Summary

उच्च आवृत्ति अल्ट्रासाउंड का उपयोग माउस भ्रूण में कंट्रास्ट इमेजिंग

Published: March 04, 2015
doi:

Summary

यहाँ, हम जीवन में अल्ट्रासाउंड microbubble विपरीत एजेंटों, पृथक देर हमल चरण murine भ्रूण इंजेक्षन करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं। इस विधि छिड़काव मापदंडों की और इसके विपरीत-बढ़ाया उच्च आवृत्ति अल्ट्रासाउंड इमेजिंग का उपयोग भ्रूण के भीतर संवहनी आणविक मार्कर के अध्ययन के लिए सक्षम बनाता है।

Abstract

Ultrasound contrast-enhanced imaging can convey essential quantitative information regarding tissue vascularity and perfusion and, in targeted applications, facilitate the detection and measure of vascular biomarkers at the molecular level. Within the mouse embryo, this noninvasive technique may be used to uncover basic mechanisms underlying vascular development in the early mouse circulatory system and in genetic models of cardiovascular disease. The mouse embryo also presents as an excellent model for studying the adhesion of microbubbles to angiogenic targets (including vascular endothelial growth factor receptor 2 (VEGFR2) or αvβ3) and for assessing the quantitative nature of molecular ultrasound. We therefore developed a method to introduce ultrasound contrast agents into the vasculature of living, isolated embryos. This allows freedom in terms of injection control and positioning, reproducibility of the imaging plane without obstruction and motion, and simplified image analysis and quantification. Late gestational stage (embryonic day (E)16.6 and E17.5) murine embryos were isolated from the uterus, gently exteriorized from the yolk sac and microbubble contrast agents were injected into veins accessible on the chorionic surface of the placental disc. Nonlinear contrast ultrasound imaging was then employed to collect a number of basic perfusion parameters (peak enhancement, wash-in rate and time to peak) and quantify targeted microbubble binding in an endoglin mouse model. We show the successful circulation of microbubbles within living embryos and the utility of this approach in characterizing embryonic vasculature and microbubble behavior.

Introduction

विपरीत बढ़ाया अल्ट्रासाउंड इमेजिंग कल्पना और संवहनी पर्यावरण चिह्नित करने के लिए microbubble विपरीत एजेंटों का उपयोग करता है। इन एजेंटों microcirculation में, vascularity और हृदय समारोह की noninvasive आकलन कर सकें। इसके अलावा, बुलबुला सतह के संशोधन संभव संवहनी घटनाओं की आणविक अल्ट्रासाउंड इमेजिंग बनाने एंजियोजिनेसिस, atherosclerosis और सूजन 1,2 के पूर्व नैदानिक ​​अनुप्रयोगों में प्रदर्शन के रूप में, endothelial बायोमार्कर के लिए बाध्य लक्षित microbubble में परिणाम कर सकते हैं। कंट्रास्ट बढ़ाया अल्ट्रासाउंड इसलिए स्वस्थ और रोगग्रस्त संवहनी राज्यों 3-5 प्रभावित करती है कि जटिल और विविध वातावरण की पहचान करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है।

वर्ष के पिछले संख्या में, microbubble इमेजिंग की उपयोगिता में ब्याज बहुमुखी माउस भ्रूण मॉडल के लिए बढ़ा दिया गया है। स्तनधारी विकास का एक मॉडल के रूप में, भ्रूण वाहिका में microbubbles की शुरूआत शारीरिक बढ़ाताविकासशील संचार प्रणाली (उदाहरण के लिए, रक्त प्रवाह, कार्डियक आउटपुट) और ट्रांसजेनिक के मामलों और हृदय रोग 6,7 के लक्षित उत्परिवर्ती माउस मॉडल में, का अध्ययन हृदय समारोह में परिवर्तन कैसे आनुवंशिक कारणों में अंतर्दृष्टि उपज हो सकती है। वास्तव में, मात्रात्मक और गुणात्मक 2D भ्रूण मस्तिष्क वाहिका संरचना का विश्लेषण करती है जो पहले से ही आठ हासिल किया गया है। इसके अलावा, माउस भ्रूण विवो में संवहनी मार्करों के लिए लक्षित microbubbles के बंधन की जांच के लिए एक उत्कृष्ट मॉडल के रूप में प्रस्तुत करता है। Bartelle एट अल। 9, उदाहरण के लिए, Biotag-बीरा ट्रांसजेनिक भ्रूण में बंधन और नाड़ी शरीर रचना की जांच लक्षित आकलन करने के लिए भ्रूण हृदय निलय में avidin microbubbles शुरू की है। क्लिनिक के लिए इस तकनीक का अनुवाद करने में एक महत्वपूर्ण बेंचमार्क – विषमयुग्मजी और समयुग्मक माउस मॉडल की पीढ़ी भी आणविक अल्ट्रासाउंड के मात्रात्मक प्रकृति को परिभाषित करने के लिए लक्ष्य ट्यूमर मॉडल के अध्ययन के लिए एक किराए के रूप में इस्तेमाल किया जा सकता है।

