La migrazione transeteliale neutrofila in risposta all’infezione batterica della mucosa contribuisce alla lesione epiteliale e alla malattia clinica. È stato sviluppato un modello in vitro che combina agenti patogeni, neutrofili umani e strati cellulari epiteliali umani polarizzati coltivati su filtri transwell per facilitare le indagini verso lo svelamento dei meccanismi molecolari che orchestrano questo fenomeno.
Le superfici mucose fungono da barriere protettive contro gli organismi patogeni. Le risposte immunitarie innate vengono attivate al momento del rilevamento dell’agente patogeno che porta all’infiltrazione di tessuti con cellule infiammatorie migratorie, principalmente neutrofili. Questo processo ha il potenziale per essere distruttivo per i tessuti se eccessivo o tenuto in uno stato irrisolto. I modelli in vitro coculati possono essere utilizzati per studiare i meccanismi molecolari unici coinvolti nella migrazione transeteliale neutrofila indotta da agenti patogeni. Questo tipo di modello offre versatilità nella progettazione sperimentale con l’opportunità di manipolazione controllata dell’agente patogeno, della barriera epiteliale o del neutrofilo. L’infezione patogena della superficie apicale dei monostrati epiteliali polarizzati coltivati su filtri transwell permeabili istiga la migrazione basolaterale ad apicale transeteliale dei neutrofili applicata alla superficie basolaterale. Il modello in vitro descritto nel presente documento dimostra i molteplici passaggi necessari per dimostrare la migrazione neutrofila attraverso un monostrato epiteliale polmonare polarizzato che è stato infettato da P. aeruginosa patogena (PAO1). Viene descritta la semina e la 155azione di transmeabili con cellule epiteliali polmonari derivate dall’uomo, insieme all’isolamento dei neutrofili da tutto il sangue umano e alla ristrutturazione di PAO1 e K12 E. coli nonpathogenico (MC1000). Il processo di emigrazione e l’analisi quantitativa dei neutrofili migrati con successo che sono stati mobilitati in risposta all’infezione patogena sono mostrati con dati rappresentativi, compresi i controlli positivi e negativi. Questo sistema di modelli in vitro può essere manipolato e applicato ad altre superfici mucose. Le risposte infiammatorie che comportano un’eccessiva infiltrazione di neutrofili possono essere distruttive per ospitare i tessuti e possono verificarsi in assenza di infezioni patogene. Una migliore comprensione dei meccanismi molecolari che promuovono la migrazione transeteliale neutrofila attraverso la manipolazione sperimentale del sistema di saggi di cocultura in vitro descritto nel presente documento ha un potenziale significativo per identificare nuovi obiettivi terapeutici per una serie di malattie infettive e infiammatorie mucose.
Le superfici mucose fungono da barriere fisiche e immunologiche che forniscono protezione contro le minacce esterne pervasivenell’ambiente 1,2. Questa barriera epiteliale protettiva può essere compromessa quando gli organismi patogeni invadono2. Nel caso di un agente patogeno batterico, questo incontro spesso istiga un processo infiammatorio attivando il sistema immunitario innato e innescando una rapida mobilitazione dei granulociti del primo soccorritore noti come neutrofili2-4. Gli agenti chemiotattici che facilitano il reclutamento dei neutrofili sono prodotti in parte dalle cellule epiteliali mucose che cercano di liberare l’ospite dall’agente patogeno ofaoffendente 2-4. Un’infiltrazione neutrofila eccessiva o irrisolta della superficie epiteliale mucosa può causare una patologiasignificativa 1,5. Questa è una conseguenza del danno tissutale non specifico causato dall’arsenale neutrofilo antibatterico5-7. In questi casi, la capacità di clearance batterica dei neutrofili è oscurata dalla distruzione del tessuto ospite durante un insulto infettivo. L’interruzione della funzione protettiva di barriera epiteliale può portare a una maggiore esposizione del tessuto sottostante a microrganismi e / o tossine, esacerbando ulteriormente la patologiadella malattia 8,9. Queste conseguenze possono essere osservate in più sistemi di organi tra cui il polmone e il trattodigestivo 1,5. Inoltre, condizioni infiammatorie non infettive come gravi attacchi di asma, broncopneumopatia cronica ostruttiva (BPCO), sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS) e malattia infiammatoria intestinale (IBD) sono contrassegnate dalla violazione patologica della barriera epiteliale mucosa da un’eccessiva risposta neutrofila4,5,10-12.
