Summary

Isolering av Murint Lymph Node stromale celler

Published: August 19, 2014
doi:

Summary

Isolation of lymph node stromal cells is a multistep procedure including enzymatic digestion and mechanical disaggregation to obtain fibroblastic reticular cells, lymphatic and blood endothelial cells. In the described procedure, a short digestion is combined with automated mechanical disaggregation to minimize surface marker degradation of viable lymph node stromal cells.

Abstract

Secondary lymphoid organs including lymph nodes are composed of stromal cells that provide a structural environment for homeostasis, activation and differentiation of lymphocytes. Various stromal cell subsets have been identified by the expression of the adhesion molecule CD31 and glycoprotein podoplanin (gp38), T zone reticular cells or fibroblastic reticular cells, lymphatic endothelial cells, blood endothelial cells and FRC-like pericytes within the double negative cell population. For all populations different functions are described including, separation and lining of different compartments, attraction of and interaction with different cell types, filtration of the draining fluidics and contraction of the lymphatic vessels. In the last years, different groups have described an additional role of stromal cells in orchestrating and regulating cytotoxic T cell responses potentially dangerous for the host.

Lymph nodes are complex structures with many different cell types and therefore require a appropriate procedure for isolation of the desired cell populations. Currently, protocols for the isolation of lymph node stromal cells rely on enzymatic digestion with varying incubation times; however, stromal cells and their surface molecules are sensitive to these enzymes, which results in loss of surface marker expression and cell death. Here a short enzymatic digestion protocol combined with automated mechanical disruption to obtain viable single cells suspension of lymph node stromal cells maintaining their surface molecule expression is proposed.

Introduction

Lymfeknuter er spesialiserte avdelinger der adaptive immunresponser mot utenlandske og selvantigener er initiert og koordinert. Fremgangsmåten presentert her beskriver en kort enzymatisk fordøyelse kombinert med automatisert mekanisk pipettering for å oppnå lymfeknute enkeltcellesuspensjon, og få tilgang til levedyktige lymfeknute stromale celler som opprettholder overflaten ekspresjon av flere molekyler.

Lymfeknute stromal celler danner stillaset av lymfeknute og oppfylle tre viktige funksjoner: for det første de filtrerer kroppsvæsker for å prøve antigener, patogener og deres patogen forbindelse molekylmønster (PAMPs) samt cytokiner og fare forbundet molekylmønster (demper) tilstede i legemet. For det andre, de tiltrekker og instruere antigenpresenterende celler (APC) og lymfocytter til å samhandle og initiere adaptive immunresponser; og tredje, gir de en strukturell miljø for homeostase og differensiering av lymfocytter 1-3. Under betennelse lymfeknute stromale celler produsere vekstfaktorer, cytokiner og chemokiner, tilpasse seg hevelse og dermed organisere samspillet mellom dendrittiske celler (DCS), T-og B-celler. Orkestrering av immunresponser er kun mulig på grunn av den komplekse strukturelle arkitektur dannet av forskjellige stromal cellepopulasjoner.

Lymfeknute stromale celler er CD45 negative celler og kan være preget av uttrykket av CD31 eller gp38 i fibrinoblast og endotelceller en -6. Gp38 + CD31 definerer T sone retikulære celler (TRC, også kjent som FRC: fibrinoblast retikulære celler), gp38 + CD31 + definerer lymfatiske endotelceller (LMU), gp38 CD31 + definerer blod endotelceller (BEC). Videre karakterisering av subpopulasjoner avslørte eksistensen av andre lymfeknute stromale celler. Faktisk ble en liten pericyte-lignende cellepopulasjon, karakterisert innenforgp38 CD31 befolkning 7. Derfor er tilpasning av isoleringsprosedyren fordelaktig for identifisering og karakterisering av de funksjonelle egenskaper av forskjellige lymfeknute stromale celler.

