Summary

De bioconjugatie en radiosynthese van<sup> 89</sup> Zr-DFO-gemerkte antilichamen

Published: February 12, 2015
doi:

Summary

Due to its multi-day radioactive half-life and favorable decay properties, the positron-emitting radiometal 89Zr is extremely well-suited for use in antibody-based radiopharmaceuticals for PET imaging. In this protocol, the bioconjugation, radiosynthesis, and preclinical application of 89Zr-labeled antibodies will be described.

Abstract

De uitzonderlijke affiniteit, specificiteit en selectiviteit van antilichamen maken ze bijzonder aantrekkelijk vectoren voor tumor gerichte PET radiofarmaca. Door hun meerdaagse biologische halfwaardetijd, moet antilichamen met positron emitterende radionucliden met relatief lange fysieke verval halfwaardetijden worden gelabeld. Traditioneel, de positron emitterende isotopen 124 I (t 1/2 = 4,18 d), 86 Y (t 1/2 = 14,7 uur) en 64 Cu (t 1/2 = 12,7 uur) gebruikt om antilichamen te labelen PET beeldvorming. Meer recent is echter het veld is getuige een dramatische toename van het gebruik van de positron emitterende radiometaal 89 Zr in antilichamen gebaseerde PET beeldvorming. 89 Zr is een nagenoeg ideaal radioisotoop PET beeldvorming met immunoconjugaten, als het product heeft een fysische halveringstijd -leven (t 1/2 = 78,4 uur) die verenigbaar is met de in vivo farmacokinetiek van antilichamen en zendt een relatief lage energy positron dat hoge resolutie beelden produceert. Bovendien kunnen antilichamen ronduit worden gemerkt met 89 Zr behulp van de-siderofoor afgeleid chelator desferrioxamine (DFO). In dit protocol wordt het prostaatspecifiek membraan antigen gericht antilichaam J591 worden gebruikt als een modelsysteem illustreert (1) de bioconjugatie van de bifunctionele chelator DFO-isothiocyanaat met een antilichaam, (2) de radiosynthese en zuivering van 89 Zr- DFO-mAb radioimmunoconjugaat, en (3) In vivo PET beeldvorming met een 89 Zr-DFO-mAb radioimmunoconjugaat in een muismodel van kanker.

Introduction

Vanwege hun opmerkelijke gevoeligheid, affiniteit en selectiviteit zijn antilichamen lang beschouwd als veelbelovend vectoren voor de afgifte van radio-isotopen kankercellen. Echter hun toepassing in positron emissie tomografie (PET) beeldvorming belemmerd door het ontbreken van een geschikte positron emitterende radio-isotopen voor etikettering. 1-3 Eén van de belangrijkste overwegingen bij het ​​ontwerpen van radioimmunoconjugaten is matching de fysieke verval half- levensduur van de radio-isotoop voor de in vivo farmacokinetiek van het antilichaam. Meer specifiek antilichamen vaak relatief lange meerdaagse biologische halfwaardetijden en dienen derhalve met radioisotopen met vergelijkbare fysische halfwaardetijd worden gelabeld. Voor PET-imaging-toepassingen, hebben antilichamen oudsher radioactief gemerkt geweest met 64 Cu (t 1/2 = 12,7 uur), 86 Y (t 1/2 = 14,7 uur), of 124 I (t 1/2 = 4.18 d). 4, 5 Echter, elk vandeze radio-isotopen bezit belangrijke beperkingen die hun geschiktheid voor klinische beeldvorming belemmeren. Terwijl radioimmunoconjugaten gelabeld met 86 Y en 64 Cu veelbelovend preklinische onderzoeken hebben aangetoond, zowel isotopen bezitten de fysische halfwaardetijd te korte effectief voor beeldvorming bij de mens zijn. 124 I daarentegen een bijna ideale fysische halfwaardetijd beeldvorming met antilichamen, maar het is duur en heeft suboptimale verval eigenschappen die leiden tot relatief lage resolutie ziektebeelden. Bovendien kan 124-gemerkte radioimmunoconjugaten gelden dehalogenering in vivo, een proces dat tumor-tot-achtergrond activiteit verhoudingen kunnen verlagen. 6,7