Il complesso processo di reclutamento dei neutrofili a seguito di infezione della mucosa comporta diversi passaggicompartimentati 1,5,13,14. In primo luogo, i neutrofili devono partire dalla circolazione attraverso una serie di interazioni cellula-cellula che facilitano la migrazione trans-endoteliale1,13. I neutrofili navigano quindi nello spazio interstiziale esistente contenente matriceextracellulare 1,14. Per raggiungere il lume della mucosa infetta, i neutrofili devono quindi migrare attraverso la barriera epiteliale1,4,5. Questo intricato fenomeno multistep è spesso studiato in aggregato utilizzando modelli animali in vivo di infezione15. Tali modelli sono utili per stabilire la necessità di fattori specifici, come chemiochine, molecole di adesione o percorsi di segnalazione che partecipano al processo complessivo ma sono in gran parte inadeguati per risolvere i contributi molecolari critici per ogni fasecompartimentata distinta 16. I sistemi in vitro coculati che modellano la migrazione trans-endoteliale, trans-matriciale o transepiteliale dei neutrofili sono stati particolarmente utili aquesto proposito 1,14,16,17.
È stato sviluppato un solido sistema di dosaggio della cocoltura allo scopo di decifrare i meccanismi responsabili della migrazione transeteliale neutrofila in risposta all’infezionepatogena 18-22. Questo modello prevede di infettare la superficie apicale degli strati cellulari epiteliali umani polarizzati con un agente patogeno batterico seguito dall’applicazione di neutrofili umani appena isolati sulla superficie basolaterale18-22. I neutrofili migrano attraverso la barriera epiteliale in risposta a prodotti chemiotattici derivati epiteliali secreti a seguito di infezionepatogena 18,21-23. Questo sistema modello è stato utilizzato utilizzando colture epiteliali intestinali e polmonari esposte a patogeni batterici specifici del tessuto appropriati e ha svelato nuovi meccanismi molecolari probabilmente importanti per il processo di reclutamento dei neutrofili durante l’infezione dellamucosa 3,8,19,24-28. La forza di questo modello di cocultura in vitro è che un approccio riduzionista consente allo sperimentatore di manipolare sperimentalmente l’agente patogeno, la barriera epiteliale e / o il neutrofilo in un sistema ben controllato, altamente riproducibile, abbastanza economico. Le informazioni raccolte da questo approccio possono essere efficacemente sfruttate per condurre analisi mirate degli eventi compartimentati durante il reclutamento di neutrofili utilizzando modelli di infezione in vivo 22,29,30.
Questo articolo illustra i molteplici passaggi necessari per la corretta istituzione di questo modello riproducibile per esplorare la migrazione transeteliale neutrofila indotta da agenti patogeni. Le barriere epiteliali polmonari infettate dall’agente patogeno Pseudomonas aeruginosa sono presenti in questo articolo; tuttavia, altri epiteli tissutali e agenti patogeni possono essere sostituiti con piccole modifiche. La semina e la valutazione di strati di cellule epiteliali polmonari polarizzate su filtri transwell permeabili rivestiti di collagene invertito è dettagliata nel presente documento, così come la crescita della P. aeruginosa patogena e l’isolamento dei neutrofili dal sangue intero. Come questi componenti sono combinati per osservare la migrazione transeteliale neutrofila indotta da agenti patogeni viene presentato insieme ad opportuni controlli positivi e negativi per stabilire un saggio riproducibile. La versatilità di questo approccio per esaminare vari aspetti della migrazione transeteliale neutrofila indotta da agenti patogeni viene discussa con riferimento a studi specifici in letteratura.
La migrazione neutrofila attraverso le superfici epiteliali mucose è una caratteristica comune nella patologia della malattia a seguito dell’infezione da agenti patogenibatterici 3. La metodologia descritta nel presente documento offre un approccio rapido e diretto per isolare sperimentalmente questo evento discreto utilizzando un sistema di saggi di cocoltura in vitro derivato da cellule umane che modella una caratteristica del processo infiammatorio innescato da infezioni batteriche. Questo sistema…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato supportato finanziariamente da NIH (1 R01 AI095338-01A1).