Før utviklingen av lymfeknute stromale celler fordøyelsen protokoller studiet av lymfeknute stromale celler var begrenset til in situ-observasjoner ved hjelp av vev-delen, og mikroskopi. Likevel, strukturelle og funksjonelle studier viste viktige kjennetegn ved lymfeknute stromale celler. Lymfeknute stromale celler er forbundet med podoplanin, kollagen og ekstracellulære matriks (ECM) proteiner for å danne en kompleks tre-dimensjonal struktur kalt ledningssystemet, som transporterer lymfe og forbundet-med lav molekylmasse fra proteiner subkapsulær sinus av lymfeknute til den høye endotelial venules i T-celler sone 8. DC er i nær kontakt med Stroma celler og kan observeres som stikker ut i rørformet conduit struktur for å prøve væske og oppdage antigener åtte. Samspillet av lymfeknute stromale celler (TRC og LMU) med DCs er mediert av utgivelsen og presentasjon av kjemokiner CCL21 og CCL19 9,10. CCL19 og CCL21 er anerkjent av CCR7 reseptor tilrettelegge DCs og T-celler til å migrere til lymfeknute T-celle sone 4,11. Til tross for å bruke lignende kjemokiner, DCS og T-celler har forskjellige trekkruter til lymfeknutene 12. Senere, ved hjelp av enzymatisk fordøyelse av lymfeknute og isolering av rene lymfeknute stromale celler, ble funksjonelle studier utført på rollen til de ulike lymfeknute stromale celler og deres evne til å samhandle med DC og T / B-celler 6,13. Først, krysstale mellom IFN-γ produserende effektor-T-celler og lymfeknute stromale celler induserer produksjonen av metabolitten nitrogenoksid vist å dempe T-celle-responser og spredning i de sekundære lymfoide organer 14-16. Sekund, lymfe node stromale celler er blitt rapportert å støtte differensiering av regulatoriske DC delmengder gjennom produksjonen av IL-10 17, og for å modulere naive T-celle-homeostase via produksjon av IL-7 6,18. Tredje, TLR uttrykk i lymfeknute stromale celler antyder at stromale celler er utsatt for signal avledet fra en infeksjon eller selv-molekyler utgitt under vevsskade. Faktisk, ved behandling av lymfeknute stromale celler med liganden av TLR3 poly (I: C) induserer en beskjeden oppregulering av store histocompatibility kompleks klasse I ekspresjon og oppregulering av co-inhiberende molekyl PD-L1, men ikke av kostimulerende molekyler, noe som resulterer i dramatiske endringer i perifert vev antigener uttrykket 19. Flere grupper har vist lymfeknute stromale celler uttrykker perifert vev antigener og indusere toleranse for selvreaktive T-celler 19,21-27. Derfor forstå samspillet mellom lymfeknute stromale celler og den andre trekkfugl og resident lymfeknute celler vil bidra til å finne nye mål molekyler å tillate aktivering eller undertrykkelse av immunresponser ved betennelse. Derfor er innføringen av den publiserte enzymatisk separasjon av lymfeknute nødvendig.

Tidligere publiserte protokoller bruke ulike kombinasjoner av collagebasert enzymatisk oppslutning med lav mekanisk belastning 6,19,20. Men kanskje lange inkubasjoner med fordøyelsen enzymer eller annen kombinasjon av fordøyelsen enzym degradere ulike overflatemolekyler som kreves for å analysere aktiveringsstatusen og å identifisere nye lymfeknute stromale celler. Avhengig av hvilken type av stromal celle analyse, kan det hende at Link Protocol eller Fletcher Protocol være mer egnet. I den beskrevne fremgangsmåten, blir en litt kortere enzymatisk fordøyelse kombinert med automatisert mekanisk dekomponering for å minimalisere overflate markør nedbrytning av levedyktige lymph node stromale celler. Denne fremgangsmåten gjør at svært reproduserbare isolasjon ogforskjellsbehandling av lymfeknute stromal cellepopulasjoner med lav variabilitet og mer enn 95% levedyktighet. De nylig isolerte lymfeknute stromale celler kan brukes direkte for overflate markør ekspresjon, proteinanalyse, og transkripsjonelle studier, samt etablering av stromale celler linjer for å utføre funksjonelle analyser in vitro.