De rit naar een positron emitterende radio-isotoop te verdringen 64 Cu, 86 Y vinden, en 124 ik in radioimmunoconjugaten heeft de recente stijging van onderzoek aangewakkerd op 89 Zr-gelabelde antilichamen. 8-12 THij reden voor de komst van 89 Zr is eenvoudig: het radiometaal bezit bijna ideaal chemische en fysische eigenschappen voor gebruik in diagnostische PET radioimmunoconjugaten 13 89 Zr wordt geproduceerd via de 89 Y (p, n) 89 Zr reactie op een cyclotron met een. commercieel verkrijgbaar en 100% natuurlijk voorkomende 89 Y doel. 14,15 De radiometaal een positron opbrengst van 23%, vervalt met een halfwaardetijd van 78,4 uur en zendt positronen met relatief lage energie van 395,5 keV (figuur 1). 13,16,17 Het is belangrijk op te merken dat 89 Zr geeft ook een hoge energie 909 keV γ-ray 99% rendement. Hoewel deze emissie niet energetisch bemoeien met de uitgezonden 511 keV fotonen, is het nodig extra aandacht met betrekking tot transport, handling, en dosimetrie. Ondanks dit voorbehoud kan bederf eigenschappen uiteindelijk dat 89 Zr niet alleen een gunstiger half-leven voor beeldvorming met antilichamen dan 86 Y en 64 Cu maar kunnen ook hogere resolutie beelden dan 124 I, die positronen uitzendt met hogere energieën van 687 en 975 keV en een aantal fotonen met energieën in 100-150 keV van de 511 keV-positron gemaakt fotonen. 13 Voorts, 89 Zr is ook veiliger te hanteren, minder duur om te produceren, en residualizes in tumoren effectiever dan de radioactieve tegenhanger. 18,19 Een mogelijke beperking van 89 Zr is dat het niet hoeft een therapeutisch isotopoloog, bijvoorbeeld 86 Y (PET) vs. 90 Y (therapie). Dit voorkomt de opbouw van chemisch identieke, surrogaat beeldvormende middelen die kunnen worden toegepast als dosimetrische scout hun therapeutische tegenhangers. Dat gezegd hebbende, onderzoeken suggereren dat 89 Zr-gelabelde antilichamen hebben potentieel als beeldvorming surrogaten voor 90 Y- en 177 Lu-gelabeld immuunconjugaten.20,21

Vanuit chemisch oogpunt, een groep IV metaal, 89 Zr bestaat als een 4 kation in waterige oplossing. De Zr 4+ ion is zeer geladen, relatief groot (effectieve ionenradius = 0,84 Å), en kan worden aangemerkt als een "harde" catie. Als zodanig vertoont een voorkeur voor liganden dragen maximaal acht harde, anionisch zuurstof donoren. Gemakkelijk de meest voorkomende chelator gebruikt in 89 Zr-gemerkte radioimmunoconjugaten is desferrioxamine (DFO), een siderophore afgeleide acyclische chelator dragende drie hydroxamaat groepen. De ligand stabiel coördineert de Zr 4+ kation snel en zuiver bij kamertemperatuur in biologisch relevante pH, en het verkregen Zr-DFO complex blijft stabiel in de loop van meerdere dagen in zoutoplossing, bloed serum, en volbloed. 22 Computational studies suggereren sterk dat DFO vormt een hexagecoördineerd complex met Zr 4+ waarbij het ​​metaalcentrum gecoördineerd om de drie neutral en drie anionische zuurstof donors van het ligand en twee exogene water liganden (Figuur 2). 23,24 De in vivo gedrag van radioimmunoconjugaten gebruik 89 Zr-DFO conjugatie scaffold is over het algemeen uitstekend. In sommige gevallen, beeldvorming en acute biodistributie studies hebben verhoogde activiteit in de botten van muizen geïnjecteerd met 89 Zr-gemerkte antilichamen, gegevens blijkt dat de osteophilic 89 Zr 4+ kation vrijkomt uit de chelator in vivo en vervolgens Hermineraliseert geopenbaard in het bot. 25 Onlangs is een aantal onderzoeken naar de ontwikkeling van nieuwe 89 Zr 4+ chelatoren bijzonder liganden met acht zuurstof donors zijn verschenen in de literatuur. 24,26,27 echter momenteel DFO is de meest toegepaste chelator in 89 Zr gelabeld radioimmunoconjugaten met een ruime marge. Een verscheidenheid van verschillendebioconjugatie strategieën zijn gebruikt om DFO hechten aan antilichamen, waaronder bioorthogonal click chemie, de reactie van thiol reactieve DFO constructen met cysteïnen in het antilichaam en de reactie van geactiveerde ester dragende DFO constructen met lysinen in het antilichaam. 4,28- 30 Gemakkelijk de meest algemene strategie, echter is het gebruik van een isothiocyanaat dragende derivaat van DFO DFO-NCS (figuur 2). 22 Deze handel verkrijgbaar bifunctionele chelator robuust en betrouwbaar vormt stabiele, covalente bindingen thioureum met de lysinen van de antilichaam (Figuur 3).

