The modified Landis technique enables paired measurement of the hydraulic conductivity of individual microvessels in the mesentery of normal and genetically modified rats under control and test conditions using microperfusion techniques. It provides a convenient method to evaluate mechanisms that regulate microvessel permeability and transvascular exchange under physiological conditions.
Experiment för att mäta permeabilitetsegenskaper av individuellt perfuserade mikrokärl ger en brygga mellan utredning av molekylära och cellulära mekanismer som reglerar vaskulär permeabilitet i odlade endotelceller cellmonoskikt och funktionella valuta egenskaperna hos hela mikrovaskulära sängar. En metod för att cannulate och BEGJUTA venular mikrokärl av råtta tarmkäxet och mäta den hydrauliska konduktiviteten hos microvessel väggen beskrivs. De viktigaste utrustning som behövs innefattar en intravital mikroskop med en stor modifierad scen som stöder mikromanipulatorer att placera tre olika mikroverktyg: (1) en avfasad glasmikropipett att kanylera och BEGJUTA mikrokärls; (2) en glasmikro ockluderingsanordning att övergående blockera perfusion och möjliggöra mätning av transvaskulär vattenflöde rörelse vid en uppmätt hydrostatiskt tryck, och (3) en trubbig glasstav för att stabilisera den mesenteriala vävnaden vid stället för kanylering. Den modifierade Landis mikro-ocklusion technique använder röda blodkroppar suspenderade i den konstgjorda perfusatet som markörer för transvaskulär vätska rörelse, och även möjliggör upprepade mätningar av dessa flöden som experimentella betingelser förändras och hydrostatisk och kolloidosmotiskt tryckskillnad över de mikrokärl är noggrant kontrollerade. Mätningar av hydraulisk konduktivitet först med hjälp av en kontroll perfusat, sedan efter återkanyle av samma mikrokärls med test perfusat möjliggör parade jämförelser av mikrokärls respons under dessa väl kontrollerade förhållanden. Försök att utvidga metoden till mikrokärl i tarmkäx från möss med genetiska modifieringar förväntas ändra kärlpermeabilitet var starkt begränsad på grund av avsaknaden av långa raka och ogrenade mikrokärl i musen tarmkäxet, men den senaste tillgången på råttorna med liknande genetiska modifieringar med hjälp av den crispr / Cas9 tekniken förväntas öppna nya områden för utredning där de metoder som beskrivs häri kan tillämpas. </p>
Microperfusion i kärlsystemet innebär fastställande kontrollerat flöde av en artificiell perfusatet med känd sammansättning via en mikropipett i ett blodkärl vanligen mindre än 40 pm i diameter. Den perfusion fartyget ligger inom dess normal vävnad miljö och perfusion med djurets blod fram till tidpunkten för kanyle. När den används tillsammans med ett område av video avbildning eller fluorometriska metoder de situ microperfusion möjliggör mätning av vatten och lösta strömmar över väggarna av mikrokärl under betingelser där de drivande krafterna för dessa flöden är kända och de permeabilitetsegenskaper hos kärlväggen kan direkt utvärderas. Vidare, genom att styra sammansättningen av vätskan som omger mikrokärls i vävnaden (perfusat och superfusate), reglering av mikrokärls permeabilitet och utbyte kan undersökas genom att endotelcellerna bildar mikrokärlsväggen att utsättas för en mängd olika experimental förhållanden (agonister, modifierade perfusion, fluorescerande indikatorer för att mäta intracellulära sammansättning och signalering) för att exakt uppmätta tidsperioder (sek till hr). Dessutom kan ultra eller cytokemiska utvärderingar av viktiga cellulära molekylära strukturer som reglerar barriären undersökas i samma mikrokärl där permeabilitet är direkt mäts. Tillvägagångssättet bildar därmed en brygga mellan utredning av de cellulära och molekylära mekanismer för att modifiera endothelial barriärfunktion i odlade endotelceller cellmonoskikt och utredning i intakta mikrokärl. Se följande recensioner för vidare utvärdering 1-6.
