Summary

Identifiering av intracellulära signalerings händelser som framkallas i levande celler genom interaktion med angränsande celler genomgår apoptotisk celldöd

Published: December 27, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol for the determination of intracellular signaling events induced in viable cells by physical interaction with adjacent dead or dying cells. The protocol focuses on signaling events induced by receptor-mediated recognition of the dead cells, as opposed to their phagocytic uptake or release of soluble mediators.

Abstract

Celler som dör genom apoptos, även kallad reglerad celldöd, förvärva flera nya aktiviteter som gör det möjligt för dem att påverka funktionen av intilliggande levande celler. Vital aktiviteter, såsom överlevnad, proliferation, tillväxt och differentiering, är bland de många cellulära funktioner module av apoptotiska celler. Förmågan att känna igen och svara på apoptotiska celler tycks vara en universell egenskap hos alla celler, oavsett härstamning eller organ av origine. Emellertid, mångfalden och komplexiteten av svaret på apoptotiska celler mandat att stor försiktighet vidtas dissekera signalerings händelser och vägar som ansvarar för ett visst utfall. I synnerhet måste en särskilja bland de multipla mekanismer genom vilka apoptotiska celler kan påverka intracellulära signalsystem inom viabla responderceller, inklusive: receptormedierad erkännande av den apoptotiska cellen, frisättning av lösliga mediatorer av den apoptotiska cellen, och / eller ingrepp av phagocytic maskiner. Här ger vi ett protokoll för att identifiera intracellulära signaleringshändelser som induceras i livskraftiga svarsceller efter deras exponering för apoptotiska celler. En stor fördel med protokollet ligger i den uppmärksamhet det lönar sig att dissekering av den mekanism genom vilken apoptotiska celler modulerar signalering händelser inom svarande celler. Medan protokollet är specifik för en villkorligt odödlig mus njure proximala tubuli cellinje (BU.MPT celler), är det lätt att anpassa till cellinjer som är icke-epitelial ursprung och / eller härrör från andra källor än njuren organ. Användningen av döda celler som en stimulans introducerar flera unika faktorer som kan försvåra upptäckt av intracellulära signaleringshändelser. Dessa problem, liksom strategier för att minimera eller kringgå dem, diskuteras inom protokollet. Tillämpningen av detta protokoll ska hjälpa vår växande kunskap om det breda inflytande som döda eller döende celler utövar på sina levande grannar, både i hälsa och i disease.

Introduction

Apoptos, eller reglerad celldöd pt bidrar på ett väsentligt sätt till att upprätthålla och utveckla vävnader. Sett enklast, apoptos tillstånd åldern, skadad eller överskott celler som skall elimineras utan att skada omgivande vävnader 2,3. Bidraget från apoptos till vävnadshomeostas, är dock betydligt mer dynamisk och varierad. Celler som dör genom apoptos förvärva flera nya aktiviteter, både utsöndrade och cellassocierade, som gör det möjligt för dem att påverka funktionen av intilliggande levande celler 4-10. Tidigare studier fokuserade på förmågan hos apoptotiska celler för att undertrycka inflammation 11-16, men apoptotiska celler modulera också ett brett utbud av cellfunktioner, inklusive sådana viktiga aktiviteter som överlevnad 4,9,10, proliferation 4,9,10, differentiering 17, migration 18, och tillväxt 19. Dessutom är dessa effekter inte begränsade till professionella fagocyter, som makrofagers, men sträcker sig till praktiskt taget alla typer och härstamningar cell, inklusive traditionellt icke-fagocytiska celler, såsom epitel- och endotelceller 7,9,10,18-21.

Den specifika svar av intilliggande levande celler efter exponering för apoptotiska celler beror på flera faktorer som relaterar till både livskraftiga svarande celler och apoptotiska celler själva. Till exempel, även exponering för apoptotiska celler inhiberar proliferation av både murina makrofager och njur proximala tubulära epitelceller (PTECs), dessa två celltyper skiljer sig dramatiskt i deras överlevnad svar på apoptotiska celler 4,6,9,10. Apoptotiska celler främja överlevnaden av makrofager, men inducera apoptotisk död PTECs 4,6,9,10. Notably, kan svaret på apoptotiska celler skiljer sig även bland svarande celler av samma härstamning, beroende på den svarande cellens ursprungsorgan 10 (t ex njure PTECs kontra bröstepitelialcellerceller) eller aktiverings 22 (t.ex. neutrofiler). Omvänt kan apoptotiska celler framkalla olika svar i mycket samma cell beroende på naturen av den apoptotiska stimulans 10,23 eller stadiet av apoptos 10,14.