<p clगधा = "jove_content"> microbubbles सबसे अक्सर एक laparotomy 10/08 के माध्यम से अवगत कराया एकल भ्रूण में इंट्रा-हृदय इंजेक्शन के माध्यम से भ्रूण संचलन के लिए पेश कर रहे हैं। utero इंजेक्शन में, हालांकि, अनेक चुनौतियों का सामना करना पड़ता है। ये इंजेक्शन मार्गदर्शन, माँ और exteriorized भ्रूण में गति का मुकाबला करने की जरूरत है, माँ में hemodynamic व्यवहार्यता के रखरखाव और 11 से खून बह रहा की वजह से संज्ञाहरण और जटिलताओं के दीर्घकालिक प्रभावों को संबोधित exteriorized भ्रूण, शामिल हैं। इसलिए, जांच के लक्ष्य को अलग-थलग रहने की देर चरण भ्रूण 12 में microbubbles इंजेक्शन लगाने के लिए एक तकनीक विकसित करने के लिए किया गया था। यह विकल्प इंजेक्शन नियंत्रण और स्थिति, रुकावट के बिना इमेजिंग विमान के reproducibility, और सरल छवि विश्लेषण और मात्रा का ठहराव के मामले में अधिक स्वतंत्रता प्रदान करता है।

वर्तमान अध्ययन में, हम के लिए रहने वाले murine भ्रूण में microbubbles के इंजेक्शन के लिए एक उपन्यास प्रक्रिया की रूपरेखा तैयारआर microbubble गतिज व्यवहार का अध्ययन करने के लिए और के प्रयोजनों के अंतर्जात endothelial सतह मार्करों के लिए बाध्य microbubble लक्षित का अध्ययन। गैर रेखीय विपरीत विशिष्ट अल्ट्रासाउंड इमेजिंग शिखर वृद्धि (पीई), धोने दर में और समय अलग E17.5 भ्रूण में (टीटीपी) शिखर सहित बुनियादी छिड़काव मापदंडों के एक नंबर के उपाय करने के लिए प्रयोग किया जाता है। हम यह भी वजह से सक्रिय एंजियोजिनेसिस 13 की साइटों पर संवहनी endothelial कोशिकाओं में अपनी उच्च अभिव्यक्ति के लिए endoglin एक नैदानिक ​​प्रासंगिक लक्ष्य है जहां समारोह ट्रांसजेनिक माउस मॉडल, का एक भ्रूण endoglin नुकसान में आणविक अल्ट्रासाउंड के मात्रात्मक प्रकृति का आकलन करने के लिए भ्रूण मॉडल की वैधता का प्रदर्शन । endoglin-लक्षित, (एमबी ई) चूहा निर्धारण आईजीजी दो नियंत्रण (एमबी सी) और अलक्षित (एमबी यू) microbubbles के आसंजन विषमयुग्मजी endoglin (इंग्लैंड +/-) और समयुग्मक endoglin (इंग्लैंड + / +) व्यक्त भ्रूण में मूल्यांकन किया जाता है। लक्षित बिंदी का विश्लेषणएनजी आणविक अल्ट्रासाउंड endoglin जीनोटाइप के बीच फर्क और quantifiable आणविक अल्ट्रासाउंड स्तर तक रिसेप्टर घनत्व से संबंधित करने में सक्षम है कि पता चलता है।

Protocol

नोट: इस अध्ययन में प्रदर्शन प्रयोगात्मक प्रक्रियाओं पशु की देखभाल Sunnybrook अनुसंधान संस्थान में समिति (टोरंटो, ओंटारियो, कनाडा) द्वारा अनुमोदित किया गया। पशुओं के मानवीय उपचार के लिए प्रक्रिया सभी समय पर ?…

Representative Results

पूर्व utero माउस भ्रूण में अल्ट्रासाउंड विपरीत एजेंटों के इंजेक्शन इंजेक्शन और संबंधित अल्ट्रासाउंड इमेजिंग के पाठ्यक्रम पर गर्भाशय और व्यवहार्यता के रखरखाव से रहते हैं, देर-गर्भावधि चरण भ्रूण के ?…

Discussion

अल्ट्रासाउंड विपरीत एजेंटों देर चरण हमल माउस भ्रूण और nonlinear विपरीत छवियों में इंजेक्शन थे छिड़काव मापदंडों को मापने के लिए अधिग्रहण कर लिया और बाध्यकारी microbubble निशाना बनाया गया। भ्रूण vasculature के भीतर microbubbles क…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Terry Fox Program of the National Cancer Institute of Canada.

