Here, we present a protocol for the determination of intracellular signaling events induced in viable cells by physical interaction with adjacent dead or dying cells. The protocol focuses on signaling events induced by receptor-mediated recognition of the dead cells, as opposed to their phagocytic uptake or release of soluble mediators.
Les cellules meurent par apoptose, également appelé mort cellulaire comme réglementé, acquérir plusieurs nouvelles activités qui leur permettent d'influencer la fonction des cellules vivantes adjacentes. activités vitales, comme la survie, la prolifération, la croissance et la différenciation, sont parmi les nombreuses fonctions cellulaires modulées par les cellules apoptotiques. La capacité de reconnaître et de répondre à des cellules apoptotiques semble être une caractéristique universelle de toutes les cellules, indépendamment de la lignée ou de l'organe d'origine. Toutefois, la diversité et la complexité de la réponse à des cellules apoptotiques mandats qu'un grand soin soit pris en disséquant les événements de signalisation et les voies responsables de tout résultat particulier. En particulier, il faut distinguer entre les multiples mécanismes par lesquels les cellules apoptotiques peuvent influer sur les voies de signalisation intracellulaire dans les cellules répondeuses viables, comprenant: la reconnaissance médiée par le récepteur de la cellule apoptotique, la libération de médiateurs solubles par les cellules apoptotiques et / ou de l'engagement de la phagomachines cytic. Ici, nous fournissons un protocole permettant d'identifier les événements de signalisation intracellulaires qui sont induits dans les cellules répondeuses viables après leur exposition à des cellules apoptotiques. Un avantage majeur du protocole réside dans l'attention qu'il porte à la dissection du mécanisme par lequel les cellules apoptotiques modulent des événements dans les cellules répondant de signalisation. Bien que le protocole est spécifique d'une lignée conditionnellement immortalisée de rein de souris proximale de la cellule tubulaire (cellules BU.MPT), elle est facilement adaptable à des lignées cellulaires qui ne sont pas d'origine épithéliale et / ou dérivés d'organes autres que le rein. L'utilisation de cellules mortes comme un stimulus introduit plusieurs facteurs uniques qui peuvent nuire à la détection d'événements de signalisation intracellulaires. Ces problèmes, ainsi que des stratégies visant à minimiser ou les contourner, sont discutés dans le protocole. L'application de ce protocole devrait aider notre connaissance croissante de la grande influence que les cellules mortes ou mourantes exercent sur leurs voisins en direct, à la fois dans la santé et dans diseÃproprement parler.
Apoptose, ou réglementé la mort cellulaire 1, contribue de manière essentielle à l'entretien et le développement des tissus. Vu la plus simple, permet d'apoptose âgés, endommagées, ou les cellules excédentaires à éliminer sans nuire aux tissus environnants 2,3. La contribution de l'apoptose à l'homéostasie tissulaire, cependant, est nettement plus dynamique et varié. Les cellules meurent par apoptose acquièrent plusieurs nouvelles activités, à la fois sécrétée et associée aux cellules, qui leur permettent d'influencer la fonction des cellules vivantes adjacentes 4-10. Des études antérieures ont porté sur la capacité des cellules apoptotiques pour supprimer l' inflammation 11-16, mais les cellules apoptotiques modulent également une large gamme de fonctions cellulaires, y compris des activités vitales comme la survie 4,9,10, la prolifération 4,9,10, la différenciation 17, migration 18, et la croissance 19. De plus, ces effets ne sont pas limités aux phagocytes professionnels, comme macrophages, mais étendre à pratiquement tous les types et les lignées cellulaires, y compris les cellules traditionnellement non phagocytaires, telles que les cellules épithéliales et endothéliales 7,9,10,18-21.
La réponse spécifique des cellules vivantes adjacentes suite à une exposition à des cellules apoptotiques dépend de multiples facteurs qui se rapportent à la fois les cellules répondant viables et les cellules apoptotiques eux-mêmes. Par exemple, bien que l' exposition à des cellules apoptotiques inhibe la prolifération des macrophages murins et les cellules epitheliales tubulaires proximales des reins (PTECs), ces deux types de cellules diffèrent considérablement dans leur réponse à la survie des cellules apoptotiques 4,6,9,10. Les cellules apoptotiques favorisent la survie des macrophages, mais induisent la mort apoptotique de PTECs 4,6,9,10. En particulier, la réponse aux cellules apoptotiques peuvent varier , même parmi les cellules répondant de la même lignée, en fonction de l'organe de la cellule de réponse d'origine 10 (par exemple, PTECs rénaux par rapport à l' épithélium mammairecellules) ou état d'activation 22 (par exemple, les neutrophiles). A l' inverse, les cellules apoptotiques peuvent provoquer des réactions différentes dans la même cellule en fonction de la nature du stimulus apoptotique 10,23 ou au stade de l' apoptose 10,14.