Med tanke på den diverseness och komplexiteten av svaret på apoptotiska celler måste stor försiktighet iakttas i dissekera signalerings händelser och vägar som ansvarar för ett visst utfall. Först måste svaren kräver direkt fysisk interaktion mellan livskraftiga och apoptotiska celler skiljas från dem som framkallas av lösliga mediatorer som frigörs eller genereras av apoptotiska cellen 3,6-10. Om fysisk interaktion krävs, så ska utföras en ytterligare differentiering. Signaleringshändelser kan bero på receptorförmedlad erkännande av den apoptotiska cellen, oberoende av efterföljande engulfment eller på fagocytisk upptagning, oberoende av den specifika receptor som binder den apoptotiska cellen 3-7,9,10,19. I det senare fallet är svaret inte är specifik för apoptotiska celler, och kan utlösas av någon fagocytiska material 4,6.

Betydelsen av dessa distinktioner kan återigen uppskattas av kontrasterande svaren från makrofager och njur PTECs. För båda celltyperna, exponering för apoptotiska celler förändrar aktiviteten av den pro-överlevnads kinas Akt. Modulering är beroende av fysisk interaktion, eftersom separation reagera och apoptotiska celler genom en 0,4 pm polykarbonatmembran avskaffar svaret 4,9,10,19. Emellertid är svaret hos PTECs receptormedierad och oberoende av fagocytos, medan svaret hos makrofager drivs av fagocytos 4,9,10,19. Denna slutsats förstärks av det faktum att exponering för latexpärlor, en neutral fagocytisk stimulans, har ingen effekt på Akt aktivitet i PTECs, men härmar effekten av apoptotiska celler i makrofager 4,9.

"> Även mindre väl studerade celler dör av nekros, eller oavsiktlig celldöd en, även modulera funktionen närliggande levande celler 3-10,19. Liksom apoptotiska celler, nekrotiska celler utövar sina effekter genom en mängd olika mekanismer, särskilt läckage av intracellulära innehåll genom deras brustna cellmembran 3,5,6,9,24. Många celler, inklusive PTECs och makrofager, har tydliga icke-konkurrerande receptorer för celler dör av nekros 5,9. engagemang av dessa receptorer inducerar signalering händelser som ofta motsatt de som induceras genom ingrepp av receptorerna för apoptotiska celler 4-10,19. till exempel i PTECs, nekrotiska celler ökar fosforylering av Akt, medan apoptotiska celler minskar fosforylering 9,10,19.

Här beskriver vi ett protokoll för att identifiera intracellulära signaleringshändelser som induceras i viabla njur PTECs genom receptormedierad igenkänning av intilliggande apoptotiska PTECs <sup> 9,10,19. Medan protokollet är specifik för en villkorligt odödlig PTEC cellinje kallas BU.MPT celler 9,10,19,25,26, är det lätt att anpassa till cellinjer som är icke-epitelial ursprung och / eller härrör från andra källor än organ njuren. Viktigt är att användningen av apoptotiska celler som en cell stimulus medför vissa inneboende experimentella svårigheter som inte förekommer med lösliga ligander. Den viktigaste av dessa är att apoptotiska celler måste tillsättas som en suspension snarare än som en lösning. Dessa svårigheter, liksom strategier för att minimera eller kringgå dem, diskuteras inom protokollet. Nästan alla av de tekniker som beskrivits i protokollet är enkla och standard för cellodling. Fördelen med detta protokoll ligger i sin uppmärksamhet till de många mekanismer genom vilka apoptotiska celler modulerar signaltransduktion inom svarande celler. Dessa mekanismer innefattar bindningen via bestämnings ytan eller överbryggande molekyler till specifika receptorer på rerande cell, frisättningen av lösliga mediatorer, och / eller ingreppet av den fagocytiska maskiner. Nekrotiska celler ingår i alla experiment för att säkerställa att resultaten är specifika för läget av celldöd, och inte en generaliserad reaktion på döda celler. En noggrann metod som rekommenderas i detta protokoll, är avgörande för vår förståelse av den ständigt expanderande inflytande som döende celler utövar på sina levande grannar i både hälsa och sjukdom.

