Summary

La perfusé Technique du rein de souris isolé

Published: November 17, 2016
doi:

Summary

Le rein de souris isolé perfusé (MIPK) est une technique pour la tenue d' un rein de souris ex vivo sous conditions perfusés et fonctionnelles pendant 1 h. Les tampons et les techniques chirurgicales sont décrits en détail.

Abstract

Le rein de souris isolé perfusé (MIPK) est une technique pour la tenue d' un rein de souris ex vivo sous conditions perfusés et fonctionnelles pendant 1 h. Ceci est une condition préalable à l'étude de la physiologie de l'organe isolé et pour de nombreuses applications innovantes qui peuvent être possible à l'avenir, y compris perfusion décellularisation pour les reins bioingénierie ou l'administration d'anti-rejet ou de la drogue du génome édition à des doses élevées pour amorcer le rein pour la transplantation. Pendant le temps de la perfusion, le rein peut être manipulée, la fonction rénale peut être évaluée, ainsi que divers produits pharmaceutiques administrés. Après la procédure, le rein peut être transplanté ou traitées pour la biologie moléculaire, l'analyse biochimique ou examen microscopique.

Ce document décrit le perfusat et la technique chirurgicale nécessaire pour l'ex vivo perfusion des reins de souris. Détails de l'appareil de perfusion sont données et les données sont présentées montrant la vdonnées flux sanguin rénal, la résistance vasculaire, et d'urine comme micrographies fonctionnels électroniques de transmission des différents segments de néphron comme des lectures morphologiques et western blots de protéines de transport des différents segments de néphron comme lecture moléculaire: ESPONSABILITE de la préparation du rein.

Introduction

La perfusion isolée des organes a fait l'objet d'un effort continu entre les physiologistes depuis de nombreuses décennies 1. La technique permet à la fonction de l'organe, sans influences systémiques tels que la pression artérielle, les hormones, ou les nerfs, à étudier. Carl Eduard Loebell est considéré comme le premier à avoir décrit la perfusion réussie d'un rein isolé, en 1849 2. Depuis lors, le dispositif de perfusion a subi de raffinement significative. Frey et Gruber introduit un poumon artificiel pour l' oxygénation et pulsatiles pompes pour perfusion continue 2. Alors que les premiers chercheurs principalement étudié les reins de grands mammifères , à savoir, les porcs et les chiens 2 3 -le premier rapport de l'utilisation de reins de rats, par Weiss et al. , Était une étape importante dans l'étude de la perfusion de petit mammifère organe 4. Schurek et al. signalé la nécessité d'ajouter des érythrocytes de mammifère au perfusat si tubulaire rénale suffisanteoxygénation devait être atteint 5. Critical pour les expériences à long terme a été l'introduction de la dialyse continue de la mémoire tampon par le même groupe de recherche 6. En 2003, Schweda et al. ont été les premiers à signaler un rein de souris fonctionnelle isolé perfusé (MIPK) 7, puis affiné par Rahgozar et al. 18 et Lindell et al. 14.

Bien que techniquement plus difficile que le rat isolé rein perfusé, l'utilisation du MIPK porte l'avantage de permettre l'utilisation d'une large gamme de souris génétiquement modifiées. Cet article présente les détails de la méthode des auteurs pour perfuser les reins de souris isolées pendant 1 h. La méthode permet l'évaluation continue des taux d'écoulement rénale, la résistance vasculaire, la libération d'hormones, l'analyse des gaz du sang, analyse d'urine, et l'application de la drogue. Après la procédure, les reins peuvent être traitées pour l'analyse moléculaire et biochimique, fixés pour la microscopie, outransplantées dans une souris réceptrice (figure 1).

Figure 1
Figure 1: Vue d'ensemble de possibles entrées / sorties du rein isolé perfusé. BGA: analyse des gaz du sang. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Cette technique sera probablement recevoir une attention croissante au cours des prochaines années, car de nombreuses applications innovantes sont en cours de discussion à l'aube de longue normothermique perfusion rénale avant la transplantation (avec ou sans l'application d'anti-rejet ou de la drogue du génome édition) 8, 9, 10 , 11, la bioingénierie des reins entiers de échafauds décellularisés 12, et l'application de doses élevées de colorants fluorescents pour multiphotonique imagerie 13 </sup>. Il est également un modèle idéal avec lequel pour étudier le rôle des gènes spécifiques lors de lésions rénales aiguës 14.

