Summary

Personlig pinner for Microinjections i gnager hjernen

Published: January 24, 2018
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokoll for microinjection i gnager hjernen som bruker kvarts nåler. Nålene ikke produsere synlig vevsskade og sikre pålitelige leveranser selv i dyp regioner. Videre de kan tilpasses behov av personlig design og kan brukes på nytt.

Abstract

Microinjections har vært brukt i lang tid for levering av narkotika eller giftstoffer i bestemte hjernen områder og, mer nylig de har blitt brukt til å levere genet eller cellen terapi produkter. Dessverre dagens microinjection teknikker bruke stål eller glass nåler som er suboptimal for flere grunner: spesielt stål nåler kan skade vev og glass nåler kan bøye når senket dypt inn i hjernen, mangler målregion. I denne artikkelen beskriver vi en protokoll for å klargjøre og bruke quartz nåler som kombinerer en rekke nyttige funksjoner. Nålene produserer ikke synlig vevsskade, og å være veldig stive, sikre pålitelige leveranser i ønsket hjernen regionen selv når bruker dyp koordinater. Videre er det mulig å tilpasse utformingen av nålen ved å lage flere hull av ønsket diameter. Flere hull lette injeksjon av store mengder løsning i et større område, mens store hull lette injeksjon av celler. I tillegg kan nålene kvarts rengjøres og brukes på nytt, slik at prosedyren blir kostnadseffektiv.

Introduction

Microinjections har blitt brukt i lang tid for levering av farmakologisk aktive forbindelser for å modulere neuronal aktivitet i bestemte hjernen områder. Dessuten, har de blitt brukt til å injisere giftstoffer nær bestemt neuronal befolkninger, å etterligne nevrodegenerative hendelser karakteristisk for visse sykdommer, for eksempel 6-hydroxy-dopamin i nigrostriatal dopamin systemet å etterligne Parkinsons sykdom 1 , 2 eller immunotoxin 192 IgG saporin til lesjon cholinergic system3. Nylig har microinjection prosedyrer blitt brukt til å levere viral vektorer eller celler grafts for genet eller cellen terapi eksperimentell hjernen lidelser4,5.

Klassisk typen nåler i disse studiene er laget av rustfritt stål. Selv om enkel og praktisk å bruke, stål nåler har en rekke problemer6: de er relativt stor og kan skade vev, lekkasje av blod – hjerne barrieren og aktivering av astrocyttene; Videre kan de produserer prøvetaking av hjernevev som kommer inn nålen oppretter et hinder eller selv helt unngå flyten av ønsket løsningen. Flere nylig, glass nåler forberedt adhoc fra kapillærene er innført i bruk7,8. Dette gir betydelige vev skade eller astrocytter aktivisering, men er relativt fleksible og kan bøye når introdusert i dype strukturer, redusere nøyaktigheten av lokalisering (personlige observasjoner).

Det er derfor behov for å redusere så mye som mulig skade (særlig når utføre eksperimenter for å helbrede skaden) samtidig øke nøyaktigheten og reproduserbarhet (dvs., sikre at alle løsning leveres og sikre riktig lokalisering). Dessuten ville det være ønskelig å bruke ulike nålen design for å sikre optimal fordeling av injisert løsningen i hjernen områder med varierende geometri. I denne artikkelen beskriver vi en protokoll for å klargjøre og bruke quartz nåler for microinjections i gnager hjernen. Det høyt smeltepunktet, kvarts kapillærene ikke kan trekkes på en vanlig avtrekker og derfor ikke har vært brukt tidligere for å generere nåler. Kvarts, men tilbyr noen viktige fordeler over glass, spesielt høy stivhet og bryte motstand9. På grunn av deres stivhet, er kvarts nåler ideell for injeksjoner i ventrale hjernen regioner. På grunn av deres høy motstand mot brudd kan de modelleres for å inkludere flere hull, skaffe design som kan bli mest effektivt selv når målretting hjernen med komplekse geometrier10.