Materials

Reagents Company Catalog Number Comments/Description
Antibodies (biotinylated, eBioscience) Antibody choice depends on the experiment
      rat isotype IgG2 control eBioscience 13-4321-85 This antibody/microbubble combination is often required as experimental control 
      biotin anti-mouse CD309 eBioscience 13-5821-85
Biotinylated rat MJ 7/18 antibody to mouse endoglin In house hybridoma Outside antibodies may also be appropriate: we  have used eBioscience (13-1051-85 ) in the past
Distilled water
Embryo media
     500 mL Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium with high glucose Sigma D5796
     50 mL Fetal Bovine Serum ATCC 30-2020 lot # 7592456
     Hepes  Gibco 15630 5mL, 1M
     Penicillin-Streptomycin  Gibco 15140-122 5 mL, 10,000 units Pen., 10,000 ug Strep
Ethanol, 70%
Ice
Paraformaldehyde Sigma 76240 4%
Phosphate Buffered Saline [1x]  Sigma D8537 1x, w/o calcium chloride & magnesium chloride
Pregnant mouse, CD-1 Charles River Laboratories Inc. 
0.9% sodium chloride (saline) Hospira 0409-7984-11
Ultrasound contrast agent, target ready and untargeted MicroMarker; VisualSonics Inc.
Ultrasound gel (Aquasonic 100, colourless) CSP Medical 133-1009
Equipment
Cell culture plates (4) :  100×20 mm Fisher Scientific 08-772-22
Cell culture plates (12) : 60×15 mm Sigma D8054
Centrifuge Sorvall Legend RT centrifuge 
Conical tubes, 50 mL BD Falcon VWR 21008-938
Diluent Beckman Coulter Isoton II Diluent, 8448011
Dissection scissors (Wagner) Fine Science Tools Wagner 14068-12
Forceps (2), Dumont SS (0.10×0.06 mm) Fine Science Tools 11200-33
Forceps, splinter VWR 25601-134
Glass beaker, 2 L (Griffin Beaker) VWR 89000-216
Glass capillaries, 1×90 mm GD-1 with filament Narishige GD-1
Glass needle puller Narishige PN-30
Gloves Ansell 4002
Gross anatomy probe Fine Science Tools 10088-15
Hot plate VWR 89090-994
Ice bucket Cole Parmer RK 06274-01
Imaging Platform VisualSonics Inc. Integrated Rail System
Light source, fiber-optic Fisher Scientific 12-562-36 Ideally has adjustable arms
Luers (12), polypropylene barbed female ¼-28 UNF thread Cole Parmer 45500-30
Micro-ultrasound system, high-frequency VisualSonics Inc. Vevo2100
Needles, 21 gauge  (1”) VWR 305165
Particle size analyzer Beckman Coulter Multisizer 3 Coulter Counter
Perforated spoon (Moria) Fine Science Tools MC 17 10373-17
Pins (6), black anodized minutien 0.15 mm Fine Science Tools 26002-15
Pipettors [2-20 uL, 20-200uL, 100-1000uL] Eppendorf Research Plus  adjustable 3120000038;       3120000054;       3120000062
Pipettor tips [2-200uL, 50-1000uL] Eppendorf epT.I.P.S.                   22491334;             022491351
Scissors
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning
Tubing, Tygon laboratory 1/32×3/32” VWR 63010-007
Wooden applicator stick (swab, cotton head) VWR CA89031-270
Surgical microscope 5-8x magnification Fisher Scientific Steromaster
Syringes, 1 mL Normject Fisher 14-817-25
Syringes (10), 30 mL VWR CA64000-041
Syringe infusion pump  Bio-lynx  NE-1000
Thermometer, -20-110oC VWR 89095-598
Timer VWR 33501-418
Tubes, Eppendorf VWR 20170-577
Tube racks (3) VWR 82024-462
Ultrasound transducer, 20 MHz VisualSonics Inc. MS250
Vannas-Tubingen, angled up Fine Science Tools 15005-08

