Summary

Stillasstøttet transplantasjon av øyer i epididymisk fettpute av diabetiske mus

Published: July 23, 2017
doi:

Summary

Denne protokollen demonstrerer isolering av murin øl og såing på en decellularisert stillas. Stillasstøttede øyer ble transplantert i den epididymale fettpute av streptozotocin (STZ) -inducerte diabetiske mus. Islets overlevde på transplantasjonsstedet og reverserte den hyperglykemiske tilstanden.

Abstract

Isletransplantasjon har blitt klinisk bevist å være effektiv ved behandling av type 1 diabetes. Imidlertid kan den nåværende intrahepatiske transplantasjonsstrategien medføre akutte helblodsreaksjoner og resultere i dårlig øyelegging. Her rapporterer vi en robust protokoll for transplantasjon av øyer på det ekstrahepatiske transplantasjonsstedet – den epididymale fettputen (EFP) – i en diabetisk musemodell. En protokoll for isolering og rensing av øyer med høye utbytter fra C57BL / 6J-mus er beskrevet, så vel som en transplantasjonsmetode utført ved seeding-øyer på en decellularisert stillas (DCS) og implanterer dem på EFP-stedet i syngene C57BL / 6J mus-gjengede diabetiker Av streptozotocin. DCS-transplantatet som inneholdt 500 øyer reverserte den hyperglykemiske tilstanden innen 10 dager, mens de frie øyene uten DCS krevde minst 30 dager. Normoglykemi ble opprettholdt i opptil 3 måneder til graftet ble eksplantert. I konklusjonen økte DCS engraftment of islets into tHan ekstrahepatiske nettsted av EFP, som lett kunne hentes, og kan gi en reproduserbar og nyttig plattform for å undersøke stillasmaterialene, samt andre transplantasjonsparametere som kreves for en vellykket holning.

Introduction

Type 1 diabetes mellitus (T1D) er en autoimmun endokrin lidelse der øketsceller ablateres av immunsystemet, noe som gjør at pasientene er avhengige av injeksjon av eksogent insulin for hele livet. Edmonton-protokollen representerer en milepæl i kliniske studier av øletransplantasjon; Øyer ble infundert gjennom portalvenen og transplantert på det intrahepatiske område 1 . Imidlertid hindrer to hovedhinder – utilstrekkelige kilder til donorøyler og fattig øyekraft – den store suksessen til øletransplantasjonen 2 . Vanligvis må øyer samles fra tre cadaveric donorer for å reversere den hyperglykemiske tilstanden til en pasient; Dette skyldes det lave utbyttet av isolasjonsprosedyrer og øktapet etter transplantasjon. Spesielt, selv om post-transplantasjonsøyene ble badet i oksygenrikt blod, fremkalte direkte kontakt med blod ofte det øyeblikkelige blodmedierte inflammaTory reaksjon (IBMIR), som kan forårsake akutt tap av øyene. På lang sikt er det antatt at gradvis tap av øyer hos pasienter sto for nedgang i diabetesomslag i de kliniske gruppene, som kunne nå 90% i det første året og falt til 30% og 10% med 2 og 5 År etter transplantasjon, henholdsvis 3 .

Isletransplantasjon på ekstrahepatiske steder har vært en attraktiv strategi for å redusere direkte kontakt med øyer med blod mens de begrenser transplantasjonene til mer definerbare steder sammenlignet med intrahepatisk infusjon. Studier har blitt utført i nyrekapsel, øye, muskler, fettputer og subkutane rom de siste årene, og viser at øyer på disse områdene er i stand til å overleve og fungere for å gjenopprette normoglykemi 4 . I tillegg er øyene på disse områdene gjenvinnbare, noe som gjør det mulig for biopsi eller til og med for ytterligere utskiftingsprosedyrer. Ekstrahepatisk sDet viser derfor stort potensial for klinisk transplantasjon 5 .

