Este artigo apresenta um método para testar as monosynaptic conexões entre neurônios empregando tetrodotoxina e o canal de sódio tetrodotoxina-resistente, NaChBac.
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Artigo de método
Este artigo apresenta um método para testar as monosynaptic conexões entre neurônios empregando tetrodotoxina e o canal de sódio tetrodotoxina-resistente, NaChBac.
Aqui, uma nova técnica denominada Tetrotoxin (TTX) Engenharia resistência para sondar as sinapses (TERPS) é aplicada para testar monosynaptic conexões entre os neurônios do alvo. O método baseia-se na expressão co de um ativador de transgênico com o canal de sódio tetrodotoxina-resistente, NaChBac, em um neurônio específico pré-sináptica. Conexões com parceiros pós-sináptica putativos são determinadas por gravações de células inteiras na presença de TTX, que bloqueia a atividade elétrica de neurônios que expressam não NaChBac. Esta abordagem pode ser modificada para funcionar com qualquer ativador ou imagem latente de cálcio como um repórter de conexões. TERPS adiciona o crescente conjunto de ferramentas disponíveis para determinar a conectividade em redes. No entanto, TERPS é o único que relata também confiantemente em massa ou volume transmissão e transmissão de repercussões.
Dos principais objetivos da neurociência é mapear as conexões entre os neurônios para entender como a informação flui através de circuitos. Inúmeros recursos e abordagens tornaram-se disponíveis para testar a conectividade funcional entre os neurônios em uma variedade de sistemas de modelo1,2. Para gerar os diagramas de fiação mais precisos usando eletrofisiologia, é importante resolver se observadas as conexões entre duas células são diretos e monosynaptic versus indireta e polysynaptic. Um padrão de ouro para fazer esta distinção nos neurônios de mamíferos é medir a latência entre action potentials único nas....
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1. prepare a moscas e GAL4 identificar linhas de promotor
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TERPS é usado para distinguir entre mono e polysynaptic contribuições em conexões sinápticas entre os neurônios. Enquanto fraca estimulação de uma célula pode ser usada para testar conexões diretas, dirigindo a maior atividade pré-sináptica frequentemente recruta polysynaptic conexões (figura 1A). TERPS funciona co, expressando o diferenciação de TTX canal de sódio NaChBac e um ativador de optogenetic e testes de conexões na presença de TTX para eliminar liga.......
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Análise TERPS elogios atuais técnicas usadas para circuito rachando, permitindo a detecção de sinapses entre os neurônios identificados. Especificamente, a abordagem revela conexões monosynaptic por silenciar amplamente os potenciais de ação com TTX enquanto restaura a excitabilidade numa população de neurônios com o canal de sódio TTX diferenciação NaChBac selecione. Liberação sináptica é provocada pela estimulação optogenetic enquanto eventos pós-sinápticos são monitorados com gravações de células inteiras. TERPS disti.......
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Os autores não têm nada para divulgar.
