Livraison reste le principal défi pour la mise en œuvre thérapeutique de petits ARN interférents (siRNA). Ce protocole implique l'utilisation d'une plate-forme de délivrance de siRNA biocompatible et multifonctionnel, constitué par l'arginine et polyéthylènimine greffé microparticules de silicium poreux.
Small interfering RNA (siRNA) can be used to suppress gene expression, thereby providing a new avenue for the treatment of various diseases. However, the successful implementation of siRNA therapy requires the use of delivery platforms that can overcome the major challenges of siRNA delivery, such as enzymatic degradation, low intracellular uptake and lysosomal entrapment. Here, a protocol for the preparation and use of a biocompatible and effective siRNA delivery system is presented. This platform consists of polyethylenimine (PEI) and arginine (Arg)-grafted porous silicon microparticles, which can be loaded with siRNA by performing a simple mixing step. The silicon particles are gradually degraded over time, thereby triggering the formation of Arg-PEI/siRNA nanoparticles. This delivery vehicle provides a means for protecting and internalizing siRNA, without causing cytotoxicity. The major steps of polycation functionalization, particle characterization, and siRNA loading are outlined in detail. In addition, the procedures for determining particle uptake, cytotoxicity, and transfection efficacy are also described.
Les petits ARN interférents (siRNA) sont des molécules d'ARN double brin qui peuvent supprimer l'expression des gènes. Au cours des dernières années, siRNA ont été développés comme une nouvelle génération de biomédicaments qui montrent un potentiel thérapeutique pour une utilisation future dans les applications cliniques 1-5. Cependant, la mise en œuvre réussie de la thérapie siRNA reste un défi considérable, en raison de la dégradation par les nucléases, une mauvaise absorption intracellulaire, la faible efficacité de transfection et la libération inefficace de l'endosome / 5 lysosome. Beaucoup de ces obstacles peuvent être surmontés par le développement de plates-formes de livraison, qui peuvent en toute sécurité et efficacement offrir siRNA pour les tissus malades. Comparé aux transporteurs virales, les plates-formes non-virales offrent plusieurs avantages, tels que la sécurité, le faible coût et la facilité d'adaptation. En particulier, les nanoparticules cationiques, tels que des polymères et des lipides, se sont révélés utiles pour la délivrance de siRNA 3.
Auparavant, nous avons développé un dr discoïdeug système de distribution, appelé le vecteur à plusieurs étages (MSV). Cette plate-forme est basée sur les étapes séquentielles, dans lequel un véhicule est libéré à partir de l'autre. Le premier véhicule de l'étape est un microparticules biodégradables fabriqués à partir de silicium poreux (PSI), tandis que les secondes véhicules de scène sont des nanoparticules chargées de médicaments ou d'agents de contraste 6,7. Les nanoparticules qui sont noyés dans le matériau de PSI sont progressivement libérés comme le Si dégrade 8. Un avantage d'utiliser des particules de Si est que les caractéristiques de morphologie et de surface peuvent être facilement adaptées pour réaliser la biodistribution et la libération du médicament optimal. Récemment, l'utilisation réussie de la plate-forme MSV pour la fourniture de liposomes à siARN tissu tumoral a été démontré dans un modèle de souris de l'ovaire et le cancer du sein 9, 10.
Dans ce travail, nous avons fabriqué un système de distribution universel pour siRNA basée sur les principes de la plate-forme de MSV. L'efficacité de ce système de livraison a déjà été démontré nousment différente des molécules de siRNA 11. Le système est un silicium poreux (PCPS) porte-polycation-fonctionnalisé, comprenant des ISP greffé avec la polyéthylèneimine (PEI) et l'arginine (Arg). PEI peut aider à former des interactions électrostatiques avec des siRNA, tandis que Arg et psi peuvent servir à réduire la toxicité de PEI, comme précédemment demonstarted 11. En outre, la présence de PEI peut aider à l'absorption intracellulaire et endosomal évasion, tandis que les microparticules de l'ISP permettent la protection de siRNA et la libération prolongée. Les particules de l'ISP dégradent peu à peu dans des conditions physiologiques, ce qui conduit à la formation de nanoparticules Arg-PEI / siRNA (figure 1), qui ont une morphologie distincte et une distribution de taille étroite 11. Pour plus de détails au sujet de la stabilité du système PCPS / siRNA, se il vous plaît se référer à l'étude de Shen et al. 11. Cette plate-forme de PCPS diffère de la MSV classique, puisque les secondes nanoparticules de scène ne sont pas initialement Present dans le support, mais sont formées au fil du temps que le support de premier étage dégrade 11, 12. L'efficacité siRNA chargement efficacité, la cytotoxicité et silençage génique du système PCPS a été évaluée in vitro. L'efficacité de transfection a été mesurée en utilisant le siRNA contre l'ataxie télangiectasie mutée (ATM) oncogene, qui est impliqué dans la réparation de l'ADN 10. Auparavant, la suppression de l'ATM a été montré pour diminuer la croissance tumorale dans un modèle de cancer du sein 10.