Protocol

1. Förberedelser Obs: I detta protokoll, två eller flera cellinjer, eller primära cellkulturer, oberoende upprättats enligt särskilda villkor. Dessa preparat omfattar apoptotiska celler (protokoll 1), nekrotiska celler (protokoll 2), och friska svarsceller (Protokoll 3). Efter oberoende preparatet uppstår apoptotiska eller nekrotiska celler sattes till respondercellerna och den resulterande signaltransduktion övervakas (Protocols 4, 5 och 6). Förbered odlingsmedia och reag…

Representative Results

I figur 1, tillhandahåller vi ett schema som visar tids och kritiska stegen vid framställning av apoptotiska celler (protokoll 1) och nekrotiska celler (protokoll 2) och stimuleringen av svarsceller med suspensioner av apoptotiska och nekrotiska celler (protokoll 4). I figur 2, tillhandahåller vi representativa resultat som visar effekten av apoptotiska celler på fosforylering av de två i…

Discussion

Vi tillhandahåller här ett protokoll för karakterisering de intracellulära signaleringshändelser som induceras i viabla celler efter deras exponering för celler som genomgår apoptos, eller andra former av celldöd. Protokollet understryker de många mekanismer genom vilka exponering för apoptotiska celler kan modulera intracellulära signalvägar inom livskraftiga svararceller. Dessa mekanismer innefattar: interaktionen (via överbryggande molekyler eller determinanter ytan på de döda cellen eller dess skjul v…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported, in whole or in part, by institutional funds from Dr. José A. Arruda and the Section of Nephrology, University of Illinois at Chicago (to J. S. L.); and funding from the Department of Medicine of McGill University and the Research Institute of the McGill University Health Centre (to J. R.)