Un protocole étape par étape est donnée pour permettre à d'autres laboratoires pour effectuer isolé souris perfusion rénale avec succès. Tout d'abord, la composition et la préparation de la mémoire tampon est spécifiée. Ensuite, l'opération est décrite en détail, et les étapes essentielles sont représentées. En troisième lieu, les données sont présentées qui sont représentatives d'une préparation réussie: le flux sanguin rénal, la résistance vasculaire, le taux de filtration glomérulaire, et l'électrolyte fractionnée d'excrétion toutes les mesures que fonctionnelles des micrographies de viabilité et électronique à transmission de la morphologie des différents segments de néphron des reins perfusés fixée après 1 h de perfusion.

Protocol

Toutes les procédures impliquant des animaux décrits dans ce manuscrit ont été menées conformément au droit suisse et approuvés par l'administration vétérinaire du canton de Zurich, en Suisse. 1. Préparation du tampon Préparer des solutions 1 – 4 et la solution d' hormone antidiurétique (ADH) (tableau 1). Préparer le tampon de dialyse (tableau 1). NOTE: Ceci est le tampon utilisé comme tampon de dialyse au co…

Representative Results

Avec le procédé décrit, les reins de souris isolées peuvent rester viables pendant au moins 1 h. Nous avons testé la viabilité du tissu après 1 h de perfusion continue avec fonctionnelle (flux sanguin rénal et la résistance vasculaire, l' analyse des gaz du sang d'écoulement veineux, le taux de filtration glomérulaire, excrétion fractionnelle Na + et K +, et l'osmolalité urinaire) et morphologique électronique (transmission microscopie, TEM…

Discussion

La souris isolé rein perfusé est un outil pour l' étude de la fonction rénale dans un environnement contrôlé ex vivo pendant 1 heure, combler le fossé entre les expériences in vivo chez les animaux intacts, ce qui peut être faussée par l'impact de nombreux facteurs systémiques, et des expériences in vitro en segments de néphron isolés ou des cellules en culture, qui négligent nécessairement l'impact de la structure des organes intacts sur la fonction. Il es…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Hans-Joachim Schurek for invaluable scientific advice. The authors would like to thank Monique Carrel and Michèle Heidemeyer for excellent technical assistance, David Penton Ribas and Nourdine Faresse for a critical reading of the manuscript and Carsten Wagner and Jürg Biber for the NaPi-2a antibody. This work was supported by the Swiss National Centre for Competence in Research “Kidney.CH” and by a project grant (310030_143929/1) from the Swiss National Science Foundation.

Materials

Perfusion Circuit:
Moist chamber 834/8 Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-2901
Cannular with basket and side port Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-2947
Thermostat TC120-ST5  Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-4544
ISM 827/230V Roller Pump Reglo Analogue Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-0114
Reservoir jacketed for buffer solution 1L Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-3438
Reservoir jacketed for buffer solution 0.5L Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-3436
Pressure Transducer APT300  Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-3862
TAM-D Plugsys Transducer Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-1793
SCP Plugsys servo controller Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-2806
Windkessel  Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-3717
HSE-USB data acquisition Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH 73-3330
Low-Flux Dialysator Diacap Polysulfone B.Braun 7203525
PE-Tubing for aorta cannulation 1.19mm I.D. x 1.70mm O.D. Scientific Commodities Inc. BB31695-PE/8
Name Company Catalog Number Comments
Buffer reagents:
Aminoplasmal 10% B.Braun 134518064
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P2256-25G
L-Glutamic acid monosodium salt hydrate Sigma-Aldrich G1626-100G
L-(-)-Malic acid sodium salt Sigma-Aldrich M1125-25G
Sodium-L-Lactate Sigma-Aldrich L7022-10G
alpha-Ketoglutaric acid sodium salt Sigma-Aldrich K1875-25G
NaCl Sigma-Aldrich 31434-1KG-R
NaHCO3 Sigma-Aldrich S5761-5KG
KCl Sigma-Aldrich 60130-1KG
Urea Sigma-Aldrich U5378-500G
Creatinine Sigma-Aldrich C4255-10G
Ampicillin Roche 10835242001
MgCl2 * 6H2O Sigma-Aldrich M2393-500G
D-Glucose Sigma-Aldrich G8270-1KG
CaCl2 * 6H2 Riedel-de-Haën 12074
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S9638-500G
Na2HPO4 Sigma-Aldrich S0876-500G
Antidiuretic Hormone dDAVP Sigma-Aldrich V2013-1MG
FITC-Inulin Sigma-Aldrich
Filter used for erythrocyte filtration Macherey-Nagel MN 615
BGA Analysis:
ABL 80 flex Radiometer Medical ApS
Electron Microscope:
Philips CM100 TEM FEI