De afgelopen jaren zijn diverse 89 Zr-DFO-gelabelde radioimmunoconjugaten gerapporteerd in de literatuur. Preklinische onderzoeken bijzonder overvloedig zijn, die antilichamen variëren van de meer bekende cetuximab, bevacizumab, en trastuzumab meer esoterische antilichamen zoals T-CD105 targetingRC105 en fPSA-targeting 5A10. 30-36 Meer recent, een klein aantal van de vroege fase van klinisch onderzoek met 89 Zr-DFO-gelabelde antilichamen naar voren zijn gekomen in de literatuur. Concreet groepen in Nederland hebben gepubliceerde studies in dienst 89 Zr-DFO-cmAb U36, 89 Zr-DFO-ibritumomabtiuxetan, en 89 Zr-DFO-trastuzumab. 21,32,37 Daarnaast is er een reeks andere klinische studies met 89 Zr-gelabelde radioimmunoconjugaten zijn momenteel aan de gang, met inbegrip van onderzoek hier in het Memorial Sloan Kettering Cancer Center met behulp van het PSMA-targeting 89 Zr-DFO-J591 voor prostaatkanker beeldvorming en de HER2-targeting 89 Zr-DFO-trastuzumab voor borstkanker beeldvorming. 23, 30 Bovendien, terwijl radiogelabelde antilichamen blijven de meest voorkomende 89 Zr-gemerkte radiofarmaceutica, het radiometaal ook steeds meer gebruikt met andere vectoren, zoals peptiden, proteïnen en nanomaterialen. 38-43 </sup>

De modulariteit van deze 89 Zr-DFO etikettering methodiek is een enorme aanwinst. Het repertoire van-biomarker targeting antilichamen is steeds groeiende, en de belangstelling voor het uitvoeren van in vivo PET beeldvorming met deze constructen wint steeds meer terrein. Hierdoor wij dat de ontwikkeling van gestandaardiseerde werkwijzen en protocollen het veld kunnen profiteren. Een uitstekende schriftelijke experimentele protocol voor DFO-NCS vervoeging en 89 Zr radiomerking is al gepubliceerd door Vosjan, et al. 22 We hebben het gevoel dat de visuele demonstratie die door dit werk verder zou kunnen helpen onderzoekers nieuw voor deze technieken. In het protocol bij de hand, zal het prostaatspecifiek membraan antigen gericht antilichaam J591 worden gebruikt als een modelsysteem illustreert (1) de bioconjugatie van de bifunctionele chelator DFO-isothiocyanaat met een antilichaam, (2) de radiosynthese en zuivering van de 89 Zr-DFO-mAb radioimmunoconjugaat,en (3) In vivo PET beeldvorming met 89 Zr-DFO-mAb radioimmunoconjugaat in een muismodel van kanker. 23,44,45

Protocol

Alle van de in vivo dierproeven beschreven werden uitgevoerd volgens een goedgekeurd protocol en onder de ethische richtlijnen van het Memorial Sloan Kettering Cancer Center Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC). 1. Vervoeging van DFO-NCS naar J591 In een 1,7 ml microcentrifugebuis bereiden 2-5 mg / ml oplossing van J591 in 1 ml van ofwel 1x fosfaat gebufferde zoutoplossing (pH 7,4) of 0,5 M HEPES buffer (pH 7,4). Los DFO-NCS in droog DMSO bij een …

Representative Results

De eerste stap in dit protocol de vervoeging van DFO-NCS aan het antilichaam is meestal vrij robuust en betrouwbaar. In het algemeen kan de gezuiverde-chelator gemodificeerde immunoconjugaat verkregen in> 90% opbrengst en met 3 molaire equivalenten van DFO-NCS in de eerste conjugatiereactie een mate-van-labeling van de chelator van ongeveer 1.0-1.5 DFO verkregen / mAb. De 89 Zr radiomerking en zuivering stappen van de procedure zijn eveneens eenvoudig. Bij de concentraties die in het bovenstaande protocol,…