Compte tenu de la diverseness et de la complexité de la réponse à des cellules apoptotiques, un grand soin doit être pris à disséquer les événements de signalisation et les voies responsables de tout résultat particulier. Tout d' abord, les réponses nécessitant une interaction physique directe entre les cellules viables et apoptotiques doivent être différenciés de ceux provoqués par les médiateurs solubles libérés ou générés par la cellule apoptotique 3,6-10. Si une interaction physique est nécessaire, une différenciation supplémentaire doit être effectuée. les événements de signalisation peuvent dépendre de la reconnaissance médiée par le récepteur de la cellule apoptotique, indépendamment de l'engloutissement subséquente ou de l'absorption phagocytaire, indépendamment du récepteur spécifique qui se lie à la cellule apoptotique 3-7,9,10,19. Dans ce dernier cas, la réponse est non spécifique aux cellules apoptotiques, et peut être déclenchée par n'importe quel matériau phagocytaire 4,6.
L'importance de ces différences peut à nouveau être appréciée en comparant les réponses des macrophages et PTECs rénaux. Pour les deux types de cellules, l'exposition à des cellules apoptotiques modifie l'activité de la pro-survie kinase Akt. La modulation dépend de l' interaction physique, étant donné que la séparation des cellules apoptotiques et de répondre par une membrane de polycarbonate de 0,4 um supprime la réponse 4,9,10,19. Cependant, la réponse de PTECs est médiée par un récepteur indépendant de la phagocytose, alors que la réponse des macrophages est entraînée par phagocytose 4,9,10,19. Cette conclusion est renforcée par le fait que l' exposition à des billes de latex, un stimulus phagocytaire neutre, n'a pas d' effet sur l' activité Akt dans PTECs, mais imite l'effet des cellules apoptotiques dans les macrophages 4,9.
"> Bien que moins bien étudié, les cellules meurent par nécrose ou mort accidentelle de la cellule 1, modulent également la fonction des cellules à proximité viables 3-10,19. Comme les cellules apoptotiques, les cellules nécrotiques exercent leurs effets à travers une variété de mécanismes, notamment la fuite du contenu intracellulaire à travers leur membrane cellulaire rupture 3,5,6,9,24. de nombreuses cellules, y compris les PTECs et les macrophages, possèdent des récepteurs distincts non concurrentes pour les cellules meurent par une nécrose de 5,9. l' engagement de ces récepteurs induit des événements de signalisation qui sont souvent opposés à ceux induits par l' engagement des récepteurs des cellules apoptotiques 4-10,19. par exemple, dans PTECs, les cellules nécrotiques augmentent la phosphorylation de Akt, tandis que les cellules apoptotiques diminue la phosphorylation 9,10,19.Ici, nous décrivons un protocole pour identifier les événements de signalisation intracellulaires induits dans PTECs rénaux viables par la reconnaissance médiée par le récepteur des PTECs adjacents apoptotiques <sup> 9,10,19. Bien que le protocole est spécifique à une lignée cellulaire immortalisée de manière conditionnelle PTEC appelées cellules BU.MPT 9,10,19,25,26, elle est facilement adaptable à des lignées cellulaires qui ne sont pas d'origine épithéliale et / ou dérivés d'autres organes que le rein. Surtout, l'utilisation de cellules apoptotiques comme un stimulant de cellules pose certaines difficultés expérimentales intrinsèques ne sont pas présents avec des ligands solubles. Le plus important est que les cellules apoptotiques doivent être ajoutés sous forme d'une suspension plutôt que comme une solution. Ces difficultés, ainsi que des stratégies visant à minimiser ou les contourner, sont discutés dans le protocole. Presque toutes les techniques décrites dans le protocole sont simples et standard pour la culture cellulaire. L'avantage de ce protocole réside dans son attention sur les multiples mécanismes par lesquels les cellules apoptotiques modulent la transduction du signal dans les cellules répondantes. Ces mécanismes comprennent la liaison par l'intermédiaire des déterminants de surface ou des molécules de pontage à des récepteurs spécifiques sur la repondant cellulaire, la libération de médiateurs solubles et / ou de l'engagement du mécanisme phagocytaire. Les cellules nécrotiques sont incluses dans toutes les expériences pour faire en sorte que les résultats sont spécifiques au mode de mort cellulaire, et non une réaction généralisée aux cellules mortes. Une approche prudente, comme il est recommandé dans ce protocole, est essentielle à notre compréhension de l'influence toujours croissante que les cellules qui meurent exercent sur leurs voisins en direct, à la fois la santé et de la maladie.
Nous fournissons ici un protocole permettant de caractériser les événements de signalisation intracellulaires induits dans les cellules viables suite à leur exposition à des cellules subissant une apoptose ou d'autres formes de mort cellulaire. Le protocole met l'accent sur les multiples mécanismes par lesquels l'exposition à des cellules apoptotiques peuvent moduler les voies de signalisation intracellulaire dans les cellules répondeuses viables. Ces mécanismes sont les suivants: l'interaction …
The authors have nothing to disclose.
This work was supported, in whole or in part, by institutional funds from Dr. José A. Arruda and the Section of Nephrology, University of Illinois at Chicago (to J. S. L.); and funding from the Department of Medicine of McGill University and the Research Institute of the McGill University Health Centre (to J. R.)
