Summary

Desthiobiotin-Streptavidin-afinidade mediada purificação de proteínas RNA-interagindo em células mesotelioma

Published: April 25, 2018
doi:

Summary

Desthiobiotin rotulagem de um sintético 25-nucleotide oligo de RNA, que contém um motivo de adenina-rico elemento (são), permite a ligação específica da proteína de ligação são citosólica.

Abstract

O em vitro RNA-pulldown é ainda amplamente usado nos primeiros passos de protocolos que visam identificar RNA-proteínas que reconhecem estruturas de RNA e motivos específicos. Neste protocolo de RNA-pulldown, sondas de RNA sintetizadas comercialmente são rotuladas com uma forma modificada de biotina, desthiobiotin, no terminal 3′ da strand, RNA, que se liga reversivelmente para streptavidin e permite assim a eluição das proteínas sob mais fisiológica condições. O RNA-desthiobiotin está imobilizado através da interação com estreptavidina em grânulos magnéticos, que são usados para puxar para baixo de proteínas que interagem especificamente com o RNA de interesse. Proteínas não-desnaturado e ativas da fracção citosólica de células mesotelioma são utilizadas como fonte de proteínas. O método descrito aqui pode ser aplicado para detectar a interação entre proteínas de ligação de RNA conhecidas e uma 25-nucleotide (nt) longo RNA sonda contendo uma sequência de interesse. Isso é útil para completar a caracterização funcional de estabilização ou desestabilizar os elementos presentes em moléculas de RNA alcançadas usando um ensaio de vetor de repórter.

Introduction

Expressão gênica e o nível final do produto do gene podem ser fortemente regulamentados por afetar a estabilidade do mRNA e o mRNA tradução taxa1. Estes mecanismos de regulação pós-transcricional são exercidos através de interações de não-codificantes do RNA e/ou ligação de RNA proteínas (RBPs) com mRNA alvo. Geralmente é a região untranslated 3′ do mRNA (3′ UTR – pertencentes à porção não-codificantes do genoma2) que contém específica cis-elementos reguladores (CRE), que são reconhecidos pelo trans-agindo fatores como miRNA ou RBPs 3. o mais bem estudadas cis-elemento dentro do 3′ UTR, é motivo de adenina-rico elemento (são), que é reconhecido por proteínas específicas de AU-ligação (AUBP) e, por sua vez, induz qualquer degradação do mRNA/deadenylation (decaimento são-mediada) ou de estabilização do mRNA4.

O tamanho da 3′ UTR de desnutridos mRNA (CALB2) é 573 bp longa e contém um pentâmero AUUUA putativo, como previsto pelos AREsite2, uma ferramenta de bioinformatic5. Consistente com a presença de um putativo são motivo, o ensaio de vetor-repórter pmirGLO demonstrado um papel de estabilização deste elemento dentro do mRNA CALB26. Finalmente, o em vitro RNA-pulldown foi usado para identificar a AUBP que estabiliza desnutridos mRNA através do motivo de são.

Desde que todos os RNAs não codificantes interagirem com proteínas7, o em vitro RNA-pulldown é um ensaio de primeira escolha para a identificação de RNA-interactianos e boa maneira para ajudar a decifrar os mecanismos moleculares. Neste método de RNA-pulldown, sondas de RNA sintetizadas comercialmente, que foram rotuladas com uma forma modificada de biotina (desthiobiotin) no terminal 3′ da strand, RNA, foram usadas. O RNA-desthiobiotin está imobilizado através da interação com estreptavidina em grânulos magnéticos, que são usados para puxar para baixo de proteínas que interagem especificamente com o limite-RNA de interesse. Proteínas não-desnaturado e ativas da fracção citosólica de células mesotelioma são utilizadas como fonte de proteínas. Essas proteínas RNA-limite são eluídas dos grânulos magnéticos, executado através de um gel de SDS-PAGE 12%, transferido para uma membrana e sondado com anticorpos diferentes.

O procedimento de purificação padrão estreptavidina-biotina afinidade, dura desnaturação requeridas para romper o vínculo forte irreversível biotina-streptavidin para Eluir o limite proteínas8, que pode levar a dissociação de complexos de proteínas. Ao contrário de biotina, desthiobiotin reversível vincula streptavidin e competitivos é deslocada com uma solução tamponada de biotina, permitindo a eluição suave de proteínas e evitando o isolamento de naturalmente biotinilado moléculas9, sugerindo que a técnica é ideal para isolar os complexos da proteína nativa sob condições nativas.