Discussion

Tijdens de constructie, radiolabeling en beeldvorming van 89 Zr-DFO-gelabeld radioimmunoconjugaten algemeen een tamelijk eenvoudige procedure, is het belangrijk om een aantal belangrijke overwegingen in gedachten tijdens elke stap van het proces houden. Bijvoorbeeld, misschien wel de meest waarschijnlijke bron van zorg tijdens de vervoeging stap van de procedure is de samenvoeging van het antilichaam tijdens de conjugatiereactie. Dit probleem is meestal een product van slechte menging van de conjugatie reacti…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs danken prof Thomas Reiner, Dr. Jacob Houghton, en Dr. Serge Lyaschenko voor behulpzaam gesprekken.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number Comments
p-SCN-Bn-DFO Macrocyclics B-705 Store at -80 °C
[89Zr]Zr-oxalate Various, including Perkin-Elmer Caution: Radioactive material
PD-10 Desalting Columns GE Healthcare 17-0851-01  Store at room temperature
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Units EMD Millipore UFC805024 Store at room temperature
Silica Gel Impregnanted RadioTLC Paper Agilent Technologies SGI0001 Cut into strips 0.5 cm wide

Referências

  1. Wu, A. M. Antibodies and antimatter: The resurgence of immuno-PET. Journal of Nuclear Medicine. 50 (1), 2-5 (2009).
  2. Wu, A. M., Olafsen, T. Antibodies for molecular imaging of cancer. Cancer Journal. 14 (3), 191-197 (2008).
  3. Wu, A. M., Senter, P. D. Arming antibodies: prospects and challenges for immunoconjugates. Nature Biotechnology. 23 (9), 1137-1146 (2005).
  4. Zeglis, B. M., Lewis, J. S. A practical guide to the construction of radiometallated bioconjugates for positron emission tomography. Dalton Transactions. 40 (23), 6168-6195 (2011).
  5. Zalutsky, M. R., Lewis, J. S., Welc, M. J., Redvanly, C. S. . Handbook of Radiopharmaceuticals. 24, 685-714 (2003).
  6. Carrasquillo, J. A., et al. 124I-huA33 antibody PET of colorectal cancer. Journal of Nuclear Medicine. 52 (8), 1173-1180 (2011).
  7. Divgi, C. R., et al. Preoperative characterisation of clear-cell renal carcinoma using iodine-124-labelled antibody chimeric G250 (124I-cG250) and PET in patients with renal masses: a phase I trial. The Lancet Oncology. 8 (4), 304-310 (2007).
  8. Severin, G. W., Engle, J. W., Barnhart, T. E., Nickles, R. J. Zr-89 radiochemistry for positron emission tomography. Medicinal Chemistry. 7 (5), 389-394 (2012).
  9. Nayak, T. K., Brechbiel, M. W. Radioimmunoimaging with longer-lived positron-emitting radionuclides: potentials and challenges. Bioconjugate Chemistry. 20 (5), 825-841 (2009).
  10. Vugts, D. J., Van Dongen, G. 89Zr-labeled compounds for PET imaging guided personalized therapy. Drug Discovery Today. 8 (2), e53-e61 (2011).
  11. Dongen, G. A. M. S., Visser, G. W. M., de Hooge, M. N. L. u. b. -., de Vries, E. G., Perk, L. R. Immuno-PET: a navigator in monoclonal antibody development and applications. Oncologist. 12 (12), 1379-1389 (2007).
  12. Deri, M. A., Zeglis, B. M., Francesconi, L. C., Lewis, J. S. PET imaging with 89Zr: From radiochemistry to the clinic. Nuclear Medicine and Biology. 40 (1), 3-14 (2013).
  13. Holland, J. P., Williamson, M. J., Lewis, J. S. Unconventional nuclides for radiopharmaceuticals. Molecular Imaging. 9 (1), 1-20 (2010).
  14. Holland, J. P., Sheh, Y. C., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  15. Meijs, W. E., et al. Production of highly pure no-carrier added 89Zr for the labelling of antibodies with a positron emitter. Applied Radiation and Isotopes. 45 (12), 1143-1147 (1994).
  16. Vugts, D. J., van Dongen, G. A. M. S. 89Zr-labeled compounds for PET imaging guided personalized therapy. Drug Discovery Today: Technologies. 8 (2-4), e53-e61 (2011).
  17. Severin, G. W., Engle, J. W., Barnhart, T. E., Nickles, R. J. 89Zr radiochemistry for positron emission tomography. Medicinal Chemistry. 11 (7), 389-394 (2011).