Referências

  1. Voigt, J. U. Ultrasound molecular imaging. Methods. 48 (2), 92-97 (2009).
  2. Klibanov, A. Preparation of targeted microbubbles: Ultrasound contrast agents for molecular imaging. Medical Biological Engineering Computing. 47 (8), 875-882 (2009).
  3. Cosgrove, D., Lassau, N. Imaging of perfusion using ultrasound. European Journal Of Nuclear Medicine And Molecular Imaging. 37 (S1), 65 (2010).
  4. Williams, R., et al. Dynamic microbubble contrast-enhanced US to measure tumor response to targeted therapy: A proposed clinical protocol with results from renal cell carcinoma patients receiving antiangiogenic therapy. Radiology. 260 (2), 581 (2011).
  5. Burns, P. N., Wilson, S. R. Focal liver masses: Enhancement patterns on contrast-enhanced Images – Concordance of US scans with CT scans and MR images. Radiology. 242 (1), 162 (2006).
  6. Phoon, C. K. L., Aristizabal, O., Turnbull, D. H. 40 MHz doppler characterization of umbilical and dorsal aortic Blood flow in the early mouse embryo. Ultrasound. In Medicine And Biology. 26 (8), 1275-1283 (2000).
  7. Phoon, C. K. L., Aristizabal, O., Turnbull, D. H. Spatial velocity profile in mouse embryonic aorta and doppler-derived volumetric flow: A preliminary model. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 283, H908-H916 (2002).
  8. Aristizábal, O., Williamson, R., Turnbull, D. H. . 12A-4 in vivo 3D contrast-enhanced imaging of the embryonic mouse vasculature. Paper presented at Ultrasonics Symposium. , (2007).
  9. Bartelle, B. B., et al. Novel genetic approach for in vivo vascular imaging in mice. Circ.Res. 110 (7), 938-947 (2012).
  10. Endoh, M., et al. Fetal gene transfer by intrauterine injection with microbubble-enhanced ultrasound. Molecular Therapy. 5 (5), 501-508 (2002).
  11. Yamada, M., Hatta, T., Otani, H. Mouse exo utero development system: Protocol and troubleshooting. Congenital Anomalies. 48 (4), 183-187 (2008).
  12. Denbeigh, J. M., Nixon, B. A., Hudson, J. M., Purin, M. C., Foster, F. S. VEGFR2-targeted molecular imaging in the mouse embryo: An alternative to the tumor model. Ultrasound in medicine and biology. 40 (2), 389-399 (2014).
  13. Paauwe, M., Dijke, t. e. n., P, L. J. A. C., Hawinkels, Endoglin for tumor imaging and targeted cancer therapy. Expert Opinion On Therapeutic Targets. 17 (4), 421-435 (2013).
  14. Bourdeau, A., Faughnan, M. E., Letarte, M. Endoglin-deficient mice, a unique model to study hereditary hemorrhagic telangiectasia. Trends Cardiovasc. Med. 10 (7), 279-285 (2000).
  15. Whiteley, K. J., Adamson, S. L., Pfarrer, C. D. Vascular corrosion casting of the uteroplacental and fetoplacental vasculature in mice. Placenta And Trophoblast: Methods And Protocols. 121 (121), 371-392 (2006).
  16. Kulandavelu, S., et al. Embryonic and neonatal phenotyping of genetically engineered mice. ILAR Journal. 47 (2), 103-10 (2006).
  17. Kalaskar, V. K., Lauderdale, J. D. Mouse embryonic development in a serum-free whole embryo culture system. Journal of Visualized Experiments. 85, (2014).
  18. Willmann, J. K., et al. Targeted contrast-enhanced ultrasound imaging of tumor angiogenesis with contrast microbubbles conjugated to integrin-binding knottin peptides. The Journal of Nuclear Medicine. 51 (3), 433-440 (2010).
  19. Deshpande, N., Ren, Y., Foygel, K., Rosenberg, J., Willmann, J. K. Tumor angiogenic marker expression levels during tumor growth: Longitudinal assessment with molecularly targeted microbubbles and US imaging. Radiology. 258 (3), 804-811 (2011).
  20. Lyshchik, A., et al. Molecular imaging of vascular endothelial growth factor receptor 2 expression using targeted contrast-enhanced high-frequency ultrasonography. Journal Of Ultrasound In Medicine. 26 (11), 1575-1586 (2007).
  21. Jerkic, M., et al. Endoglin regulates nitric oxide-dependent vasodilatation. The FASEB Journal. 18 (3), 609-611 (2004).
