units and the EEG theta rhythm. Hippocampus. 3, 317-330 (1993).
  3. Chen, G., Wang, L. P., Tsien, J. Z. Neural population-level memory traces in the mouse hippocampus. PLoS ONE. 4 (12), e8256 (2009).
  4. Buzsáki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. The origin of extracellular fields and currents — EEG, ECoG, LFP, and spikes. Nat. Rev. Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).
  5. Tort, A. B., Kramer, M. A., et al. Dynamic cross-frequency coupling of local field potential oscillations in rat striatum and hippocampus during performance of a T-maze task. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 105 (51), 20517-20522 (2008).
  6. Seidenbecher, T., Laxmi, R., et al. Amygdalar and hippocampal theta rhythm synchronization during fear memory retrieval. Science. 301 (5634), 846-850 (2003).
  7. Yamamoto, J., Wilson, M. A. Large-scale chronically implantable precision motorized microdrive array for freely behaving animals. J. Neurophysiol. 100 (4), 2430-2440 (2008).
  8. Harris, K. D., Henze, D. A., et al. Accuracy of tetrode spike separation as determined by simultaneous intracellular and extracellular measurements. J. Neurophysiol. 84 (1), 401-414 (2000).
  9. Henze, D. A., Borhegyi, Z., et al. Intracellular features predicted by extracellular recordings in the hippocampus in vivo. J. Neurophysiol. 84 (1), 390-400 (2000).
  10. Chang, E. H., Huerta, P. T. Neurophysiological correlates of object recognition in the dorsal subiculum. Front. Behav. Neurosci. 6, 46 (2012).
  11. Gray, C. M., Maldonado, P. E., et al. Tetrodes markedly improve the reliability and yield of multiple single-unit isolation from multi-unit recordings in cat striate cortex. J. Neurosci. Methods. 63 (1-2), 43-54 (1995).
  12. O’Keefe, J., Dostrovsky, J. The hippocampus as a spatial map. Preliminary evidence from unit activity in the freely-moving rat. Brain Res. 34 (1), 171-175 (1971).
  13. Wilson, M. A., McNaughton, B. L. Dynamics of the hippocampal ensemble code for space. Science. 261 (5124), 1055-1058 (1993).
  14. Buzsáki, G. . Rhythms of the Brain. , (2006).
  15. McHugh, T. J., Blum, K. I., et al. Impaired hippocampal representation of space in CA1-specific NMDAR1 knockout mice. Cell. 87 (7), 1339-1349 (1996).
  16. Resnik, E., McFarland, J. M., et al. The effects of GluA1 deletion on the hippocampal population code for position. J. Neurosci. 32 (26), 8952-8968 (2012).
  17. Cacucci, F., Yi, M., et al. Place cell firing correlates with memory deficits and amyloid plaque burden in Tg2576 Alzheimer mouse model. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (22), 7863-7868 (2008).
  18. Sigurdsson, T., Stark, K. L., et al. Impaired hippocampal-prefrontal synchrony in a genetic mouse model of schizophrenia. Nature. 464 (7289), 763-767 (2010).
  19. Engel, A. K., Moll, C. K., et al. Invasive recordings from the human brain: clinical insights and beyond. Nat. Rev. Neurosci. 6 (1), 35-47 (2005).
  20. Cash, S. S., Halgren, E., et al. The human K-complex represents an isolated cortical down-state. Science. 324 (5930), 1084-1087 (2009).
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Citar este artigo
Chang, E. H., Frattini, S. A., Robbiati, S., Huerta, P. T. Construction of Microdrive Arrays for Chronic Neural Recordings in Awake Behaving Mice. J. Vis. Exp. (77), e50470, doi:10.3791/50470 (2013).

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