Summary

Generation av byggnadsställning-fri, tredimensionella Insulin att uttrycka Pancreatoids från mus bukspottskörteln föräldraparets In Vitro

Published: June 02, 2018
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att generera insulin uttrycker 3D murina pancreatoids från friflytande e10.5 dissocierade bukspottskörteln stamfäder och den associerade mesenchyme.

Abstract

Bukspottkörteln är ett komplext organ sammansatt av många olika celltyper som samverkar för att reglera blod glukos homeostas och matsmältningen. Dessa celltyper inkluderar enzym-utsöndrar acinar celler, en arborized duktal system som ansvarar för transport av enzymer i tarmen och hormonproducerande endokrina celler.

Endokrina betacellerna är den enda Celltypen i kroppen som producerar insulin att sänka blodsockernivåerna. Diabetes, en sjukdom som kännetecknas av en förlust eller dysfunktion av beta-celler, är att nå epidemiska proportioner. Därför är det nödvändigt att upprätta protokoll för att undersöka beta-cell utveckling som kan användas vid screening för att härleda den drog- och cellbaserade therapeutics. Medan den experimentella undersökningen av mus utveckling är nödvändigt, är in-vivo studier mödosam och tidskrävande. Odlade celler ger en bekvämare plattform för screening; de är dock inte behålla den cellulära mångfald, arkitektoniska organisation och cellulära interaktioner hittade invivo. Därför är det viktigt att utveckla nya verktyg för att undersöka pankreas organogenes och fysiologi.

Bukspottskörteln epitelceller utvecklas i nära association med mesenchyme från uppkomsten av organogenes som cellerna organisera och differentieras till komplexa, fysiologiskt behöriga vuxna organ. Den pankreas mesenchyme ger viktiga signaler för endokrina utveckling, varav många inte är förstått ännu, således svårt att sammanfatta under in vitro- kulturen. Här beskriver vi ett protokoll till kultur tredimensionella, cellulär komplex musen organoids att behåller mesenchyme, kallas pancreatoids. E10.5 murina bukspottskörteln knoppen är dissekeras, separerade och odlade i en byggnadsställning-fri miljö. Dessa flytande celler montera själv med mesenchyme omsluter den framkallande pancreatoid och en robust antalet endokrina betacellerna utveckla tillsammans med den acinar och kanal celler. Detta system kan användas för att studera cell öde bestämning, strukturella organisationen och morfogenes, cell-cell interaktioner under organogenesen eller för läkemedel, liten molekyl eller genetisk screening.

Introduction

Avgränsar mekanismer normala utveckling och fysiologi är av största vikt att förstå sjukdomen etiologi och slutligen odla behandlingsmetoder. Medan odling och differentiera stamceller möjliggör snabb och hög genomströmning analys av utveckling, det begränsas av befintliga kroppen av kunskap om mekanismer som reglerar cell öde och artificiellt recapitulates utveckling i en relativt homogen, tvådimensionell stat1,2. Inte bara i vivo utveckling påverkas av yttre påverkan, med olika celltyper i nisch och miljö tillhandahåller parakrin signaler och organisatoriskt stöd för att vägleda organogenes, men funktionen av dessa celler också beroende av deras omgivningen för vägledning3,4,5. Med tanke på betydelsen av dessa externa ledtrådar, begränsning av differentiering protokoll, och mödosamma beskaffenhet i vivo musmodeller, behövs nya system för att undersöka grundläggande utvecklingsprocesser och fysiologi.

Uppkomsten av protokollen att generera tredimensionella, komplexa organoids ger ett bekvämt och kongruent system för att studera organogenes, fysiologi, drogen effekt och även patogenes. Inrättande av murina organoids för olika system såsom den mage6 och tarmen7 har utökat vår förståelse för organogenes, ger ett verktyg för att studera utvecklingsmässiga komplexiteten med färre restriktioner än i vivo och in vitro- modeller. På grund av dessa framsteg i det murina organoid bildandet och tillkomsten av mänskliga pluripotenta stamceller celler, human intestinal8, retinal9, nedsatt10,11, och cerebral12 organoids har producerats, och detta repertoaren är endast begränsad av den befintliga kunskapen om mekanismerna för utveckling.