  22. Denbeigh, J. M., Nixon, B. A., Lee, J. J. Y., et al. . Contrast-Enhanced Molecular Ultrasound Differentiates Endoglin Genotypes in Mouse Embryos. , (2014).
  23. Adamson, S. L., Lu, Y., Whiteley, K. J., et al. Interactions between trophoblast cells and the maternal and fetal circulation in the mouse placenta. Dev Biol. 250, 358-35 (2002).
  24. Needles, A., et al. Nonlinear contrast imaging with an array-based micro-ultrasound system. Ultrasound. Medicine Biology. 36 (12), 2097 (2010).
  25. Watson, E. D., Cross, J. C. Development of structures and transport functions in the mouse placenta. Physiology. 20 (3), 180-193 (2005).
  26. Shalaby, F., Rossant, J., Yamaguchi, T. P., et al. Failure of blood-island formation and vasculogenesis in Flk-1-deficient mice. Nature. 376, 62-66 (1995).
  27. Kwee, L., Baldwin, H. S., Shen, H. M., et al. Defective development of the embryonic and extraembryonic circulatory systems in vascular cell adhesion molecule (VCAM-1) deficient mice. Development. 121, (1995).
  28. Mercurio, A. M. Lessons from the α2 integrin knockout mouse. The American journal of pathology. , 161-163 (2002).
  29. Hodivala-Dilke, K. αvβ3 integrin and angiogenesis: a moody integrin in a changing environment. Curr Opin Cell Biol. 20, 514-519 (2008).
  30. Pysz, M. A., Gambhir, S. S., Willmann, J. K. Molecular imaging: current status and emerging strategies. Clinical radiology. 65, 500-516 (2010).
  31. Cybulsky, M. I., Iiyama, K., Li, H., et al. A major role for VCAM-1, but not ICAM-1, in early atherosclerosis. J Clin Invest. 107, 1255-1262 (2001).
  32. Xu, H., Gonzalo, J. A., St Pierre, ., Y, , et al. Leukocytosis and resistance to septic shock in intercellular adhesion molecule 1-deficient mice. J Exp Med. 180, 95-109 (1994).
  33. Gerwin, N., Gonzalo, J. A., Lloyd, C., et al. Prolonged eosinophil accumulation in allergic lung interstitium of ICAM-2-deficient mice results in extended hyperresponsiveness. Immunity. 10, 9-19 (1999).
  34. Johnson, R. C., Mayadas, T. N., Frenette, P. S., et al. Blood cell dynamics in P-selectin-deficient mice. Blood. 86, 1106-1114 (1995).
  35. Corrigan, N., Brazil, D., McAuliffe, F. High-frequency ultrasound assessment of the murine heart from embryo through to juvenile. Reproductive Sciences. 17 (2), 147-14 (2010).
  36. Turnbull, D. H., Bloomfield, T. S., Baldwin, H. S., Foster, F. S., Joyner, A. L. Ultrasound backscatter microscope analysis of early mouse embryonic brain development. Proc Natl Acad Sci U S A. 92, 2239-2243 (1995).
  37. Greco, A., Mancini, M. L., Gargiulo, S., et al. Ultrasound Biomicroscopy in Small Animal Research: Applications in Molecular and Preclinical Imaging. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, (2012).
  38. Pysz, M. A., Guracar, I., Foygel, K., Tian, L., Willmann, J. K. Quantitative assessment of tumor angiogenesis using real-time motion-compensated contrast-enhanced ultrasound imaging. Angiogenesis. 15, 433-442 (2012).
  39. Larina, I. V., et al. Live imaging of blood flow in mammalian embryos using doppler swept-source optical coherence tomography. J.Biomed.Opt. 13 (6), 060506-06 (2008).
  40. Garcia, M. D., Udan, R. S., Hadjantonakis, A. K., Dickinson, M. E. . Live imaging of mouse embryos. 4 (4), 104-10 (2011).
  41. Teichert, A., et al. Endothelial nitric oxide synthase gene expression during murine embryogenesis. Commencement of expression in the embryo occurs with the establishment of a unidirectional circulatory system. Circulation Research. 103 (1), 24-33 (2008).
  42. Walls, J. R., Coultas, L., Rossant, J., Henkelman, R. M. Three-dimensional analysis of vascular development in the mouse embryo. PLoS One. 3 (8), (2008).
check_url/pt/52520?article_type=t

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Citar este artigo
Denbeigh, J. M., Nixon, B. A., Puri, M. C., Foster, F. S. Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound. J. Vis. Exp. (97), e52520, doi:10.3791/52520 (2015).

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