In vitro as condições de vinculação e o rigor, que são determinados pela concentração de sal, agentes redutores e porcentagem de detergente, devem ser próximo aos presentes no contexto celular a fim de identificar interações de verdade na vivo . As condições de ligação implementadas neste documento foram anteriormente demonstradas conforme apropriado para a identificação da HuR como uma proteína ligadora AU10. Esta abordagem poderia poupar tempo, desde que a otimização das condições de vinculação adequada pode ser demorada e desafiador. Além disso, esse método poderia ser usado como um protocolo de partida para qualquer experiência de RNA-pulldown e pode ser otimizado progressivamente alterando a concentração de sais e detergentes, mudando a porcentagem de glicerol, e adicionando outros sais. Além disso, demonstrar que mesmo uma curta 25-nucleotídeo do RNA-sonda abrigando um pentâmero são-motivo poderia ser usado para demonstrar a interação com um específico AUBP.

Protocol

1. preparação da fração de proteína citosólica e Nuclear Placa 4 x 106 ACC-MESO-4 células num balão de cultura de célula T150 cultivadas em RPMI – 1640 meio suplementado com 10% FBS, 1 x penicilina/estreptomicina (100 x) e 2 mM L-glutamina (200 mM). Quando as células alcançam uma confluência de 80-90% (~5-5.5 x 106 células), prosseguir com a extração da proteína da fração nuclear e citosólica.Nota: ACC-MESO-4 linha de celular foi obtida o RIKEN BioResource centro<sup…

Representative Results

Neste experimento, utilizou-se um fragmento de tempo 25-nt de desnutridos 3′ UTR abrigando são motivo (CALB2) 3′ UTR (são) 25-nt para testar se liga-se especificamente à proteína antígeno humano-R (HuR), um conhecido estabilizador de mRNA. Para testar a especificidade do elemento são, um RNA 25-nt sonda CALB2 3′ UTR (mtARE) contendo uma mutação são-motivo, que anteriormente foi mostrada para abolir o efeito de estabilização do motivo são, foi usado6. O …

Discussion

3′ UTRs pertencem ao não-codificantes do genoma3, e todos os RNAs não codificantes podem interagir com as proteínas a fim de exercer sua função7. Quando o genoma de mamíferos foi encontrado para ser comodamente transcrito e produzido uma parcela significativa de tempo não-codificante RNAs16, emergentes evidências demonstraram que estes RNAs long-não-codificante função na regulação da expressão gênica como eles interagem com cromatina-r…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pela Swiss National Science Foundation Sinergia concessão CRSII3 147697, Stiftung für Angewandte Krebsforschung e Zürich Krebsliga.

Materials

NE-PER Nuclear and cytoplasmic extraction kit Thermo Fisher Scientific  78833
Pierce Protease Inhibitor Tablets, EDTA-free Thermo Fisher Scientific A32965
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 23225
Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  Thermo Fisher Scientific 20164 Includes magnetic beads and therefore the kit need to be stored at 4 °C
Pierce RNA 3’ End Desthiobiotinylation Kit  Thermo Fisher Scientific 20163 The kit is a part of the "Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit", and needs to be stored at -20 °C unlike the pull-down kit (4 °C).
DynaMag-2,  magnetic stand Thermo Fisher Scientific 12321D
Anti – HuR (MOUSE) monoclonal antibody Thermo Fisher Scientific The antibody is included in the Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  – 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – α – tubulin (MOUSE) monoclonal antibody Santa Cruz 8035 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – PARP (RABBIT) Polyclonal antibody Cell Signaling 9542 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – goat anti-rabbit secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – Mesothelin (MOUSE) Monoclonal Antibody  Rockland 200-301-A87
Secondary goat anti-rabbit antibody Cell Signaling 7074
Secondary rabbit anti-mouse antibody Sigma-Aldrich A-9044
RPMI – 1640 medium Sigma-Aldrich R8758
FBS – Filtrated Bovine Serum Pan Biotech  P40-37500
Penicillin – streptomycin (100x) Sigma-Aldrich  P4333
L-Glutamine solution (200 mM) Sigma-Aldrich  G7513
0.25% Trypsin-EDTA (1x) Gibco by Life technologies  25200-056
Mini-PROTEAN 3 Cell Bio-Rad 1653301
Mini Protean System Glass Plates  Bio-Rad 1653308
Mini-PROTEAN Spacer Plates with 1.5 mm integrated spacer Bio-Rad 1653312
Mini-PROTEAN Comb, 10-well, 1.5 mm, 66 µL Bio-Rad 1653365
Mini-PROTEAN Tetra Cell Casting Modules Bio-Rad 1658050
RNaseZap RNase Decontamination Solution Thermo Fisher Scientific AM9780
Rotiphorese gel 30 – aqueous 30% acrylamide and bisacrylamide stock solution at a ration of 37.5:1 Roth 3029
20% SDS  PanReac AppliChem A3942
PVDF transfer membrane  Perkin Elmer NEF1002 Need to be activated by incubating in pure methanol for 1 min followed by washing in water for 2 min 
Trans-Blot SD semi-dry transfer cell  Bio-Rad 1703940
Clarity Western ECL Substrate Bio-Rad 1705061
FusionFX  Digital Imager Vilber
RNA oligo synthesis Mycrosynth AG, Switzerland the synthesis scale – 0.04 µmol – HPLC purified
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7030
Hydrochloric Acid (HCl) 6 M PanReac AppliChem 182883.1211
Ultra Pure 1 M Tris, pH 7.5  Thermo Fisher Scientific 15567027
Glycerol  Thermo Fisher Scientific 17904 50% sterile aliquots to be stored at -20°C
Pierce Streptavidin magnetic beads  Thermo Fisher Scientific 88817 Please note that these magnetic beads have an average diameter of 1 µm (range from 0.5 – 1.5 µm). Furthermore, Dynabeads-M280 Streptavidin, which are beads of homogenouse size 2.8 µm, are also used in RNA-pulldown but be aware that this may affect purification process.
TEMED Sigma-Aldrich T9281
Ammonium persulfate  Sigma-Aldrich A3678
Coomassie G-250 Applichem A3480
Aluminiumsulfate-(14-18)-hydrate  Sigma-Aldrich 368458
ortho-phosphoric acid  Applichem A0637