Av särskilt intresse är generationen av bukspottskörteln organoids, som en myriad av sjukdomar plågar olika bukspottskörteln celltyper, däribland acinar celler och kanaler i exokrin pankreasinsufficiens13, acinar celler i pankreatit14, och beta-cellerna i diabetes15. Få kunskap om utvecklingen av dessa olika celltyper kan stöd för att förstå deras patologi och kan också fungera som en plattform för personlig drogkontroll eller transplantation. Tidigare, Greggio et al. utvecklat en metod att skapa murina bukspottskörteln organoids som recapitulate i vivo morfogenes och utveckla organiserad, tredimensionella, komplexa strukturer består av alla större bukspottskörteln epitelceller typer16,17. Detta är ett stort steg framåt i fältet bukspottskörteln, särskilt som gör celler in vitro- kan aktivera biologisk undersökning av beta-cell utveckling. Dock en brist på endokrina celler bildas i detta protokoll såvida organoids transplanterades in i vävnaden, där nischen kunde interagera och ge instruktions cues17. Mesenchyme utgör den största delen av den nisch, tungt kuvertering utveckla epitel från tidiga organogenesen till senare stadier inklusive endokrina delaminering och differentiering3,4, 18. Samspelet mellan mesenchyme med utveckla bukspottkörteln är ännu ett exempel av yttre signalering och vikten av att upprätthålla i vivo cellulära komplexitet att studera organogenes.

Här, beskriver vi hur man skapar tredimensionella bukspottskörteln organoids, kallas pancreatoids, från dissocierade e10.5 murina bukspottskörteln stamfäder. Dessa pancreatoids behålla infödda mesenchyme själv montera i friflytande villkor och generera alla stora bukspottskörteln celltyper, däribland en robust antal endokrina betacellerna19. Detta tillvägagångssätt är bäst lämpad för analys av endokrina utveckling, eftersom tidigare protokoll saknar robust endokrin differentiering. Dock använder protokollet för bukspottskörteln organoids som beskrivs av Greggio et al. är bättre lämpad för analys av bukspottskörteln epitelial förgrening och morfogenes, som förgrening är mer begränsade i pancreatoids.

Protocol

Alla djurförsök som beskrivs för denna metod godkändes av institutionella djur vård och användning kommittén av Baylor College of Medicine. 1. beredning av mus embryonala dag 10.5 bukspottskörteln stamfäder Obs: Detta protokoll behöver inte följas under sterila förhållanden fram till steg 2, men det är optimalt att sterilisera dissektion verktyg och spraya med 70% etanol före användning. Ställ in för dissektion, fylla en ishink och placer…

Representative Results

Noggrann dissektion av musembryon på e10.5 från livmoderns horn bör ge oskadade embryon i PBS för ytterligare dissektion (figur 1A). Mag-tarmkanalen kan effektivt avlägsnas från embryot (figur 1B), tillåter urskiljning av dorsala bukspottskörteln bud vid korsningen av tarmen och magen (figur 1C-F). E10.5 bukspottskörteln knoppen har tidigare…

Discussion

Utvecklingen av cellen kultur modeller är avgörande för korrekt modell utveckling, ge kliniskt relevanta celltyper, test drogen effekt eller ens transplantation till patienter. Dock går konstgjort igenom utveckling i en maträtt är utmanande eftersom vi är fortfarande långt ifrån förstå mekanismerna för organogenes och fysiologi invivo. In vitro- celler är således ineffektivt genererade, inte fullt fungerande, inte kan bibehållas under lång tid eller hysa andra avvikelser från jämförba…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Jolanta Chmielowiec för bra diskussion angående protokollet och manuskript. Vi tackar också Benjamin Arenkiel för tillgång till confocal mikroskopet. Detta arbete fick stöd av NIH (P30-DK079638 till M.B.) och T32HL092332-13 M.A.S. och M.B., McNair medicinska stiftelsen (att M.B.) och confocal kärnan vid BCM intellektuella och utvecklingsstörningar Research Center (NIH U54 HD083092 från Eunice Kennedy Shriver nationella institutet för barns hälsa och mänskliga utvecklingen).