  18. Perk, L. R., et al. Quantitative PET imaging of Met-expressing human cancer xenografts with 89Zr-labelled monoclonal antibody DN30. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 35 (10), 1857-1867 (2008).
  19. Knowles, S. M., et al. Quantitative immunoPET of prostate cancer xenografts with Zr-89- and I-124-labeled anti-PSCA A11 minibody. Journal of Nuclear Medicine. 55 (3), 452-459 (2014).
  20. Rizvi, S. F., et al. radiation dosimetry and scouting of 90Y-ibritumomab tiuxetan therapy in patients with relapsed B-cell non-Hodgkin’s lymphoma using 89Zr-ibritumomab tiuxetan and PET. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 39 (3), 512-520 (2012).
  21. Perk, L. R., et al. Preparation and evaluation of Zr-89-Zevalin for monitoring of Y-90-Zevalin biodistribution with positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 33 (11), 1337-1345 (2006).
  22. Vosjan, M., et al. Conjugation and radiolabeling of monoclonal antibodies with zirconium-89 for PET imaging using the bifunctional chelate p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine. Nature Protocols. 5 (4), 739-743 (2010).
  23. Holland, J. P., et al. Zr-89-DFO-J591 for ImmunoPET of prostate-specific membrane antigen expression in vivo. Journal of Nuclear Medicine. 51 (8), 1293-1300 (2010).
  24. Deri, M. A., et al. Alternative chelator for (89)Zr-radiopharmaceuticals: Radiolabeling and evaluation of 3,4,3-(LI-1,2-HOPO). Journal of Medicinal Chemistry. 57 (11), 4849-4860 (2014).
  25. Abou, D. S., Ku, T., Smith-Jones, P. M. In vivo biodistribution and accumulation of 89Zr in mice. Nuclear Medicine and Biology. 38 (5), 675-681 (2011).
  26. Guerard, F., Lee, Y. S., Brechbiel, M. W. Rational design, synthesis, and evaluation of tetrahydroxaminc acid chelators for stable complexation of zirconium(IV). Chemistry: A European Journal. 20 (19), 5584-5591 (2014).
  27. Guerard, F., et al. Investigation of Zr(IV) and 89Zr(IV) complexation with hydroxamates: progress towards designing a better chelator than desferrioxamine B for immuno-PET imaging. Chemical Communications. 49 (10), 1002-1004 (2013).
  28. Zeglis, B. M., et al. Modular strategy for the construction of radiometalated antibodies for positron emission tomography based on inverse electron demand Diels-Alder click chemistry. Bioconjugate Chemistry. 22 (10), 2048-2059 (2011).
  29. Tinianow, J. N., et al. Site-specifically Zr-89-labeled monoclonal antibodies for ImmunoPET. Nuclear Medicine and Biology. 37 (3), 289-297 (2010).
  30. Holland, J. P., et al. Measuring the pharmacodynamic effects of a novel Hsp90 inhibitor on HER2/neu expression in mice using Zr-89-DFO-trastuzumab. PLoS ONE. 5 (1), (2010).
  31. Aerts, H., et al. Disparity between in vivo EGFR expression and Zr-89-labeled cetuximab uptake assessed with PET. Journal of Nuclear Medicine. 50 (1), 123-131 (2009).
  32. Nagengast, W. B., et al. Zr-89-Bevacizumab PET of early antiangiogenic tumor response to treatment with HSP90 inhibitor NVP-AUY922. Journal of Nuclear Medicine. 51 (5), 761-767 (2010).
  33. Nagengast, W. B., et al. In vivo VEGF imaging with radiolabeled bevacizumab in a human ovarian tumor xenograft. Journal of Nuclear Medicine. 48 (8), 1313-1319 (2007).
  34. Dijkers, E. C. F., et al. Development and characterization of clinical-grade Zr-89-trastuzumab for HER2/neu immunoPET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 50 (6), 974-981 (2009).
  35. Ulmert, D., et al. Imaging androgen receptor signaling with a radiotracer targeting free prostate-specific antigen. Cancer Discovery. 2 (4), 320-327 (2012).
  36. Hong, H., et al. Positron emission tomography imaging of CD105 expression with 89Zr-Df-TRC105. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 39 (1), 138-148 (2012).
  37. Dijkers, E. C., et al. Biodistribution of Zr-89-trastuzumab and PET omaging of HER2-positive lesions in patients with metastatic breast cancer. Clinical Pharmacolog., & Therapeutics. 87 (5), 586-592 (2012).