Materials

Cell culture materials
DMEM, 1X with [4.5 g/L] glucose, L-glutamine & sodium-pyruvate Mediatech (Manassas, VA) 10-013-CV
HyClone Fetal Clone II, fetal bovine serum GE Healthcare (Logan, UT) SH30066.03 add 10% (v/v)  to the culture medium A
Penicillin-Streptomycin-Glutamine, 100X Life Technologies (Grand Island, NY) 10378-016 add 100 units/mL to the culture media A and B
γ-Interferon, mouse recombinant, from Escherichia coli Calbiochem, Millipore (Billerica, MA) 407303 add 10 units/mL to the culture medium A
Falcon polystyrene tissue-culture treated dishes, non-pyrogenic Corning (Durham, NC) 353003 sterile, 100 mm diameter
Falcon polystyrene centrifuge tubes, conical bottom Corning (Durham, NC) 352095 sterile, 15 mL
Trypsin-EDTA, 0.05%, Gibco Fisher (Waltham, MA) 25300062 sterile, 100 mL
Name Company Catalog Comments
Chemicals and inhibitors
Staurosporine, from Streptomyces sp. Sigma (St. Louis, MO) S4400 use at [1 μg/mL] for 3 h to induce apoptosis
Epidermal growth factor (EGF), [1 mg/ml] Millipore (Billerica, MA) EA140 use at 50 nM to stimulate responder cells
UltraPure, 0.5 M EDTA, pH 8.0 Life Technologies (Grand Island, NY) 15575-038 use 5 mM to detach adherent cells
Trypan blue solution, 0.4% MP Biomedicals (Santa Ana, CA) 91691049 for dead cells staining
Paraformaldehyde Solution, 4% in DPBS Affymetrix (Santa Clara, CA) 19943 use 0.4% (v/v) in 1× DPBS for cell fixation
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS), 1×, Gibco Life Technologies (Grand Island, NY) 14040133 stock solution
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS), Ca+2- and Mg+2-free, 1×, Gibco Life Technologies (Grand Island, NY) 14190367 stock solution
Cytochalasin D, 4 mM in dimethyl sulfoxide (DMSO), from Zygosporium mansonii Sigma (St. Louis, MO) C8273 use at [4 μg/mL] to inhibit phagocytosis
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma (St. Louis, MO) D2650 solvent for cytochalasin D
Name Company Catalog Comments
Cell lysis buffer ingredients
Tris-buffered saline (TBS), 10×, pH 7.4 BioRad (Hercules, CA) 1706435 for cell lysis buffer
Sodium pyrophosphate Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) 221368 10 mM for cell lysis buffer
Sodium deoxycholate Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) D6750 0.5% w/v for cell lysis buffer
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) L3771  0.1% w/v for cell lysis buffer
Glycerol Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) G5516 10% for cell lysis buffer
Sodium fluoride Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) 450022 25 mM for cell lysis buffer
Complete mini EDTA-free protease inhibitor cocktail tablet Roche Diagnostics (Indianapolis, IN) 4693159001 for cell lysis buffer, 1 tablet per 10 mL of buffer
Triton X-100 Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) T8787 10% for cell lysis buffer
Dithiothreitol (DTT) MP Biomedicals (Santa Ana, CA) 11DTT00005 1 mM for cell lysis buffer
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) MP Biomedicals (Santa Ana, CA) 4800263 1 mM for cell lysis buffer
Sodium orthovandate MP Biomedicals (Santa Ana, CA) 2159664 10 mM for cell lysis buffer
Name Company Catalog Comments
Equipment
Sorvall T6000B centrifuge Du Pont (Wilmington, DE) T6000B
Fisher Tissuemat, water bath Fisher (Waltham, MA)
Sonic Dismembrator (sonicator), model 100 Fisher (Waltham, MA)
Miscellaneous
Cell counting chamber, Neubauer Hawksley (Lancing, Sussex, UK) AC2000
Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit II Millipore (Billerica, MA) CBA059 for PI and Annexin V staining to determine the stage of apoptosis
Eppendorf microcntrifuge tubes, 1.5 ml Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) T9661
Transwell permeable support, 0.4 μm polycarbonate membrane Corning (Corning, NY) 3413 sterile, polystyrene, tissue culture treated
Name Company Catalog Comments
Antibodies
Phospho-glycogen synthase kinase-3α/β (GSK-3α/β) (Ser21/9), polyclonal antibody Cell Signaling Technology 9331 rabbit polyclonal antibody
Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) monoclonal antobody ( (14C10) ) Cell Signaling Technology 2118 rabbit monoclonal antibody

