Imagem Contraste em embriões de camundongos Usando de alta freqüência ultra-som
Summary
Aqui, apresentamos um protocolo para injetar agentes de contraste de microbolhas de ultra-som de estar, isoladas de fim de gestação de embriões palco murino. Este método permite o estudo de parâmetros de perfusão e de marcadores moleculares vasculares dentro do embrião usando de alta freqüência ultra-sonografia com contraste.
Abstract
Ultrasound contrast-enhanced imaging can convey essential quantitative information regarding tissue vascularity and perfusion and, in targeted applications, facilitate the detection and measure of vascular biomarkers at the molecular level. Within the mouse embryo, this noninvasive technique may be used to uncover basic mechanisms underlying vascular development in the early mouse circulatory system and in genetic models of cardiovascular disease. The mouse embryo also presents as an excellent model for studying the adhesion of microbubbles to angiogenic targets (including vascular endothelial growth factor receptor 2 (VEGFR2) or αvβ3) and for assessing the quantitative nature of molecular ultrasound. We therefore developed a method to introduce ultrasound contrast agents into the vasculature of living, isolated embryos. This allows freedom in terms of injection control and positioning, reproducibility of the imaging plane without obstruction and motion, and simplified image analysis and quantification. Late gestational stage (embryonic day (E)16.6 and E17.5) murine embryos were isolated from the uterus, gently exteriorized from the yolk sac and microbubble contrast agents were injected into veins accessible on the chorionic surface of the placental disc. Nonlinear contrast ultrasound imaging was then employed to collect a number of basic perfusion parameters (peak enhancement, wash-in rate and time to peak) and quantify targeted microbubble binding in an endoglin mouse model. We show the successful circulation of microbubbles within living embryos and the utility of this approach in characterizing embryonic vasculature and microbubble behavior.
Introduction
Ultra-sonografia com contraste faz uso de agentes de contraste de microbolhas para visualizar e caracterizar o ambiente vascular. Estes agentes permitir a avaliação não invasiva da microcirculação, vascularização e função cardiovascular. Além disso, a modificação da superfície da bolha pode resultar em microbolhas de ligação orientada para biomarcadores endoteliais, como demonstrado em aplicações pré-clínicos de angiogénese, a aterosclerose e a inflamação 1,2 fazendo imagiologia de ultra-sons molecular de eventos vasculares possíveis. Com aumento de contraste de ultra-sons pode, portanto, ser usadas para identificar os ambientes complexos e diversos que influenciam estados vasculares saudáveis e doentes 3-5.
No número últimos anos, o interesse pelo utilitário de imagem de microbolhas se estendeu para o modelo do rato embrião versátil. Como um modelo de desenvolvimento de mamíferos, introdução de microbolhas para a vasculatura embrionária aumenta fisiológicoestudo do sistema circulatório em desenvolvimento (por exemplo, o fluxo de sangue, o débito cardíaco) e nos casos de transgénicos e modelos de ratos mutantes alvo de doença cardíaca 6,7, pode produzir insights sobre como os fatores genéticos que alteram a função cardiovascular. De fato, análises 2D quantitativa e qualitativa da vasculatura cerebral embrionária já foram atingidos 8. Além disso, o embrião de rato apresenta-se como um excelente modelo para examinar a ligação de microbolhas orientadas para marcadores vasculares in vivo. Bartelle et al. 9, por exemplo, introduziram microbolhas avidina em embrião ventrículos cardíacas para avaliação alvejado obrigatório em embriões transgênicos BIOTAG-Bira e examinar a anatomia vascular. A geração de modelos de heterozigotos e homozigotos do mouse pode ser também ser utilizado como um substituto para estudos de modelos tumor com o objetivo de definir a natureza quantitativa de ultra-som molecular – uma referência importante na tradução dessa técnica para a clínica.
<p class = "jove_content"> Microbubbles são mais frequentemente introduzidas para a circulação embrionária através de injeções intra-cardíaco em embriões únicos expostos através de uma laparotomia 8-10. Em injeções útero, no entanto, enfrentam uma série de desafios. Estes incluem orientação injeção, a necessidade de combater o movimento na mãe e embrião exteriorizada, a manutenção da viabilidade hemodinâmico na mãe e embriões exteriorizados, abordando os efeitos a longo prazo da anestesia e complicações devido ao sangramento 11. Portanto, o objetivo da investigação foi desenvolver uma técnica para a injeção de microbolhas em isolado de vida em estágio final de embriões 12. Esta opção oferece mais liberdade em termos de controle de injeção e posicionamento, reprodutibilidade do plano de imagem, sem obstrução, e análise de imagem simplificada e quantificação.No presente estudo, descrevemos um novo procedimento para a injeção de microbolhas em que vivem embriões murinos for o objectivo de estudar o comportamento cinético de microbolhas e de estudar a ligação a marcadores de superfície endoteliais endógenas microbolhas alvejado. Ultra-sonografia específico contraste não-linear é usado para medir de uma série de parâmetros de perfusão básicas, incluindo intensificação de pico (PE), lave-in taxa e tempo de pico (TTP) em embriões E17.5 isoladas. Nós também demonstrar a validade do modelo de embrião para avaliar a natureza quantitativa de ultra-som molecular em uma perda endoglin embrionário de rato modelo função transgênica, onde endoglin é um alvo clinicamente relevante devido à sua elevada expressão em células endoteliais vasculares em locais de angiogênese ativo 13 . A adesão de (MB E), segmentada por endoglin isótipo rato IgG 2 controle (MB C) e não segmentados (MB U) microbolhas é avaliada em endoglin heterozigotos (Eng +/-) e endoglin homozigoto (Eng + / +) expressando embriões. Análise do bindi alvejadong revela que o ultrassom molecular é capaz de diferenciar entre os genótipos endoglina e relacionando densidade do receptor de ultra-som para níveis moleculares quantificáveis.