  38. Heneweer, C., Holland, J. P., Divilov, V., Carlin, S., Lewis, J. S. Magnitude of enhanced permeability and retention effect in tumors with different phenotypes: Zr-89-abumin as a model system. Journal of Nuclear Medicine. 52 (4), 625-633 (2011).
  39. Holland, J. P., et al. Annotating MYC status with 89Zr-transferrin imaging. Nature Medicine. 18 (10), 1586-1591 (2012).
  40. Jacobson, O., et al. MicroPET imaging of integrin avB3 expressing tumors using 89Zr-RGD peptides. Molecular Imaging and Biology. 13 (6), 1224-1233 (2011).
  41. Keliher, E. J., et al. 89Zr-labeled dextran nanoparticles allow in vivo macrophage imaging. Bioconjugate Chemistry. 22 (12), 2383-2389 (2011).
  42. Abou, D. S., et al. 89Zr-labeled paramagnetic octreotide-liposomes for PET-MR imaging of cancer. Pharmaceutical Research. 30 (3), 878-888 (2013).
  43. Miller, L., et al. Synthesis, characterization, and biodistribution of multiple 89Zr-labeled pore-expanded mesoporous silica nanoparticles for PET. Nanoscale. 6 (9), 4928-4935 (2014).
  44. Zeglis, B. M., et al. An enzyme-mediated methodology for the site-specific radiolabeling of antibodies based on catalyst-free click chemistry. Bioconjugate Chemistry. 24 (6), 1057-1067 (2013).
  45. Nanus, D. M., et al. Clinical use of monoclonal antibody HuJ591 therapy: targeting prostate specific membrane antigen. Journal of Urology. 170 (6 Pt 2), S84-S88 (2003).
  46. Joshi, R., Gangabhagirathi, R., Venu, S., Adhikari, S., Mukherjee, T. Antioxidant activity and free radical scavenging reactions of gentisic acid: in vitro and pulse radiolysis studies. Free Radical Research. 46 (1), 11-20 (2012).
  47. Saran, M., Bors, W. Radiation chemistry of physiological saline reinvestigated: evidence that chloride-derived intermediates play a key role in cytotoxicity. Radiation Research. 147 (1), 70-77 (1997).
  48. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Prichett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), e2771 (2012).
  49. Collier, H., Warner, B. T., Skerry, R. Multiple toe-pinch method for testing analgesic drugs. British Journal of Pharmacology and Chemotherapeutics. 17, 28-40 (1961).
  50. Zanzonico, P. Positron emission tomography: a review of basic principles, scanner design and performance, and current systems. Seminars in Nuclear Medicine. 34 (2), 87-111 (2004).
  51. Anderson, C. J., et al. Copper-64-labeled antibodies for PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 33 (9), 1685-1691 (1992).
  52. Anderson, C. J., et al. Preparation, biodistribution and dosimetry of copper-64-labeled anti-colorectal carcinoma monoclonal antibody fragments 1A3-F(ab’)2. Journal of Nuclear Medicine. 36 (5), 850-858 (1995).
  53. Lindmo, T., Boven, E., Cuttitta, F., Fedorko, J., Bunn, P. A. Determination of the immunoreactive fraction of radiolabeled monoclonal antibodies by linear extrapolation to binding at infinite antigen excess. Journal of Immunological Methods. 72 (1), 77-89 (1984).
  54. Lindmo, T., Bunn, P. A. Determination of the true immunoreactive fraction of monoclonal antibodies after radiolabeling. Methods in Enzymology. 121 (1), 678-691 (1986).
  55. Cohen, R., et al. Inert coupling of IRDye800CW to monoclonal antibodies for clinical optical imaging of tumor targets. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 1 (1), 31-43 (2011).
  56. Ruggiero, A., et al. Targeting the Internal Epitope of Prostate-Specific Membrane Antigen with Zr-89-7E11 Immuno-PET. Journal of Nuclear Medicine. 52 (10), 1608-1615 (2011).
  57. Nayak, T. K., Garmestani, K., Milenic, D. E., Brechbiel, M. W. . PET and MRI of Metastatic Peritoneal and Pulmonary Colorectal Cancer in Mice with Human Epidermal Growth Factor Receptor 1-Targeted Zr-89-Labeled Panitumumab. Journal of Nuclear Medicine. 53 (1), 113-120 (2012).
check_url/pt/52521?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zeglis, B. M., Lewis, J. S. The Bioconjugation and Radiosynthesis of 89Zr-DFO-labeled Antibodies. J. Vis. Exp. (96), e52521, doi:10.3791/52521 (2015).

View Video