Referências

  1. Carrel, A., Lindbergh, C. A. The culture of whole organs. Science (New York, N.Y.). 81 (2112), 621-623 (1935).
  2. Skutul, K. . Über Durchströmungsapparate Pflüger’s Archiv. 123 (4-6), 249-273 (1908).
  3. Nizet, A. The isolated perfused kidney: possibilities, limitations and results. Kidney Int. 7 (1), 1-11 (1975).
  4. Weiss, C., Passow, H., Rothstein, A. Autoregulation of flow in isolated rat kidney in the absence of red cells. Am J Physiol. 196 (5), 1115-1118 (1959).
  5. Schurek, H. J., Kriz, W. Morphologic and functional evidence for oxygen deficiency in the isolated perfused rat kidney. Lab Invest. 53 (2), 145-155 (1985).
  6. Stolte, H., Schurek, H. J., Alt, J. M. Glomerular albumin filtration: a comparison of micropuncture studies in the isolated perfused rat kidney with in vivo experimental conditions. Kidney Int. 16 (3), 377-384 (1979).
  7. Schweda, F., Wagner, C., Krämer, B. K., Schnermann, J., Kurtz, A. Preserved macula densa-dependent renin secretion in A1 adenosine receptor knockout mice. AJP Renal Physiol. 284 (4), F770-F777 (2003).
  8. Moers, C., Smits, J. M., et al. Machine perfusion or cold storage in deceased-donor kidney transplantation. N Engl J Med. 360 (1), 7-19 (2009).
  9. Nicholson, M. L., Hosgood, S. A. Renal transplantation after ex vivo normothermic perfusion: the first clinical study. Am J Transplant. 13 (5), 1246-1252 (2013).
  10. Worner, M., Poore, S., Tilkorn, D., Lokmic, Z., Penington, A. J. A low-cost, small volume circuit for autologous blood normothermic perfusion of rabbit organs. Art Org. 38 (4), 352-361 (2014).
  11. Kaths, J. M., Spetzler, V. N., et al. Normothermic Ex Vivo Kidney Perfusion for the Preservation of Kidney Grafts prior to Transplantation. J Vis Exp. (101), e52909 (2015).
  12. Song, J. J., Guyette, J. P., Gilpin, S. E., Gonzalez, G., Vacanti, J. P., Ott, H. C. Regeneration and experimental orthotopic transplantation of a bioengineered kidney. Nature Med. 19 (5), 646-651 (2013).
  13. Hall, A. M., Crawford, C., Unwin, R. J., Duchen, M. R., Peppiatt-Wildman, C. M. Multiphoton imaging of the functioning kidney. JASN. 22 (7), 1297-1304 (2011).
  14. Lindell, S. L., Williams, N., Brusilovsky, I., Mangino, M. J. Mouse IPK: A Powerful Tool to Partially Characterize Renal Reperfusion and Preservation Injury. Open Transplant J. 5, 15-22 (2011).
  15. Wagner, C., De Wit, C., Kurtz, L., Grünberger, C., Kurtz, A., Schweda, F. Connexin40 is essential for the pressure control of renin synthesis and secretion. Circ Res. 100 (4), 556-563 (2007).
  16. Czogalla, J., Vohra, T., Penton, D., Kirschmann, M., Craigie, E., Loffing, J. The mineralocorticoid receptor (MR) regulates ENaC but not NCC in mice with random MR deletion. Pflüger’s Archiv. , (2016).
  17. Poosti, F., et al. Precision-cut kidney slices (PCKS) to study development of renal fibrosis and efficacy of drug targeting ex vivo. Dis Model Mech. 8 (10), 1227-1236 (2015).
  18. Rahgozar, M., Guan, Z., Matthias, A., Gobé, G. C., Endre, Z. H. Angiotensin II facilitates autoregulation in the perfused mouse kidney: An optimized in vitro model for assessment of renal vascular and tubular function. Nephrology. 9 (5), 288-296 (2004).
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Citar este artigo
Czogalla, J., Schweda, F., Loffing, J. The Mouse Isolated Perfused Kidney Technique. J. Vis. Exp. (117), e54712, doi:10.3791/54712 (2016).

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