Protocol

I denne videoen publisering og protokollen, ble alle prosedyrer dyr utført i henhold til dyret protokoll godkjent av Cantonal Authority Basel-Stadt, Sveits. 1. lymfeknuter Forberedelse og fordøyelse Pre-varme vann i et begerglass til 37 ° C på en magnetrører med varmeplaten. Forbered Basic Medium som følgende: DMEM medium (uten pyruvat) supplert med 2% FCS, 1,2 mM CaCl 2 og Pen / Strep (100 enheter av penicillin, 100 mikrogram av streptomycin). …

Representative Results

Denne protokoll er en modifisert protokoll fordøyelse publisert av Link et al. 2007 6 med en kortere fordøyelse tid (45 min maksimum) på grunn av mekanisk dekomponering med et automatisk flerkanals pipette. I tillegg er fremgangsmåten mer standardisert, minimaliserer nedbrytning av overflatemarkører for forskjellige lymfeknute stromale celler og tillater håndtering av mer enn én prøve på samme tid. Kollagenase IV og Kollagenase D i Links protokoll 6 og…

Discussion

Studiet av lymfeknute stromale celler nylig ble en forskningsfokus på grunn av utviklingen av to publiserte fordøyelsen protokoller 6,13. Begge protokollene er tilstrekkelig til å få én lymfeknute stromale celler, men skiller seg i bruk av fordøyelsen enzymer og tidspunktet for fordøyelsen. Siden stromale celler og deres overflatemarkører er følsomme for enzymatisk oppslutning og mekanisk påkjenning, er nødvendig for en optimal protokoll.

Isolasjon av levedyktige lymfek…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Sanjiv Luther and colleagues for helpful discussions in establishing the current lymph node digestion protocol. This work was supported by SNF grants PPOOA-_119204 and PPOOP3_144918 to S.W.R.

Materials

DMEM LifeTechnologies-Gibco 41965-039
FCS Final concentration 2%
CaCl2 Sigma 499609 Final concentration 1.2 mM
Collagenase IV Worthington Biochemical Corporation >160 units per mg dry weight, use at final concentration of 1 mg/ml
Collagenase D Roche 11088882001 use at 3.5 mg/ml
DNAse I Roche  11284932001 use at 40 µg/ml
stiring magnets FAUST 5 mm long-2 mm ø
Polystyren Round-Bottom Tubes 5ml Falcon-BD Bioscience
Magnetic stirrer with heating funktion IKA-RCT-standard 9720250
Petridishes 100 mm, sterile TPP 6223201
25G needles Terumo
anti mouse CD45 Ab Biolegend Clone 30-F11
anti mouse CD11c Ab Biolegend Clone N418
anti mouse Podoplanin Ab Biolegend Clone 8.1.1
anti mouse CD31 Ab Biolegend Clone MEC13.3

Eppendorf Xplorer plus, Multichannel
Eppendorf 4861 000.821/830 1.250 µl max. volume
anti mouse CD140a Biolegend Clone APA5
anti mouse CD80 Biolegend Clone 16-10A1
anti mouse CD40 Biolegend Clone 1C10
anti mouse I-Ab Biolegend Clone AF6-120.1
anti mouse CD274 (PD-L1) Biolegend Clone 10F.9G2
LIVE/DEAD Fixable Near-IR Dead Cell stain kit Invitrogen L10119