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250
Aspirator Tube Assemblies for Calibrated Microcapillary Pipettes Sigma-Aldrich A5177
BarnStead NanoPure Nuclease-free water ThermoFisher D119
Borosilicate Capillary Tubes Sutter Instruments GB1007515 O.D. 1mm, I.D. 0.75mm, 1.5cm length
CaCl2 Sigma-Aldrich C5080
Cell-Repellent 96-Well Microplate Greiner Bio-One 650970 U-bottom
Centrifuge 5424 R Eppendorf 5401000013
Chloroform Sigma-Aldrich 233306
Chromogranin-A antibody Abcam ab15160
Compact, Modular Stereo Microscope M60 Leica
Countess Automated Cell Counter Invitrogen C10310
Countess Cell Counter Slides Invitrogen C10312
CryoStar NX70 ThermoFisher 957000L
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7528
DAPI (4',6-Diamidine-2'-phenylindole-dihydrochloride) Roche 10 236 276 001 Powder
DBA antibody Vector Lab RL-1032
Dispase II, Powder Gibco 17105041
DMEM/F-12, HEPES Gibco 11330032
Dnase I Invitrogen 18068-015
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11251-10 0.05 x 0.02 mm; Titanium; Biology tip
EGF (Epidermal growth factor) Sigma-Aldrich E9644
Ethanol, 200 Proof Decon Laboratories 2716
Forma Steri Cycle CO2 Incubators ThermoFisher 370
Fluoromount-G Southern Biotech OB10001
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa Sigma-Aldrich H3149-10KU
INSM1 Antibody Santa Cruz BioTechnology sc-271408 Polyclonal Mouse IgG
Isopropanol Fisher a4164
Isothesia Isoflurane, USP Henry Schein 11695-6776-2
Insulin Antibody Dako A056401 Polyclonal Guinea Pig
KAPA SYBR FAST Universal KAPA Biosystems KK4618
KCl KaryoMax 10575090
KnockOut Serum Replacement Invitrogen 10828028
Leica TCS SPE High-Resolution Spectral Confocal Leica
MgCl2 Sigma-Aldrich 442615
Mouse C-Peptide ELISA ALPCO 80-CPTMS-E01
Mouse Ultrasensitive Insulin ELISA ALPCO 80-INSMSU-E01
MX35 Microtome Blades ThermoFisher 3052835
NaCl Sigma-Aldrich S7653
NaHCO3 Sigma-Aldrich S3817
NaH2PO4 Sigma-Aldrich
Normal Donkey Serum Jackson Immuno Research 017-000-121
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127
PBS 1X Corning 21-040-CV
Pdx1 antibody DSHB F6A11 Monoclonal Mouse MIgG1
Peel-A-Way Disposable Embedding Molds VWR 15160-157
Penicillin-Streptomycin Solution Corning MT30002CI
PMA (Phorbol 12-Myristate 13-Acetate) Sigma-Aldrich P1585
Protein LoBind Microcentrifuge Tubes Eppendorf 22431081 1.5mL Capacity
Recombinant Human FGF-10 Protein R&D Systems 345-FG
Recombinant Human FGF-Acidic Peprotech 100-17A
Recombinant Human R-Spondin I Protein R&D Systems 4546-RS
BenchRocker 2D Benchmark BR2000
Sucrose 500g Sigma-Aldrich S0389
SuperFrost Plus Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-15
Super Pap Pen Electron Microscopy Sciences 71310
Thermomixer R Eppendorf 05-412-401
Tissue Tek O.C.T. Compound Sakura 4583
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787
TRIzol Reagent Invitrogen 15596018
TrypLE Express Invitrogen 12604039 (1x), no Phenol Red
Trypan Blue Stain Invitrogen 15250061 For cell counting slides
Trypsin-EDTA (0.05%) Corning 25-052-CI
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25200072 Phenol Red
Ultra-Low Attachment 24-Well Plate Corning 3473
Ultra-Low Attachment Spheroid Plate 96-Well Corning 4520
Vimentin Antibody EMD Millipore AB5733 Polyclonal Chicken IgY
Vortex Genie BioExpres S-7350-1
Y-27632 Dihydrochloride R&D Systems 1254 Also known as ROCK inhibitor
Zeiss 710 Confocal Microscope Zeiss