Referências

  1. Galluzzi, L., et al. Essential versus accessory aspects of cell death: recommendations of the NCCD 2015. Cell Death Differ. 22, 58-73 (2015).
  2. Wallach, D., Kang, T. -. B., Kovalenko, A. Concepts of tissue injury and cell death in inflammation: a historical perspective. Nature Rev. Immunol. 14, 51-59 (2014).
  3. Hochreiter-Hufford, A., Ravichandran, K. S. Clearing the dead: Apoptotic cell sensing, recognition, engulfment, and digestion. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 5, a008748 (2013).
  4. Reddy, S. M., et al. Phagocytosis of apoptotic cells by macrophages induces novel signaling events leading to cytokine-independent survival and inhibition of proliferation: activation of Akt and inhibition of extracellular signal-regulated kinases 1 and 2. J. Immunol. 169, 702-713 (2002).
  5. Cvetanovic, M., Ucker, D. S. Innate immune discrimination of apoptotic cells: repression of proinflammatory macrophage transcription is coupled directly to specific recognition. J. Immunol. 172, 880-889 (2004).
  6. Patel, V. A., et al. Apoptotic cells, at all stages of the death process, trigger characteristic signaling events that are divergent from and dominant over those triggered by necrotic cells: implications for the delayed clearance model of autoimmunity. J. Biol. Chem. 281, 4663-4670 (2006).
  7. Cvetanovic, M., et al. Specific recognition of apoptotic cells reveals a ubiquitous and unconventional innate immunity. J. Biol. Chem. 281, 20055-20067 (2006).
  8. Birge, R. B., Ucker, D. S. Innate apoptotic immunity: the calming touch of death. Cell Death Differ. 15, 1096-1102 (2008).
  9. Patel, V. A., et al. Recognition of apoptotic cells by epithelial cells: conserved versus tissue-specific signaling responses. J. Biol. Chem. 285, 1829-1840 (2010).
  10. Patel, V. A., et al. Recognition-dependent signaling events in response to apoptotic targets inhibit epithelial cell viability by multiple mechanisms: implications for non-immune tissue homeostasis. J. Biol. Chem. 287, 13761-13777 (2012).
  11. Voll, R. E., Herrmann, M., Roth, E. A., Stach, C., Kalden, J. R., Girkontaite, I. Immunosuppressive effects of apoptotic cells. Nature. 390, 350-351 (1997).
  12. Fadok, V. A., Bratton, D. L., Konowal, A., Freed, P. W., Westcott, J. Y., Henson, P. M. Macrophages that have ingested apoptotic cells in vitro inhibit proinflammatory cytokine production through autocrine/ paracrine mechanisms involving TGF-β, PGE2, and PAF. J. Clin. Investig. 101, 890-898 (1998).
  13. Lucas, M., Stuart, L. M., Savill, J., Lacy-Hulbert, A. Apoptotic cells and innate immune stimuli combine to regulate macrophage cytokine secretion. J. Immunol. 171, 2610-2615 (2003).
  14. Ariel, A., et al. Apoptotic neutrophils and T cells sequester chemokines during immune response resolution through modulation of CCR5 expression. Nature Immunol. 7 (11), 1209-1216 (2006).
  15. Schwab, J. M., Chiang, N., Arita, M., Serhan, C. N. Resolvin E1 and protectin D1 activate inflammation-resolution programmes. Nature. 447, 869-874 (2007).
  16. Rothlin, C. V., Ghosh, S., Zuniga, E. I., Oldstone, M. B. A., Lemke, G. TAM receptors are pleiotropic inhibitors of the innate immune response. Cell. 131, 1124-1136 (2007).
  17. Li, F., et al. Apoptotic cells can activate the “phoenix rising” pathway to promote wound healing and tissue regeneration. Sci. Signal. 3, ra13 (2010).
  18. Peter, C., Wesselborg, S., Hermann, M., Lauber, K. Dangerous attraction: phagocyte recruitment and danger signals of apoptotic and necrotic cells. Apoptosis. 15 (2010), 1007-1028 (2010).
  19. Patel, V. A., et al. Apoptotic cells activate AMPK and inhibit epithelial cell growth without change in intracellular energy stores. J. Biol. Chem. 290, 22352-22369 (2015).
  20. Hess, K. L., Tudor, K. -. S. R. S., Johnson, J. D., Osati-Ashtiani, F., Askew, D. S. Cook-Mills J.M. Human and murine high endothelial venule cells phagocytose apoptotic leukocytes. Exp. Cell Res. 236, 404-411 (1997).
  21. Zernecke, A., et al. Delivery of microRNA-126 by apoptotic bodies induces CXCL12-dependent vascular protection. Sci. Signal. 2, ra51 (2009).
  22. Esmann, L., et al. Phagocytosis of apoptotic cells by neutrophil granulocytes: diminished proinflammatory neutrophil functions in the presence of apoptotic cells. J. Immunol. 184, 391-400 (2010).
  23. Obeid, M., et al. Calreticulin exposure dictates the immunogenicity of cancer cell death. Nature Med. 13, 54-61 (2007).
  24. Peter, C., Wesselborg, S., Hermann, M., Lauber, K. Dangerous attraction: phagocyte recruitment and danger signals of apoptotic and necrotic cells. Apoptosis. 15, 1007-1028 (2010).
  25. Sinha, D., et al. Lithium activates the Wnt and phosphatidylinositol 3-kinase Akt signaling pathways to promote cell survival in the absence of soluble survival factors. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 288, F703-F713 (2005).
  26. Jat, P. S., et al. Direct derivation of conditionally immortal cell lines from an H-2Kb-tsA58 transgenic mouse. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 5096-5100 (1991).
  27. Wakasugi, K., Schimmel, P. Two distinct cytokines released from a human aminoacyl-tRNA-synthetase. Science. 284, 147-151 (1999).
check_url/pt/54980?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Vujicic, S., Feng, L., Antoni, A., Rauch, J., Levine, J. S. Identification of Intracellular Signaling Events Induced in Viable Cells by Interaction with Neighboring Cells Undergoing Apoptotic Cell Death. J. Vis. Exp. (118), e54980, doi:10.3791/54980 (2016).

View Video