Referências

  1. Mueller, S. N., Ahmed, R. Lymphoid stroma in the initiation and control of immune responses. Immunological reviews. 224, 284-294 (2008).
  2. Roozendaal, R., Mebius, R. E. Stromal Cell – Immune Cell Interactions. Annual Review of Immunology. 29 (1), 23-43 (2011).
  3. Turley, S. J., Fletcher, A. L., Elpek, K. G. The stromal and haematopoietic antigen-presenting cells that reside in secondary lymphoid organs. Nature Reviews Immunology. 10 (12), (2010).
  4. Bajénoff, M., et al. Stromal cell networks regulate lymphocyte entry, migration, and territoriality in lymph nodes. Immunity. 25 (6), 989-1001 (2006).
  5. Katakai, T., Hara, T., Sugai, M., Gonda, H., Shimizu, A. Lymph node fibroblastic reticular cells construct the stromal reticulum via contact with lymphocytes. The Journal of experimental medicine. 200 (6), 783-795 (2004).
  6. Link, A., et al. Fibroblastic reticular cells in lymph nodes regulate the homeostasis of naive T cells. Nature Immunology. 8 (11), 1255-1265 (2007).
  7. Malhotra, D., et al. Transcriptional profiling of stroma from inflamed and resting lymph nodes defines immunological hallmarks. Nature Immunology. 13 (5), 499-510 (2012).
  8. Gretz, J. E., Norbury, C. C., Anderson, A. O., Proudfoot, A. E., Shaw, S. Lymph-borne chemokines and other low molecular weight molecules reach high endothelial venules via specialized conduits while a functional barrier limits access to the lymphocyte microenvironments in lymph node cortex. The Journal of experimental medicine. 192 (10), 1425-1440 (2000).
  9. Sixt, M., et al. The conduit system transports soluble antigens from the afferent lymph to resident dendritic cells in the T cell area of the lymph node. Immunity. 22 (1), 19-29 (2005).
  10. MartIn-Fontecha, A., et al. Regulation of dendritic cell migration to the draining lymph node: impact on T lymphocyte traffic and priming. The Journal of experimental medicine. 198 (4), 615-621 (2003).
  11. Luther, S. A., Tang, H. L., Hyman, P. L., Farr, A. G., Cyster, J. G. Coexpression of the chemokines ELC and SLC by T zone stromal cells and deletion of the ELC gene in the plt/plt mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (23), 12694-12699 (2000).
  12. Braun, A., et al. Afferent lymph-derived T cells and DCs use different chemokine receptor CCR7-dependent routes for entry into the lymph node and intranodal migration. Nature Immunology. 12 (9), 879-887 (2011).
  13. Fletcher, A. L., et al. Reproducible isolation of lymph node stromal cells reveals site-dependent differences in fibroblastic reticular cells. Frontiers in immunology. 2, 35 (2011).
  14. Lukacs-Kornek, V., et al. Regulated release of nitric oxide by nonhematopoietic stroma controls expansion of the activated T cell pool in lymph nodes. Nature Immunology. 12 (11), 1096-1104 (2011).
  15. Siegert, S., et al. Fibroblastic reticular cells from lymph nodes attenuate T cell expansion by producing nitric oxide. PLoS ONE. 6 (11), e27618 (2011).
  16. Khan, O., Headley, M., Gerard, A., Wei, W., Liu, L., Krummel, M. F. Regulation of T cell priming by lymphoid stroma. PLoS ONE. 6 (11), e26138 (2011).
  17. Svensson, M., Maroof, A., Ato, M., Kaye, P. M. Stromal cells direct local differentiation of regulatory dendritic cells. Immunity. 21 (6), 805-816 (2004).
  18. Onder, L., et al. Endothelial cell-specific lymphotoxin-β receptor signaling is critical for lymph node and high endothelial venule formation. The Journal of experimental medicine. 210 (3), 465-473 (2013).
  19. Fletcher, A. L., et al. Lymph node fibroblastic reticular cells directly present peripheral tissue antigen under steady-state and inflammatory conditions. The Journal of experimental medicine. 207 (4), 689-697 (2010).
  20. Fletcher, A. L., Malhotra, D., Turley, S. J. Lymph node stroma broaden the peripheral tolerance paradigm. Trends in Immunology. 32 (1), 12-18 (2011).
  21. Cohen, J. N., et al. Lymph node-resident lymphatic endothelial cells mediate peripheral tolerance via Aire-independent direct antigen presentation. Journal of Experimental Medicine. 207 (4), 681-688 (2010).
  22. Lee, J. -. W., et al. Peripheral antigen display by lymph node stroma promotes T cell tolerance to intestinal self. Nat Immunol. 8, 181-190 (2006).
  23. Nichols, L. A., et al. Deletional self-tolerance to a melanocyte/melanoma antigen derived from tyrosinase is mediated by a radio-resistant cell in peripheral and mesenteric lymph nodes. J Immunol. 179, 993-1003 (2007).
  24. Gardner, J. M., et al. Deletional tolerance mediated by extrathymic Aire-expressing cells. Science. 321, 843-847 (2008).
  25. Gardner, J. M., et al. Extrathymic Aire-expressing cells are a distinct bone marrow-derived population that induce functional inactivation of CD4+ T cells. Immunity. 39, 560-572 (2013).
  26. Magnusson, F. C., et al. Direct presentation of antigen by lymph node stromal cells protects against CD8 T-cell-mediated intestinal autoimmunity. Gastroenterology. 134, 1028-1037 (2008).
  27. Tewalt, E. F., et al. Lymphatic endothelial cells induce tolerance via PD-L1 and lack of costimulation leading to high-level PD-1 expression on CD8 T cells. Blood. 120 (24), 4772-4782 (2012).

Play Video

Citar este artigo
Broggi, M. A. S., Schmaler, M., Lagarde, N., Rossi, S. W. Isolation of Murine Lymph Node Stromal Cells. J. Vis. Exp. (90), e51803, doi:10.3791/51803 (2014).

View Video