Summary

ShRNAs combinados pantalla para reactivación de MeCP2 en el cromosoma de X inactivo

Published: March 02, 2018
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Summary

Divulgamos una pequeña horquilla RNA (shRNA) y el siguiente protocolo basado en la secuencia de generación para la identificación de reguladores de la inactivación del cromosoma x en una línea celular murina con luciferasa de luciérnaga y genes de resistencia a Higromicina fusionado a la metil CpG Unión proteína 2 ( MeCP2) gen en el cromosoma X inactivo.

Abstract

Avance genéticos pantallas usando genes del reportero insertados en la heterocromatina se han utilizado para investigar los mecanismos de control epigenético en organismos modelo. Tecnologías incluyendo horquilla corta RNAs (shRNAs) y agrupadas regularmente otro corto palindrómico repeticiones (CRISPR) han permitido que tales pantallas en células de mamíferos diploides. Aquí describimos una pantalla shRNA a gran escala de los reguladores de la inactivación del X-cromosoma (XCI), utilizando una línea celular murina con luciferasa de luciérnaga y genes de resistencia a Higromicina golpeó en el c-término de la proteína de unión a CpG de metilo 2 (MeCP2) gene en el cromosoma x inactivo (Xi). Reactivación de la construcción en la línea celular de reportero confiere ventaja de supervivencia en selección de higromicina B, lo que nos permite una biblioteca grande de shRNA y identificar reguladores que reactivaron el reportero midiendo su selección posterior enriquecimiento utilizando secuenciación de próxima generación. Las horquillas enriquecidas entonces fueron validadas individualmente por prueba de su capacidad para activar el reportero de luciferasa en Xi.

Introduction

Una las formas más comunes de deficiencia mental hereditaria en las mujeres, el síndrome de Rett, es causada por mutaciones heterozigóticas en MeCP2, un gen del cromosoma x que codifica una proteína esencial para la función neuronal normal1. Un enfoque potencial para el tratamiento de este trastorno sería la reactivación del alelo tipo salvaje de MeCP2 en la Xi, como restauración de expresión MeCP2 fue demostrado revertir déficits neurológicos en un modelo de ratón de esta enfermedad1, 2 , 4. sin embargo, silenciamiento epigenético de uno de los dos cromosomas en las células femeninas de X se mantiene bien durante toda la vida de un organismo3,4, y sólida reactivación de un gen Xi probablemente requeriría una mayor interrupción en múltiples vías de regulación epigenéticas.

Para identificar los factores necesarios para el mantenimiento del silenciamiento de MeCP2 , primero desarrollamos un modelo de ratón transgénico con una fusión de genes de resistencia MeCP2– luciferasa – Higromicina (MeCP2-LUC-HR) en uno de los dos cromosomas X (X MeCP2-LUC-HR/XMeCP2)5. Aunque el MeCP2 expresada desde la construcción de la fusión demostró para ser inestable y dio lugar a una pérdida de función, fenotípicamente mímico eliminación de MeCP2 en varones hemizygous (X /YMeCP2-LUC-HR), la expresión de los genes del reportero era fácilmente perceptible en un patrón consistente con la expresión endógena de MeCP25. A continuación genera clones del fibroblasto inmortalizado con el constructo en el cromosoma x inactivo o activo y confirmó que el ex expresó tipo MeCP2 y no la construcción de reportero; el inverso era verdad para estos últimos. Cuando se expone a un ADN desmetilantes agente conocido derogar silenciamiento génico, 5-azacitidina (5-AZA), las células con el reportero de la Xi (“células de reportero”) ganaron la actividad en un ensayo de bioluminiscencia, que indica que la construcción podría ser reactivado y por lo tanto utilizado para la investigación genética.

A continuación desarrollamos una pantalla genética de alto rendimiento para los reguladores del silenciamiento de MeCP2 . La línea celular de reportero primero fue infectada con una biblioteca retroviral que contiene > 60.000 diferentes shRNAs dirigidos a > 25.000 genes en el genoma de ratón5,6y después sometida a higromicina B selección. Se comparó la frecuencia de horquilla en pre- y post selección muestras utilizando la siguiente secuencia de generación, como reportero de reactivación confiere ventaja del crecimiento en la selección de higromicina B y dio lugar a enriquecimiento de horquillas responsables. Usando este acercamiento, identificado 30 genes implicados en MeCP2 silenciamiento y posteriormente confirmó los resultados de medir su actividad de luciferasa y transducción de las células de reportero con reguladores individuales.

Protocol

Todos los pasos que involucran animales se llevaron a cabo utilizando protocolos de actuación aprobados por el Fred Hutchinson cáncer Research Center institucional Animal cuidado y el Comité uso (IACUC). No reactivos utilizados aquí conocen a riesgos significativos para la salud humana a excepción de la 5-azacitidina (5-AZA). 1. generar una línea de celular de reportero con MeCP2- LUC-HR transgen en el Xi Preparación de fibroblastos de ratón tendón de una h…

Representative Results

Fibroblastos de ratón del tendón se cosecharon de descrita X /XMeCP2-LUC-HRratón hembra deMeCP2 , inmortalizado por transducción retroviral de oncogenes E6 y E7 de HPV-16 virus7, clonado usando dilución limitante y probados para actividad de luciferasa y expresión del salvaje-tipo proteína MeCP2 (figura 1A y 1B). Actividad de luciferasa fue robusto si el reportero estaba en Xa e imperceptibles si en Xi; la expresión nativa de MeCP2 exhibieron un…

Discussion

En nuestro estudio reciente6, hemos generado una línea celular murina con luciferasa y genes de resistencia a Higromicina fusionado a MeCP2 en el Xi y transduced con una biblioteca de > 60.000 shRNAs dirigidos a > 25.000 genes. Se encontraron 30 genes cuya ventaja en la supervivencia conferida precipitación en higromicina B selección, sugiriendo su papel en el control de MeCP2 y silenciamiento del cromosoma x. Estos resultados fueron validados por transducción de la línea ce…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Ross Dickins de la Universidad de Melbourne para proporcionar amablemente la biblioteca shRNA utilizada en la pantalla. Este trabajo fue financiado por Rett síndrome Research Trust (A.B.).