Referências

  1. Glisovic, T., Bachorik, J. L., Yong, J., Dreyfuss, G. RNA-binding proteins and post-transcriptional gene regulation. FEBS Letters. 582 (14), 1977-1986 (2008).
  2. Mayr, C. Evolution and biological roles of alternative 3’UTRs. Trends in Cell Biology. 26 (3), 227-237 (2016).
  3. Matoulkova, E., Michalova, E., Vojtesek, B., Hrstka, R. The role of the 3′ untranslated region in post-transcriptional regulation of protein expression in mammalian cells. RNA Biology. 9 (5), 563-576 (2012).
  4. von Roretz, C., Di Marco, S., Mazroui, R., Gallouzi, I. E. Turnover of AU-rich-containing mRNAs during stress: a matter of survival. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 2 (3), 336-347 (2011).
  5. Fallmann, J., Sedlyarov, V., Tanzer, A., Kovarik, P., Hofacker, I. L. AREsite2: An enhanced database for the comprehensive investigation of AU/GU/U-rich elements. Nucleic Acids Research. 44, D90-D95 (2016).
  6. Kresoja-Rakic, J., et al. Posttranscriptional regulation controls calretinin expression in malignant pleural mesothelioma. Frontiers in Genetics. 8 (70), (2017).
  7. Chu, C., Spitale, R. C., Chang, H. Y. Technologies to probe functions and mechanisms of long noncoding RNAs. Nature Structural & Molecular Biology. 22 (1), 29-35 (2015).
  8. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clinical Chemistry. 37 (5), 625-636 (1991).
  9. Hirsch, J. D., et al. Easily reversible desthiobiotin binding to streptavidin, avidin, and other biotin-binding proteins: Uses for protein labeling, detection, and isolation. Analytical Biochemistry. 308 (2), 343-357 (2002).
  10. . Magnetic bead technology for better assay development Available from: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/brochures/1602577-Magnetic-Bead-Technology-Brochure.pdf (2013)
  11. Usami, N., et al. Establishment and characterization of four malignant pleural mesothelioma cell lines from Japanese patients. Cancer Science. 97 (5), 387-394 (2006).
  12. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  13. Coulson, R. M., Cleveland, D. W. Ferritin synthesis is controlled by iron-dependent translational derepression and by changes in synthesis/transport of nuclear ferritin RNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (16), 7613-7617 (1993).
  14. Leibold, E. A., Munro, H. N. Cytoplasmic protein binds in vitro to a highly conserved sequence in the 5′ untranslated region of ferritin heavy- and light-subunit mRNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 85 (7), 2171-2175 (1988).
  15. Srikantan, S., Gorospe, M. HuR function in disease. Frontiers in Bioscience (Landmark Edition). 17, 189-205 (2012).
  16. Morris, K. V., Mattick, J. S. The rise of regulatory RNA. Nature Reviews: Genetics. 15 (6), 423-437 (2014).
  17. Rinn, J. L., et al. Functional demarcation of active and silent chromatin domains in human HOX loci by noncoding RNAs. Cell. 129 (7), 1311-1323 (2007).
  18. Zhao, J., Sun, B. K., Erwin, J. A., Song, J. J., Lee, J. T. Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome. Science. 322 (5902), 750-756 (2008).
  19. McHugh, C. A., et al. The Xist lncRNA interacts directly with SHARP to silence transcription through HDAC3. Nature. 521 (7551), 232-236 (2015).
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Citar este artigo
Kresoja-Rakic, J., Felley-Bosco, E. Desthiobiotin-Streptavidin-Affinity Mediated Purification of RNA-Interacting Proteins in Mesothelioma Cells. J. Vis. Exp. (134), e57516, doi:10.3791/57516 (2018).

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