Ce protocole décrit un procédé pour le succès de livraison de siRNA et la transfection dans les cellules. En particulier, la délivrance de siRNA est obtenue en utilisant une plate-forme multifonctionnelle constituée de particules de l'ISP polycation-fonctionnalisé. L'utilisation de la thérapie siRNA a un grand potentiel, par exemple, le traitement du cancer, que divers oncogènes peuvent être ciblées avec une grande spécificité. Par conséquent, il existe une demande pour développer des vé…
The authors have nothing to disclose.
The authors acknowledge financial support from Houston Methodist Research Institute, the National Natural Science Foundation of China (Nos., 21231007 and 21121061), the Ministry of Education of China (Nos., 20100171110013 and 313058), the National Basic Research Program of China (973 Program No. 2014CB845604), and the Fundamental Research Funds for the Central Universities.
Name of the Material/Equipment | Company/Institution | Catalog Number | Comments/Description |
Polyethylenimine (PEI), branched | Sigma-Aldrich | 408727 | Average molecular weight ~25,000 Da |
L-Arginine | Sigma-Aldrich | A5006 | Reagent grade, ≥98% |
Boc-Asp-OH | Sigma-Aldrich | 408-468 | 99% |
(3-Aminopropyl)triethoxysilane | Sigma-Aldrich | 440140 | 99% |
Hydrogen peroxide solution | Sigma-Aldrich | 216763 | 30 wt. % in H2O |
Sulfuric acid | Sigma-Aldrich | 339741 | 100.00% |
Isopropyl alcohol | Sigma-Aldrich | W292907 | ≥99.7% |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 459844 | ≥99.5% |
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDC) | Sigma-Aldrich | 03449 | ≥99% |
Albumin from bovine serum | Sigma-Aldrich | A7030-10G | Blocking agent |
Ataxia-telangiectasia mutated siRNA | Sigma-Aldrich | Designed in-house | |
Tris Acetate-EDTA buffer | Sigma-Aldrich | T9650 | For DNA agarose gel electrophoresis |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | P4333 | |
Fetal Bovine Serum | Sigma-Aldrich | F2442 | |
TWEEN 20 | Sigma-Aldrich | P1379 | Polyethylene glycol sorbitan monolaurate |
2-Mercaptoethanol | Sigma Aldrich | M6250 | For Western blot |
Sodium dodecyl sulfate | Sigma-Aldrich | L3771 | |
Sodium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | 71496 | For making phosphate buffer |
Sodium phosphate dibasic | Sigma-Aldrich | 71640 | For making phosphate buffer |
Anti-Mouse IgG | Sigma-Aldrich | A4416 | Secondary antibody (anti-mouse) for Western blot |
N-Hydroxysuccinimide (NHS) | Sigma-Aldrich | 130672 | 98% |
CELLSTAR 96W Microplate Tissue Culture Treated Clear w/ Lid | Greiner Bio-One | 655182 | 96-well plate |
10X Tris-Glycine Liquid | Li-Cor | 928-40010 | Transfer buffer for Western blot |
Paraformaldehyde solution 4% in PBS | Santa Cruz | Sc-281692 | Fixation of cells |
CellTiter 96 AQueous Non-Radioactive Cell Proliferation Assay (MTS) | Promega | G5421 | Proliferation assay |
Phosphate buffered saline | Fisher Scientific | BP399-500 | 10 X Solution |
Corning cellgro Dulbecco's Modification of Eagle's (Mod.) | Fisher Scientific | MT-15-017-CM | Cell culture media, 1X solution |
Triton X-100 | Fisher Scientific | AC21568-2500 | Octyl phenol ethoxylate, permeabilization agent |
Cover glass | Fisher Scientific | 12-530C | |
Methanol | Fisher Scientific | A412-1 | For Western blot transfer buffer |
Plastic Cuvettes | Fisher Scientific | 14-377-010 | For size measurements using Zetasizer Nano ZS |
Molecular BioProducts RNase AWAY Surface Decontaminant | Fisher Scientific | 14-754-34 | Spray for removing RNAse contamination |