Materials

293FT Cell Line Invitrogen R700-07
5-Azacytidine Sigma A2385-100MG
Agencourt AMPure XP Beckman-Coulter A63881
Anti-MECP2 antibody Millipore 07-013
Collagenase Sigma C2674-1G
Corning 96-Well Solid White Polystyrene Microplates Fisher Scientific 07-200-336
Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco 11965-092
Expression Arrest microRNA-adapted Retroviral Vector (pMSCV) Open Biosystems EAV4679
Expression Arrest pSM2 Retroviral shRNAmir library Open Biosystems RMM3796
Fetal Bovine Serum Fisherbrand 03-600-511
HiSeq 2500 Illumina SY–401–2501 Or equivalent
Hygromycin B Calbiochem 400051-1MU
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668-019
Bright-Glo Luciferase Assay System Promega E2610 Homogenous Assay for Screening Colonies
Luciferase Assay System Promega E4530 Non-Homogenous Assay for Testing Individual Hairpins
Luminometer TopCount NXT Perkin Elmer N/A Or similar luminometer
MiSeq Reagent Kit v2 Illumina MS-102-2001 Use kit compatible with your equipment
Opti-MEM Gibco 31985-070
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
pMD2.G Addgene #12259 VSV-G envelope vector
Polybrene Sigma TR-1003-G
Polyethylenimine Polysciences 23966-1
psPAX2 Addgene #12260 Packaging vector
Puromycin Gibco A11138-02
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Gibco 25300-054

Referências

  1. Amir, R. E., et al. Rett syndrome is caused by mutations in X-linked MECP2, encoding methyl-CpG-binding protein 2. Nat Genet. 23, 185-188 (1999).
  2. Guy, J., Gan, J., Selfridge, J., Cobb, S., Bird, A. Reversal of neurological defects in a mouse model of Rett syndrome. Science. 315, 1143-1147 (2007).
  3. Maduro, C., de Hoon, B., Gribnau, J. Fitting the Puzzle Pieces: the Bigger Picture of XCI. Trends Biochem Sci. 41, 138-147 (2016).
  4. Disteche, C. M. Dosage compensation of the sex chromosomes and autosomes. Semin Cell Dev Biol. 56, 9-18 (2016).
  5. Wang, J., et al. Wild-type microglia do not reverse pathology in mouse models of Rett syndrome. Nature. 521, E1-E4 (2015).
  6. Sripathy, S., et al. Screen for reactivation of MeCP2 on the inactive X chromosome identifies the BMP/TGF-beta superfamily as a regulator of XIST expression. Proc Natl Acad Sci U S A. 114, 1619-1624 (2017).
  7. Foster, S. A., Galloway, D. A. Human papillomavirus type 16 E7 alleviates a proliferation block in early passage human mammary epithelial cells. Oncogene. 12, 1773-1779 (1996).
  8. Hnasko, T. S., Hnasko, R. M. The Western Blot. Methods Mol Biol. 1318, 87-96 (2015).
  9. Strezoska, Z., et al. Optimized PCR conditions and increased shRNA fold representation improve reproducibility of pooled shRNA screens. PLoS One. 7, e42341 (2012).
  10. Green, M. R., Sambrook, J. Isolation of High-Molecular-Weight DNA from Mammalian Tissues Using Proteinase K and Phenol. Cold Spring Harb Protoc. 2017, (2017).
  11. Goto, Y., Takagi, N. Tetraploid embryos rescue embryonic lethality caused by an additional maternally inherited X chromosome in the mouse. Development. 125, 3353-3363 (1998).
  12. Csankovszki, G., Nagy, A., Jaenisch, R. Synergism of Xist RNA, DNA methylation, and histone hypoacetylation in maintaining X chromosome inactivation. J Cell Biol. 153, 773-784 (2001).
  13. Minajigi, A., et al. Chromosomes. A comprehensive Xist interactome reveals cohesin repulsion and an RNA-directed chromosome conformation. Science. 349, (2015).
  14. McHugh, C. A., et al. The Xist lncRNA interacts directly with SHARP to silence transcription through HDAC3. Nature. 521, 232-236 (2015).
  15. Bhatnagar, S., et al. Genetic and pharmacological reactivation of the mammalian inactive X chromosome. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 12591-12598 (2014).
  16. Minkovsky, A., et al. The Mbd1-Atf7ip-Setdb1 pathway contributes to the maintenance of X chromosome inactivation. Epigenetics Chromatin. 7, 12 (2014).
  17. Minkovsky, A., et al. A high-throughput screen of inactive X chromosome reactivation identifies the enhancement of DNA demethylation by 5-aza-2′-dC upon inhibition of ribonucleotide reductase. Epigenetics Chromatin. 8, 42 (2015).
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Citar este artigo
Leko, V., Sripathy, S., Adrianse, R. L., Loe, T., Park, A., Lao, U., Foss, E. J., Bartolomei, M. S., Bedalov, A. Pooled shRNA Screen for Reactivation of MeCP2 on the Inactive X Chromosome. J. Vis. Exp. (133), e56398, doi:10.3791/56398 (2018).

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