Biomaterialbaserte stillaser har blitt intensivt undersøkt for celletransplantasjon og vevsteknikk. Tredimensjonale (3D) stillas inneholder vanligvis porøse strukturer og kan tjene som mobilmaler for å generere romlig struktur / organisering av celler eller som reservoarer for å gi kontrollert frigivelse av bioaktive signaler. Stillaser har også blitt fremstilt fra polymere materialer, slik som poly (glykolid-L-laktid) 6 , poly (dimetylsiloksan) 7 og termoplastisk poly (uretan) 8 , til transplantasjonsøyer i EFP. Sammenlignet med direkte transplantasjon av øyer ble bruken av stillas funnet å redusere øktapet ved å forhindre lekkasje av øyer i det intraperitoneale hulrom 9 , 10 , som gir mekanisk beskyttelse og moduLating den lokale inflammatoriske reaksjonen. Stillasene kan således bli utviklet for å fremme islet-inngrep på transplantasjonsstedene 7 .

I denne studien har vi tenkt å demonstrere et paradigme for øktransplantasjon i EFP, utført i musmodeller ved hjelp av en DCS. Stillaser avledet fra ekstracellulære matriser har tiltrukket stor interesse de siste årene på grunn av den overlegne biokompatibiliteten og mer naturlige porøse strukturer sammenlignet med syntetiske produkter. Her beskriver vi en robust isolasjonsprotokoll for å oppnå pankreasøyler med høye utbytter fra C57BL / 6J-mus. DCSer behandlet fra bovin perikardiet ble deretter sådd med øyer, og transplantatene ble transplantert til EFP i syngene diabetiske modeller. Normoglykemi hos mus ble oppnådd innen 10 dager og ble opprettholdt i opptil 100 dager, til fjerning av transplantatene.

Protocol

Alle eksperimenter ble godkjent av Peking University Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC, IACUC nr. COE-LuoY-1). 1. Islet Isolation Fremstilling av reagenser og utstyr. Rekonstituer kollagenase P-pulver (2 U / mg) i HBSS for å lage en 5 mg / ml løsning og filtrer den gjennom et 0,22 μm filter for å fjerne bakteriene. Tilbered 0,6 ml alikvotoppløsninger av kollagenase P i 15 ml koniske rør og lagre ved -20 ° C. MERK: Under bruk…

Representative Results

Vår klemmetode, utført ved hjelp av en mikroskopisk hemostatisk klemme, er rett og tidsbesparende sammenlignet med suturligasjonsteknikken. Det tok omtrent 4 timer å isolere og rense ca. 1200 øyer fra 6 mus. De ferske isolerte øyene hadde typisk en grov periferi under et optisk mikroskop ( figur 3A ). Når øyene ble gjenopprettet fra isolasjonsprosessen, så de seg lyse og tette og kjøpte en jevn overflate. Imidlertid kan den stressende isolasjonen fr…

Discussion

Pancreas perfusjon og fordøyelsestid er to viktige parametere som påvirker øktutbytte og kvalitet. Moskalewski rapporterte først bruken av en rå kollagenaseblanding for å fordøye hakket marsvinpankreas 11 . Lacy et al. Rapporterte injeksjonen av enzymer i kanalsystemet for å perfeksere bukspyttkjertelen, noe som økte økningen 12 i stor grad . Den duale perfusjonen av enzym muliggjør maksimal eksponering av bukspyttkjertelenes overflateareal til enzymet,…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke Wei Zhang fra Guanhao Biotech for å gi de decellulariserte stillasene. Vi takker Xiao-hong Peng for de nyttige diskusjonene. Denne undersøkelsen ble støttet økonomisk av National Natural Science Foundation of China (Prosjekt nr.31322021).

Materials

Dissecting scissor Ningbo Medical
Forceps Ningbo Medical
0.5 mm diameter wire mesh Ningbo Medical
70 μm cell strainer Falcon 352350
Artery hemostatic clamp Ningbo Medical
Microscopic hemostatic clamp Ningbo Medical
Hemostatic forceps Ningbo Medical
Absorbable 6-0 PGLA sutures  JINHUAN With needle
Wound clip Ningbo Medical
Cotton swab Ningbo Medical
Gauze Ningbo Medical
Sterile drapes Ningbo Medical
10mL syringe JINGHUAN
1 mL syringe JINGHUAN
27G intravenous needle JINGHUAN 0.45×15 RWSB
1.5 mL Eppendorf tube Axygen
15mL conical tube Corning 430791
50mL conical tube Corning 430829
35mm Non-treated  Peri-dishes Corning 430588
Transwell Corning 3422
0.22 μm filter Pall PN4612
10 mL serological pipet Corning 4488
Pipet filler S1 Thermo Scientific 9501
Pipette (2-20μL) Axygen AP-20 AXYPETTM
Dissecting microscope Olympus SZ61
Centrifuge Eppendorf 5810R
Hank’s balanced salt solution  Gibco C14175500CP
Collagenase P Roche COLLP-RO
Histopaque 1077 Sigma 10771
RPMI 1640 Gibco 11879-20
FBS Gibco 16000-044
D-glucose Gibco A24940-01
Glucose meter Roche ACCU-CHEK
Penicillin-streptomycin Gibco 15140-122
Streptozotocin Sigma V900890 VetecTM
Chloral hydrate J&K C0073
Sodium citrate Sigma 71497
Citric acid Sigma C2404
Iodophors Ningbo Medical
C57BL/6J, 10-12 weeks old VitalRiver Beijing, China
Decellularized scaffold Guanhao Biotec 131102 Guangzhou, China