Cell culture materials | |||
DMEM, 1X with [4.5 g/L] glucose, L-glutamine & sodium-pyruvate | Mediatech (Manassas, VA) | 10-013-CV | |
HyClone Fetal Clone II, fetal bovine serum | GE Healthcare (Logan, UT) | SH30066.03 | add 10% (v/v) to the culture medium A |
Penicillin-Streptomycin-Glutamine, 100X | Life Technologies (Grand Island, NY) | 10378-016 | add 100 units/mL to the culture media A and B |
γ-Interferon, mouse recombinant, from Escherichia coli | Calbiochem, Millipore (Billerica, MA) | 407303 | add 10 units/mL to the culture medium A |
Falcon polystyrene tissue-culture treated dishes, non-pyrogenic | Corning (Durham, NC) | 353003 | sterile, 100 mm diameter |
Falcon polystyrene centrifuge tubes, conical bottom | Corning (Durham, NC) | 352095 | sterile, 15 mL |
Trypsin-EDTA, 0.05%, Gibco | Fisher (Waltham, MA) | 25300062 | sterile, 100 mL |
Name | Company | Catalog | Comments |
Chemicals and inhibitors | |||
Staurosporine, from Streptomyces sp. | Sigma (St. Louis, MO) | S4400 | use at [1 μg/mL] for 3 h to induce apoptosis |
Epidermal growth factor (EGF), [1 mg/ml] | Millipore (Billerica, MA) | EA140 | use at 50 nM to stimulate responder cells |
UltraPure, 0.5 M EDTA, pH 8.0 | Life Technologies (Grand Island, NY) | 15575-038 | use 5 mM to detach adherent cells |
Trypan blue solution, 0.4% | MP Biomedicals (Santa Ana, CA) | 91691049 | for dead cells staining |
Paraformaldehyde Solution, 4% in DPBS | Affymetrix (Santa Clara, CA) | 19943 | use 0.4% (v/v) in 1× DPBS for cell fixation |
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS), 1×, Gibco | Life Technologies (Grand Island, NY) | 14040133 | stock solution |
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS), Ca+2- and Mg+2-free, 1×, Gibco | Life Technologies (Grand Island, NY) | 14190367 | stock solution |
Cytochalasin D, 4 mM in dimethyl sulfoxide (DMSO), from Zygosporium mansonii | Sigma (St. Louis, MO) | C8273 | use at [4 μg/mL] to inhibit phagocytosis |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma (St. Louis, MO) | D2650 | solvent for cytochalasin D |
Name | Company | Catalog | Comments |
Cell lysis buffer ingredients | |||
Tris-buffered saline (TBS), 10×, pH 7.4 | BioRad (Hercules, CA) | 1706435 | for cell lysis buffer |
Sodium pyrophosphate | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | 221368 | 10 mM for cell lysis buffer |
Sodium deoxycholate | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | D6750 | 0.5% w/v for cell lysis buffer |
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | L3771 | 0.1% w/v for cell lysis buffer |
Glycerol | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | G5516 | 10% for cell lysis buffer |
Sodium fluoride | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | 450022 | 25 mM for cell lysis buffer |
Complete mini EDTA-free protease inhibitor cocktail tablet | Roche Diagnostics (Indianapolis, IN) | 4693159001 | for cell lysis buffer, 1 tablet per 10 mL of buffer |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | T8787 | 10% for cell lysis buffer |
Dithiothreitol (DTT) | MP Biomedicals (Santa Ana, CA) | 11DTT00005 | 1 mM for cell lysis buffer |
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) | MP Biomedicals (Santa Ana, CA) | 4800263 | 1 mM for cell lysis buffer |
Sodium orthovandate | MP Biomedicals (Santa Ana, CA) | 2159664 | 10 mM for cell lysis buffer |
Name | Company | Catalog | Comments |
Equipment | |||
Sorvall T6000B centrifuge | Du Pont (Wilmington, DE) | T6000B | |
Fisher Tissuemat, water bath | Fisher (Waltham, MA) | ||
Sonic Dismembrator (sonicator), model 100 | Fisher (Waltham, MA) | ||
Miscellaneous | |||
Cell counting chamber, Neubauer | Hawksley (Lancing, Sussex, UK) | AC2000 | |
Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit II | Millipore (Billerica, MA) | CBA059 | for PI and Annexin V staining to determine the stage of apoptosis |
Eppendorf microcntrifuge tubes, 1.5 ml | Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) | T9661 | |
Transwell permeable support, 0.4 μm polycarbonate membrane | Corning (Corning, NY) | 3413 | sterile, polystyrene, tissue culture treated |
Name | Company | Catalog | Comments |
Antibodies | |||
Phospho-glycogen synthase kinase-3α/β (GSK-3α/β) (Ser21/9), polyclonal antibody | Cell Signaling Technology | 9331 | rabbit polyclonal antibody |
Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) monoclonal antobody ( (14C10) ) | Cell Signaling Technology | 2118 | rabbit monoclonal antibody |