Gostaríamos de agradecer Joshua Singer, Jonathan Schenk, bem como os revisores pensativos para comentários sobre o manuscrito. Também gostaríamos de agradecer a Ben White e Harold Zakon para discussões sobre a técnica. Jonathan Schenk forneceu os dados para a Figura 3A. Este trabalho foi financiado por um subsídio da Fundação Whitehall e um R21 NIH ao QG.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| UAS-csChrimson | Bloomington Drosophila Stock Center | 55135 | Usado como ativador neural |
| UAS-NaChBac | Bloomington Drosophila Stock Center | 9466 | Excitabilidade dos resotores em células em TTX |
| Tetrodotoxina | Tochris | 1078 | Pode ser necessária permissão especial para comprar TTX, pois é uma substância controlada |
| todos os trans-Retinal | Sigma-Aldrichall trans-Retinal | R2500 | Requer co-fator para channelrhodopsin |
| Aço Inoxidável 321 Soldável Folha, 0,002" Grosso, 10" Largo | McMaster Carr | 3254K7 | Usado para fazer porta-moscas personalizado. A folha personalizada pode ser cortada a laser a pololu.com a partir do arquivo PDF fornecido |
| Microscópio de Dissecção | Zeiss | Stemi 2000-C | Usado para dissecação de preparação |
| Waxer | Almore | Eectra Waxer 66000 | Usado durante a dissecção para fixar a mosca na folha |
| Cera de Parafina | Joann | 4917217 | Usado com encerador |
| Número 5 fórceps | Fine Science Tools | #5CO | Usado para dissecação e desmontagem |
| Tesoura de dissecação | Ferramentas de ciência fina | 15001-08 | Usado para remover partes da cutícula durante a dissecação |
| Fio de tungstênio | A-M Systems | 797500 | Use com eletrólise para fazer agulhas afiadas para dissecação |
| Bomba peristáltica reciculante | Simplesmente bombas (Amazon) | PM200S | para recirculação |
| Controlador de velocidade TTX para bomba peristáltica | Zitrades (Amazon) | N/A | PWM Dimming Controller Para Luzes LED ou Fita, 12 Volt 8 Amp,Controlador de Luz de Luz Ajustável DC12V 8A 96W para Led Strip Light B |
| Versa-Mount Regulador de Ar Comprimido de Precisão | McMaster Carr | 1804T1 | Para aplicar pressão positiva durante o patching |
| Vidro capilaries | World Precision Instruments | TW150F-3 | Para pipetas de patch |
| Medidor Multiuso | McMaster Carr | 3846K431 | Medidor para regulador de pressão |
| Câmera de Eletrofisiologia | Dage MTI | IR-1000 | Qualquer câmera que funcione na faixa de infravermelho (850 nm) funcionará. Você não quer usar iluminação vermelha, pois isso pode ativar os LEDs IR da csChrimson |
| Thorlabs | M850F2 | Para iluminação oblíqua | |
| fibra óptica para IR LED | Thorlabs | M89L01 | Acopla a |
| lente objetiva IR LED | Olympus 40X | LUMPlanFLN | Isso pode ser usado na maioria dos microscipes e funciona bem para visualizar neurônios de moscas. |
| LED âmbar | Thorlabs | M590L3d | Para visualizar RFP e mCherry |
| Blue LED | Thorlabs | M470L3d | Para visualizar GFP |
| Conjunto de filtros GFP | Chroma | 49011 | Para visualizar GFP ou estimular channel2rhodopsin |
| Conjunto de filtros mCherry personalizados | Chroma | et580/25x e t600lpxr (do conjunto 49306), mas com uma barreira et610lp/óptica de emissão | Use apenas se desejar corrigir neurônios identificados com channel2rhodopsin |
| Dichroic para combinar Thorlabs de LED âmbar e azul | DMLP550R | Use apenas patch sob mCherry e excite channel2rhodopsin com luz azul. | |
| LED LED vermelhoFornecido | Cree XPE 620 - 630 nm | Usado para acionar o driver de LED csChrimson | |
| LEDSupply | 3021-D-E-1000 | Usado para acionar LEDs para estimulação optogenética | |
| Manipulador | Sutter Instruments | MP-225 | Usado para posicionar a pipeta durante as gravações |
| Amplificador Patchclamp A-M | Systems | Modelo 2400 | Um amplificador equivalente é adequado |
| Filtro Bessel | Warner Instruments | LPF 202A | Filtro auxiliar usado para filtrar o traço de corrente para o osciloscópio durante o patching. |
| Sistema de Aquisição de Dados | National Instruments | NI PCIe-6321 781044-01 | Usado para gravar dados do amplificador para o computador Bloco de |
| conectores - Terminal BNC BNC-2090A | National Instruments | 779556-01 | Usado para conectar o amplificador ao cartão DAQ. |
| Folha de aço | McMaster Carr | 3254K7 | Folha de aço para câmara de gravação personalizada |
| Ímãs | K & J Magnetics | D42 | Para fixar a câmara de gravação ao suporte de anel |
| 1/16" Célula Cast Acrílico Transparente | Pololu | Usado para fazer câmara de gravação personalizada. O acrílico pode ser cortado a laser a pololu.com a partir do arquivo PDF fornecido |
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