En begränsning av microperfusion är att det kan endast användas i mikrovaskulära sängar som är tunn, genomskinlig och har tillräcklig strukturell integritet för att möjliggöra kanyle med ett glas mikropipett. Medan tidiga undersökningar används groda mikrokärl i tarmkäxet och tunna kutan pectoris muscle 7,8, den i särklass mest använda preparatet i däggdjursmodeller är råtta tarmkäxet 9-15. De flesta undersökningar har fokuserat på akuta förändringar i vaskulär permeabilitet studerades under perioder av 1-4 timmar, men senare undersökningar har utökats till mätningar på enskilda fartyg 24-72 timmar efter en initial perfusion 12,16. Den nyutvecklade crispr teknik, som lovar att göra mer genetiskt modifierade råttmodeller för att studera vaskulär permeabilitet reglering 17 bör möjliggöra de metoder som beskrivs i detta meddelande som skall tillämpas i venular mikrokärl i tarmkäxet i dessa viktiga nya råttmodeller.
Metoden kräver ett inverterat mikroskop utrustad med en specialbyggd mikroskop skede stor nog att rymma både djuret preparatet och minst tre mikromanipulatorer används för att positionsmikroverktyg nära perfusion fartyget och att anpassa en perfusion mikropipett med fartygetlumen. Exempelvis en anpassad plattform för en xy mikroskop skede (ca 90 x 60 cm) kan tillverkas av en 1 cm tjock stålplåt med en rostskyddad beläggning. Scenen är fäst vid en ingenjörsindextabell eller två dove-tail glas monterade i rät vinkel och uppburna på Teflon pelare eller boll överföringar för rörelse i horisontalplanet. En typisk rigg (se figur 2) har mycket gemensamt med mikroskop och mikropositioneringsutrustning som används för en rad intravital mikrocirkulation experiment såsom de att mäta enda kärl blodflödet och hematokrit, lokal syretillförseln genom blod perfusion mikrokärl, reglering av vaskulär glatt muskeltonus, och den lokala mikrovaskulära ansamling av fluorescerande spårämnen injiceras i hela cirkulationen. 18-26
Den grundläggande aspekten av tekniken är mätning av volymflödet (J v) över en definierad yta (S) i microvessel väggen. Att uppnådetta via den modifierade Landis tekniken beskriven häri en enkel inverterat mikroskop är tillräckligt. En liten videokamera är monterad på bildporten och videosignalen, med ett tillsatt tidsbas, visas på en videomonitor och registreras antingen i digital form på en dator eller som en digital eller analog signal på en videobandspelare. När väl mikrokärlskanyleras den del av mikrokärls synlig för kameran kan ändras genom att flytta scenen och manipulatorer som en enhet utan att störa kanyler.
Mätning av transvaskulär flöden kan också kombineras med mer detaljerade undersökningar med hjälp av en sofistikerad fluorescensmikroskop med lämpliga filter som riggar används för mätning av lösta ämnen permeabilitet, fluorescerande förhållande övervakning av cytoplasmiskt kalcium eller andra cellulära mekanismer, och konfokal avbildning 6,12,13, 27. En viktig fördel med alla microperfusion metoder är förmågan att göra upprepade mätningar på samma fartygUnder kontrollerad förändring av drivkraft som hydrostatiska och onkotiska tryck, eller inducerade förändringar i fartygs svar på inflammatoriska tillstånd. Den vanligaste konstruktionen är en parad jämförelse av uppmätt hydraulisk konduktivitet (L p) på samma fartyg med fartyget först perfusion via en mikropipett fylld med en styr perfusat och den röda cellsuspensionen för att etablera en baslinje permeabilitet stat, med en andra pipett med testmedlet till perfusatet. Flera kanyle är möjligt med cykeln upprepas efter reperfusion med kontroll pipett.
Föreliggande protokoll visar kanyler och mikroperfusionskammaren av en venular kärl i rått tarmkäxet att registrera vatten flöden över mikrokärlsväggen och mäta Lp av kärlväggen, ett användbart index på permeabiliteten av den gemensamma vägen för vatten och lösta ämnen tvärs den intakta endotelial barriär. Förfarandet kallas den modifierade Landis technique eftersom den ursprungliga Landis principen att använda den relativa rörelsen av röda celler som ett mått på transvaskulär vätskeutbytet efter perfusionen är blockerad bevaras 28, men området av experimentella betingelser (t.ex., de hydrostatiska och albumin onkotiska tryckskillnader över hela mikrokärlsväggen) tillgänglig efter microperfusion är mycket större än i uncannulated blod perfusion mikrokärl 8,29.