Referências

  1. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Shapiro, A. M. J., et al. International Trial of the Edmonton Protocol for Islet Transplantation. N Engl J Med. 355, 1318-1330 (2006).
  3. Ryan, E. A., et al. Five-year follow-up after clinical islet transplantation. Diabetes. 54, 2060-2069 (2005).
  4. Merani, S., Toso, C., Emamaullee, J., Shapiro, A. M. Optimal implantation site for pancreatic islet transplantation. Br J Surg. 95, 1449-1461 (2008).
  5. Schmidt, C. Pancreatic islets find a new transplant home in the omentum. Nat Biotechnol. 35 (1), (2017).
  6. Dufour, J. M., et al. Development of an ectopic site for islet transplantation, using biodegradable scaffolds. Tissue Eng. 11, 1323-1331 (2005).
  7. Weaver, J. D., et al. Controlled Release of Dexamethasone from Organosilicone Constructs for Local Modulation of Inflammation in Islet Transplantation. Tissue Eng Part A. 21, 2250-2261 (2015).
  8. Wang, K., et al. From Micro to Macro: The Hierarchical Design in a Micropatterned Scaffold for Cell Assembling and Transplantation. Adv Mater. 29, (2017).
  9. Blomeier, H., et al. Polymer Scaffolds as Synthetic Microenvironments for Extrahepatic Islet Transplantation. Transplantation. 82, 452-459 (2006).
  10. Gibly, R. F., et al. Extrahepatic islet transplantation with microporous polymer scaffolds in syngeneic mouse and allogeneic porcine models. Biomaterials. 32, 9677-9684 (2011).
  11. Moskalewski, S. Isolation and Culture of the Islets of Langerhans of the Guinea Pig. Gen Comp Endocrinol. 5, 342-353 (1965).
  12. Lacy, P. E., Kostianovsky, M. Method for the isolation of intact islets of Langerhans from the rat pancreas. Diabetes. 16, 35-39 (1967).
  13. Zmuda, E. J., Powell, C. A., Hai, T. A Method for Murine Islet Isolation and Subcapsular Kidney Transplantation. J Vis Exp. (50), (2011).
  14. Li, D. S., Yuan, Y. H., Tu, H. J., Liang, Q. L., Dai, L. J. A protocol for islet isolation from mouse pancreas. Nat Protoc. 4, 1649-1652 (2009).
  15. Stull, N. D., Breite, A., McCarthy, R., Tersey, S. A., Mirmira, R. G. Mouse Islet of Langerhans Isolation using a Combination of Purified Collagenase and Neutral Protease. J Vis Exp. (67), (2012).
  16. Sakata, N., Yoshimatsu, G., Tsuchiya, H., Egawa, S., Unno, M. Animal models of diabetes mellitus for islet transplantation. Exp Diabetes Res. , 256707 (2012).
  17. Schmidt, C. Pancreatic islets find a new transplant home in the omentum. Nat Biotech. 35, 8-8 (2017).
  18. Londono, R., Badylak, S. F. Biologic scaffolds for regenerative medicine: mechanisms of in vivo remodeling. Ann Biomed Eng. 43, 577-592 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Wang, K., Wang, X., Han, C., Chen, L., Luo, Y. Scaffold-supported Transplantation of Islets in the Epididymal Fat Pad of Diabetic Mice. J. Vis. Exp. (125), e54995, doi:10.3791/54995 (2017).

View Video