NCl-H292 cells | ATCC | CRL-1848 | |
RPMI-1640 medium | ATCC | 30-2001 | |
Pseudomonas aeruginosa PAO1 | ATCC | #47085 | |
Escherichia coli MC1000 | ATCC | #39531 | |
D-PBS (1x) liquid | Invitrogen | 14190-144 | without calcium and magnesium |
Heat Inactivated Fetal bovine serum | Invitrogen | 10082-147 | 10% added to culture medium |
Penicillin-Streptomycin | Invitrogen | 15140-122 | 100x: 10,000 units of penicillin and 10,000 µg of streptomycin per ml. |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Invitrogen | 25300-062 | 50 ml aliquots are stored frozen at -20 ºC. Aliquot in use can be stored at 4 ºC short-term. |
Hank's Balanced Salt Solution – HBSS(-) | Invitrogen | 14175-079 | Sterile, without calcium and magnesium |
Trypan Blue Solution | Invitrogen | 15250-061. | Stock = 0.4% |
Collagen, Rat Tail | Invitrogen | A10483-01 | Can also be isolated in the laboratory directly from the tails of rats using standard protocols |
Citric acid | Sigma-Aldrich | C1909-500G | Component of 1 M citrate buffer and acid citrate dextrose (ACD) solution |
Sodium Citrate | Sigma-Aldrich | S4641-500G | Component of 1 M citrate buffer |
Dextrose anhydrous | Sigma-Aldrich | D8066-250G | Component of acid citrate dextrose (ACD) solution |
Ammonium Chloride | Sigma-Aldrich | 213330-500G | Component of red blood cell (RBC) lysis buffer |
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S6014-500G | Component of red blood cell (RBC) lysis buffer |
EDTA | Sigma-Aldrich | ED-100G | Component of red blood cell (RBC) lysis buffer |
HBSS(+) powder | Sigma-Aldrich | H1387-10L | Key component of HBSS+ |
HEPES | Sigma-Aldrich | H3375-500G | Component of HBSS+ |
Sigmacote | Sigma-Aldrich | SL2-25ML | Follow vendor instructions to coat glass pipette tips |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T-9284 | |
2,2'-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS) | Sigma-Aldrich | A9941-50TAB | Key component of ABTS substrate solution |
30% Hydrogen Peroxide Solution | Sigma-Aldrich | H1009-100ML | Component of ABTS substrate solution |
N-Formyl-Met-Leu-Phe (fMLP or fMLF) | Sigma-Aldrich | F-3506 | A Stock solution of 10 mM in DMSO should be prepared and aliquots stored at -20 ºC. |
Gelatin Type B | Fisher Scientific | M-12026 | |
Pseudomonas isolation agar | Fisher Scientific | DF0927-17-1 | Follow manufacturer’s instructions to make PIA plates |
Ficoll-Paque PLUS | Fisher Scientific | 45-001-749 | Optional, can improve neutrophil purity |
Name of Material / Equipment | Company | Catalog Number | Comments |
24-well migration plate | Corning Incorporated | #3524 | |
24-well wash plate | Falcon | 35-1147 | Can be reused if soaked in 70% ethanol and washed thoroughly prior to reuse |
96-well plate | Fisher Scientific | #12565501 | |
Transwell Permeable Supports | Corning Incorporated | #3415 | Polycarbonate; Diameter: 6.5 mm; Growth area: 0.33 cm2; Dish style: 24-well plate; Pore size: 3.0 µm |
Petri dish | Falcon | 35-1013 | Each Petri dish holds 24 inverted 0.33 cm2 Transwells. |
500 ml 0.2 μm filter / flask | Fisher Scientific | 09-740-25A | To sterilize acid citrate dextrose (ACD) solution |
5-3/4 in glass Pasteur pipette | Fisher Scientific | 13-678-20A | Coat tips with Sigmacote prior to use |
Hemostat | Fisher Scientific | 13-812-14 | Curved, Serrated |
Invertoskop Inverted Microscope | Zeiss | #342222 | |
Versa-Max Microplate Reader | Molecular Devices | #432789 |