Protocol
Representative Results
Discussion
Agentes de contraste de ultra-som foram injetadas em embriões em estágio final de gestação do mouse e imagens de contraste não-lineares foram adquiridos para medir parâmetros de perfusão e direcionados microbolhas vinculativo. Imagiologia bem sucedida de microbolhas no seio da vasculatura embrionária era dependente de uma série de factores, a primeira sendo a viabilidade do embrião. Todos os equipamentos e aparelhos foram preparados com antecedência, a fim de minimizar o tempo necessário para o isolamento de…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
This work was supported by the Terry Fox Program of the National Cancer Institute of Canada.
Materials
| Reagents | Company | Catalog Number | Comments/Description |
| Antibodies (biotinylated, eBioscience) | Antibody choice depends on the experiment | ||
| rat isotype IgG2 control | eBioscience | 13-4321-85 | This antibody/microbubble combination is often required as experimental control |
| biotin anti-mouse CD309 | eBioscience | 13-5821-85 | |
| Biotinylated rat MJ 7/18 antibody to mouse endoglin | In house hybridoma | Outside antibodies may also be appropriate: we have used eBioscience (13-1051-85 ) in the past | |
| Distilled water | |||
| Embryo media | |||
| 500 mL Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium with high glucose | Sigma | D5796 | |
| 50 mL Fetal Bovine Serum | ATCC | 30-2020 | lot # 7592456 |
| Hepes | Gibco | 15630 | 5mL, 1M |
| Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140-122 | 5 mL, 10,000 units Pen., 10,000 ug Strep |
| Ethanol, 70% | |||
| Ice | |||
| Paraformaldehyde | Sigma | 76240 | 4% |
| Phosphate Buffered Saline [1x] | Sigma | D8537 | 1x, w/o calcium chloride & magnesium chloride |
| Pregnant mouse, CD-1 | Charles River Laboratories Inc. | ||
| 0.9% sodium chloride (saline) | Hospira | 0409-7984-11 | |
| Ultrasound contrast agent, target ready and untargeted | MicroMarker; VisualSonics Inc. | ||
| Ultrasound gel (Aquasonic 100, colourless) | CSP Medical | 133-1009 | |
| Equipment | |||
| Cell culture plates (4) : 100×20 mm | Fisher Scientific | 08-772-22 | |
| Cell culture plates (12) : 60×15 mm | Sigma | D8054 | |
| Centrifuge | Sorvall Legend RT centrifuge | ||
| Conical tubes, 50 mL BD Falcon | VWR | 21008-938 | |
| Diluent | Beckman Coulter | Isoton II Diluent, 8448011 | |
| Dissection scissors (Wagner) | Fine Science Tools | Wagner 14068-12 | |
| Forceps (2), Dumont SS (0.10×0.06 mm) | Fine Science Tools | 11200-33 | |
| Forceps, splinter | VWR | 25601-134 | |
| Glass beaker, 2 L (Griffin Beaker) | VWR | 89000-216 | |
| Glass capillaries, 1×90 mm GD-1 with filament | Narishige | GD-1 | |
| Glass needle puller | Narishige | PN-30 | |
| Gloves | Ansell | 4002 | |
| Gross anatomy probe | Fine Science Tools | 10088-15 | |
| Hot plate | VWR | 89090-994 | |
| Ice bucket | Cole Parmer | RK 06274-01 | |
| Imaging Platform | VisualSonics Inc. | Integrated Rail System | |
| Light source, fiber-optic | Fisher Scientific | 12-562-36 | Ideally has adjustable arms |
| Luers (12), polypropylene barbed female ¼-28 UNF thread | Cole Parmer | 45500-30 | |
| Micro-ultrasound system, high-frequency | VisualSonics Inc. | Vevo2100 | |
| Needles, 21 gauge (1”) | VWR | 305165 | |
| Particle size analyzer | Beckman Coulter | Multisizer 3 Coulter Counter | |
| Perforated spoon (Moria) | Fine Science Tools | MC 17 10373-17 | |
| Pins (6), black anodized minutien 0.15 mm | Fine Science Tools | 26002-15 | |
| Pipettors [2-20 uL, 20-200uL, 100-1000uL] | Eppendorf | Research Plus adjustable 3120000038; 3120000054; 3120000062 | |
| Pipettor tips [2-200uL, 50-1000uL] | Eppendorf | epT.I.P.S. 22491334; 022491351 | |
| Scissors | |||
| Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit | Dow Corning | ||
| Tubing, Tygon laboratory 1/32×3/32” | VWR | 63010-007 | |
| Wooden applicator stick (swab, cotton head) | VWR | CA89031-270 | |
| Surgical microscope 5-8x magnification | Fisher Scientific | Steromaster | |
| Syringes, 1 mL Normject | Fisher | 14-817-25 | |
| Syringes (10), 30 mL | VWR | CA64000-041 | |
| Syringe infusion pump | Bio-lynx | NE-1000 | |
| Thermometer, -20-110oC | VWR | 89095-598 | |
| Timer | VWR | 33501-418 | |
| Tubes, Eppendorf | VWR | 20170-577 | |
| Tube racks (3) | VWR | 82024-462 | |
| Ultrasound transducer, 20 MHz | VisualSonics Inc. | MS250 | |
| Vannas-Tubingen, angled up | Fine Science Tools | 15005-08 |
Referências
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