Agarose | Fisher Scientific | BP165-25 | Low melting point, for running RNA samples |
ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI | Invitrogen | P36935 | Antifade reagent with DAPI, nucelus detection |
Alexa Fluor 488 Phalloidin | Invitrogen | A12379 | Dissolve 300 units in 1.5 ml methanol, detection of filamentous actin |
SYBR Safe DNA Gel Stain | Invitrogen | S33102 | Visualization of RNA |
Negative Control siRNA | Qiagen | 1022076 | Control siRNA |
AllStars Neg. siRNA AF 555 | Qiagen | 1027294 | Fluorescent control siRNA |
Cell scraper | Celltreat | 229310 | |
BioLite Multidishes and Microwell Plates | Thermo Scientific | 130184 | 6-well plate |
Pierce LDS Sample Loading Buffer (4X) | Thermo Scientific | 84788 | Sample loading buffer for Western blot |
Pierce BCS Protein Assay Kit | Thermo Scientific | 23227 | Protein quantification assay |
Halt Protease Inhibitor Single-Use Cocktails (100X) | Thermo Scientific | 78430 | Protease inhibitor cocktail, use at 1X |
M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent | Thermo Scientific | 78501 | Protein extraction reagent |
Sorvall Legend Micro 21R | Thermo Scientific | 75002440 | Centrifuge |
Beta Actin Antibody | Thermo Scientific | MA1-91399 | β-actin primary antibody (from mouse) for western blor |
6X TriTrack DNA Loading Dye | Thermo Scientific | R1161 | DNA loading dye |
Nuclease-Free Water | Life Technologies | AM9938 | |
Non-Fat Dry Milk | Lab Scientific | M0841 | For Western blot |
2-well BD Falcon culture slides | BD Biosciences | 354102 | 2-well culture slides |
Amersham ECL Western blot detection reagent. | GE Healthcare Life Sciences | RPN2106 | Western blot detection reagent |
BA Membranes | GE Healthcare Life Sciences | 10402096 | Nitrocellulose membrane for Wester blot |
ATM (D2E2) Rabbit mAb | Cell Signaling | 2873S | ATM primary antibody (from rabbit) for Western blot |
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody | Cell Signaling | 7074 | Secondary antibody (anti-rabbit) for Western blot |
Folded capillary cells | Malvern | DTS 1061 | For zeta potentail measurements using Zetasizer Nano ZS |
MDA-MB-231 cell line | ATCC | HTB-26 | Mammary Gland/Breast |
12% Mini-PROTEAN TGX Gel | Bio-rad | 456-1043 | For Western blot |
Biorad PowerPac HC | Bio-rad | 164-5052 | Power supply for electrophoresis |
10x Tris/Glycine/SDS Buffer | Bio-rad | 161-0732 | Running buffer for Western blot |
Wide Mini-Sub Cell GT Cell | Bio-rad | 170-4405 | Electrophoresis equipment for DNA agarose gel |
Mini-PROTEAN Tetra cell | Bio-rad | 165-8000 | Electrophoresis equipment for Western blot |
ChemiDoc XRS+ System with Image Lab Software | Bio-rad | 170-8265 | Image acquisition and analysis software for gels and blots |
4" (10cm) dia., 5x7mm diced Silicon Wafer | Ted Pella | 16007 | Silicon waferfor scanning electron microscopy and atomic force microscopy |
Thermomixer R | Eppendorf | 22670107 | Shaker |
Isoton II diluent | Beckman Coulter | 8546719 | Isoton diluent |
Multisizer 4 Coulter Counter | Beckman Coulter | A63076 | Particle counting analyzer |
Non-functionalized porous silicon particles | Microelectronics Research Center, University of Texas at Austin | Dicoidal shape. 2.6 μm (diameter) x 0.7 μm (hight), provided in isopropyl alcohol | |
Zetasizer Nano ZS | Malvern | Particle analyzer system for size and zeta potential | |
Scanning Electron Microscope | FEI | Particle size and shape | |
Atomic Force Microscope | Bruker | Particle size and shape | |
Fluo ViewTM 1000 Confocal Microscope | Olympus | Visualization of fixed and live cells |