Uppgifter om L s beräkningar. Även transvaskulär vätska rörelse uppstår när fartyget är fritt perfusion, är sådant utbyte alldeles för liten för att mätas vid fri perfusion eftersom det är typiskt mindre än 0,01% av fartygets perfusionshastigheten. När emellertid perfusion transient stoppas genom ockluderar mikrokärls, transvaskulär flöde (dvs filtrering) mäts från förflyttning av markör röda celler i lumen som kolonnen av vätska mellan en markör av röda celler och…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av National Institutes of Health bidrag HL44485 och HL28607.
MICROSCOPE, TABLE AND STAGE | |||
inverted microscope (metallurgical type) with trinocular head for video: example | Olympus | CK-40 | try to place eyepieces higher relative to stage–you have to look through eyepieces while reaching around to top of stage over intervening micromanipulators |
inverted microscope (metallurgical type) with trinocular head for video: example | Leica | DMIL | try to place eyepieces higher relative to stage–you have to look through eyepieces while reaching around to top of stage over intervening micromanipulators |
narrow diameter, long working distance objective: example | Nikon | Nikon E Plan 10×/0.25 LWD | |
stage platform–1/2 inch or 1 cm sheet steel | welding shop | this should be heavy to reduce vibration | |
Unislide x-y table: dove tail slides | Velmex | AXY4006W1 | |
VIDEO | |||
CCD video camera: example | Pulnix | TM-7CN (no longer available) | no color needed |
video capture system with audio–generic | |||
video playback system (completely still frame, single frame motion) | |||
small microphone | |||
MICROMANIPULATORS, HOLDERS | |||
micromanipulator, XYZ (3) | Prior/Stoelting (no longer available) | look for fine Z, and larger range of travel in coarse drives for ease of positioning | |
hydraulic probe drive, one way | FHC | 50-12-1C | need to buy either manual drive or electronic drive |
manual drum drive | FHC | 50-12-9-02 | |
or hydraulic drive, 3 way | Siskiyou Corporation | MX610 (1-way) or MX630 (3-way) | great for short arms, water filled and must be sent back for refill ~every 2 years |
connectors/rods/holders | Siskiyou Corporation | MXC-2.5, MXB etc. | |
pin vise | Starrett | 162C | to hold restrainer |
pipette holder | World Prescision Instruments | MPH3 | |
water manometer ~120 cm | |||
MICROSCOPE TRAY | |||
clear Plexiglas for microscope tray for animal | |||
3/4 inch polished quartz disc ~1/4 inch tall | Quartz Scientific Inc. | custom | (or polished plexiglass, glass); make sure the height is less than working distance of objective |
Plexiglas glue (Weld-on 4: CAUTION CARCINOGEN) | |||
medical adhesive for tissue well | NuSil | MED-1037 | |
All-purpose silicone rubber heat mat, 5" L x 2" W | Cole Parmer | EW-03125-20 | heater for microscope tray–needs cord and controller–240V version available |
Power Cord Adapter for Kapton Heaters and Kits, 6 ft, 120 VAC | Cole Parmer | EW-03122-75 | |
STACO 3PN1010B Variable-Voltage Controller, 10 A; 120 V In, 0-140 V Out | Cole Parmer | EW-01575-00 | |
PIPET MANUFACTURE | |||
vertical pipette puller | Sutter Instrument Company | P-30 with nichrome filament | |
1.5 mm OD thin wall capillary tubing | Sutter Instrument Company | B150-110-10 | |
pipette grinder air stone and dissection microscope–see reference in text | or purchase a package from Sutter Instruments or World Precision Instruments | ||
RX Honing Machine, System II | RX Honing Machine Corporation | MAC-10700 Rx System II Machine | alternative for air stone, use with a dissecting microscope mounted at an angle |
with ceramic sharpening disc | RX Honing Machine Corporation | use "as is" or attach lapping film | |
lapping film sheets, 0.3 or 0.5 um | 3M | part no. 051144 80827 | 268X Imperial lapping film sheets with adhesive back–can be purchased from Amazon |