Protocol

Alle eksperimentelle protokoller ble godkjent av universitetet av Ferrara etiske komiteen for dyr eksperimentering og italiensk Helsedepartementet. ANKOMME (dyr forskning: rapportering i Vivo eksperimenter11) retningslinjer er fulgt. 1. forberedelse av kvarts nåler Rengjøres og steriliseres kvarts kapillærene (se Tabell for materiale) ved å plassere dem for 5 min med destillert vann, 5 min i etanol 99% og 5 minutter i diethyl-Eter. <…

Representative Results

Vi sammenlignet skade forårsaket av direkte microinjection i rotte dorsal hippocampus og striatum bruker en kvarts nål (60 µM ytre diameter tips, en 20 µM diameter siden hull, type C, figur 1) sammenlignet med to classic, 26 G sløv slutten og 30 G skråkant kanten rustfritt stål nåler. Til dette målet, vi injisert 2 µL av aCSF til høyre og venstre dorsal hippocampus og striatum med henholdsvis av kvarts og stål nål og, 48 timer etter injeksjon, vi…

Discussion

Teknikken er beskrevet i denne artikkelen oppfyller behovene i innføring for å optimalisere microinjections som utføres for ulike formål12. Nålene beskrevet her redusere skadene til et minimum, i hovedsak ikke-detectable nivå; avvik med glass nåler (som er utsatt for bøye), kvarts nåler er stive og sikre en pålitelig rammet av ønsket hjernen regionen i dyp koordinater. Videre sikrer siden hullet levering av løsningen selv om tips hullet blir okkludert under innsetting …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet har blitt støttet av et stipend fra det europeiske fellesskap [FP7-folk-2011-IAPP prosjekt 285827 (EPIXCHANGE)].

Materials

Quartz capillaries Sutter Instruments, Novato, CA USA Q100-50-10 Without filament
Puller Sutter P2000
Micropipette storage jar World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USA E210
Laser microdissector Leica Microsystems, Wetzlar, Germany LMD6500
Hamilton syringe Hamilton ILS Innovative Labor Systeme GmbH, StŸtzerbach, Germany 19138-U
Microinfusion pump Univentor, Zejtun, Malta Model 864
Manual microinjection pump kit WPI Item#: MMP-KIT Kit allowing for micropipettes to be securely mounted to the stereotactic frame
Precision Drill Proxxon 28510 MicroMot 50/E Ball bearing drive shaft with variable speed
Artficial Cerebral Spinal Fluid Tocris 3525
Needles 26 G Blunt and 30 G Bevel Hamilton 26 G Blunt: 19138-U
30 G Bevel: 20757
Microtome Leica, Germany LEICA RM212RT

Referências

  1. Kirik, D., Rosenblad, C., Björklund, A. Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastriatal 6-hydroxydopamine in the rat. Exp Neurol. 152 (2), 259-277 (1998).
  2. Paolone, G., Brugnoli, A., Arcuri, A., Mercatelli, D., Morari, M. Eltoprazine prevents levodopa-induced dyskinesias by reducing striatal glutamate and direct pathway activity. Mov Disord. 30 (13), 1728-1738 (2015).
  3. Paolone, G., Lee, T. M., Sarter, M. Time to pay attention: attentional performance time-stamped prefrontal cholinergic activation, diurnality, and performance. J Neurosci. 32 (35), 12115-12128 (2012).
  4. Shoichet, M. S., Winn, S. R. Cell delivery to the central nervous system. Adv Drug Deliv Rev. 42, 81-102 (2000).
  5. Simonato, M., et al. Progress in gene therapy for neurological disorders. Nature RevNeurol. 9, 277-291 (2013).
  6. Björklund, H., Olson, L., Hahl, D., Schwarcz, R. Short-and Long-Term Consequences of Intracranial Injections of the Excitotoxin, Quinolinic Acid, as Evidenced by GFA Immunohistochemistry of Astrocytes. Brain Res. 317, 267-277 (1986).
  7. Paradiso, B., et al. Localized delivery of fibroblast growth factor-2 and brain-derived neurotrophic factor reduces spontaneous seizures in an epilepsy model. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (17), 7191-7196 (2009).
  8. Falcicchia, C., et al. Silencing Status Epilepticus-Induced BDNF Expression with Herpes Simplex Virus Type-1 Based Amplicon Vectors. PLoS One. 11 (3), 1-17 (2016).
  9. Munoz, J. L., Coles, J. A. Quartz micropipettes for intracellular voltage microelectrodes and ion-selective microelectrodes. J Neurosci Meth. 22 (1), 57-64 (1987).
  10. Kilkenny, C., Browne, W., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Animal research: reporting in vivo experiments: the ARRIVE guidelines. J Cereb Blood Flow Metab. 31, 991-993 (2011).
  11. Torres, E. M., Trigano, M., Dunnett, S. B. Translation of cell therapies to the clinic: characteristics of cell suspensions in large-diameter injection cannulae. Cell Transplant. 24, 737-749 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Paolone, G., Falcicchia, C., Verlengia, G., Barbieri, M., Binaschi, A., Paliotto, F., Paradiso, B., Soukupova, M., Zucchini, S., Simonato, M. Personalized Needles for Microinjections in the Rodent Brain. J. Vis. Exp. (131), e55751, doi:10.3791/55751 (2018).

View Video