Referências

  1. Clevers, H. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  2. Akkerman, N., Defize, L. H. Dawn of the organoid era: 3D tissue and organ cultures revolutionize the study of development, disease, and regeneration. Bioessays. 39 (4), (2017).
  3. Guo, T., Landsman, L., Li, N., Hebrok, M. Factors expressed by murine embryonic pancreatic mesenchyme enhance generation of insulin-producing cells from hESCs. Diabetes. 62 (5), 1581-1592 (2013).
  4. Landsman, L., et al. Pancreatic mesenchyme regulates epithelial organogenesis throughout development. PLoS Biology. 9 (9), 1001143 (2011).
  5. Lammert, E., Cleaver, O., Melton, D. Induction of pancreatic differentiation by signals from blood vessels. Science. 294 (5542), 564-567 (2001).
  6. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6 (1), 25-36 (2010).
  7. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  8. Spence, J. R., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro. Nature. 470 (7332), 105-109 (2011).
  9. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472 (7341), 51-56 (2011).
  10. Xia, Y., et al. The generation of kidney organoids by differentiation of human pluripotent cells to ureteric bud progenitor-like cells. Nature Protocols. 9 (11), 2693-2704 (2014).
  11. Takasato, M., et al. Kidney organoids from human iPS cells contain multiple lineages and model human nephrogenesis. Nature. 526 (7574), 564-568 (2015).
  12. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  13. Loftus, S. K., et al. Acinar cell apoptosis in Serpini2-deficient mice models pancreatic insufficiency. PLoS Genetics. 1 (3), 38 (2005).
  14. Kleeff, J., et al. Chronic pancreatitis. Nat Rev Dis Primers. 3, 17060 (2017).
  15. Murtaugh, L. C., Melton, D. A. Genes, signals, and lineages in pancreas development. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 19, 71-89 (2003).
  16. Greggio, C., De Franceschi, F., Figueiredo-Larsen, M., Grapin-Botton, A. In vitro pancreas organogenesis from dispersed mouse embryonic progenitors. Journal of Visualized Experiments. (89), 51725 (2014).
  17. Greggio, C., et al. Artificial three-dimensional niches deconstruct pancreas development in vitro. Development. 140 (21), 4452-4462 (2013).
  18. Sneddon, J. B., Borowiak, M., Melton, D. A. Self-renewal of embryonic-stem-cell-derived progenitors by organ-matched mesenchyme. Nature. 491 (7426), 765-768 (2012).
  19. Scavuzzo, M. A., Yang, D., Borowiak, M. Organotypic pancreatoids with native mesenchyme develop Insulin producing endocrine cells. Scientific Reports. 7 (1), 10810 (2017).
  20. Murtaugh, L. C., Stanger, B. Z., Kwan, K. M., Melton, D. A. Notch signaling controls multiple steps of pancreatic differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (25), 14920-14925 (2003).
  21. Nelson, S. B., Schaffer, A. E., Sander, M. The transcription factors Nkx6.1 and Nkx6.2 possess equivalent activities in promoting beta-cell fate specification in Pdx1+ pancreatic progenitor cells. Development. 134 (13), 2491-2500 (2007).
  22. Seymour, P. A., et al. SOX9 is required for maintenance of the pancreatic progenitor cell pool. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (6), 1865-1870 (2007).
  23. Kawaguchi, Y., et al. The role of the transcriptional regulator Ptf1a in converting intestinal to pancreatic progenitors. Nature Genetics. 32 (1), 128-134 (2002).
  24. Hara, M., et al. Transgenic mice with green fluorescent protein-labeled pancreatic beta -cells. American Journal of Physiology: Endocrinology and Metabolism. 284 (1), 177-183 (2003).
  25. Holthofer, H., Schulte, B. A., Spicer, S. S. Expression of binding sites for Dolichos biflorus agglutinin at the apical aspect of collecting duct cells in rat kidney. Cell and Tissue Research. 249 (3), 481-485 (1987).
  26. Reichert, M., et al. Isolation, culture and genetic manipulation of mouse pancreatic ductal cells. Nature Protocols. 8 (7), 1354-1365 (2013).
  27. Winkler, H., Fischer-Colbrie, R. The chromogranins A and B: the first 25 years and future perspectives. Neurociência. 49 (3), 497-528 (1992).
  28. Burcelin, R., Knauf, C., Cani, P. D. Pancreatic alpha-cell dysfunction in diabetes. Diabetes and Metabolism. 34, 49-55 (2008).
  29. Del Prato, S., Marchetti, P. Beta- and alpha-cell dysfunction in type 2 diabetes. Hormone and Metabolic Research. 36 (11-12), 775-781 (2004).
  30. Piciucchi, M., et al. Exocrine pancreatic insufficiency in diabetic patients: prevalence, mechanisms, and treatment. International Journal of Endocrinology. 2015, 595649 (2015).
  31. Campbell-Thompson, M., Rodriguez-Calvo, T., Battaglia, M. Abnormalities of the Exocrine Pancreas in Type 1 Diabetes. Current Diabetes Reports. 15 (10), 79 (2015).
  32. Shivaprasad, C., Pulikkal, A. A., Kumar, K. M. Pancreatic exocrine insufficiency in type 1 and type 2 diabetics of Indian origin. Pancreatology. 15 (6), 616-619 (2015).
check_url/pt/57599?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Scavuzzo, M. A., Teaw, J., Yang, D., Borowiak, M. Generation of Scaffold-free, Three-dimensional Insulin Expressing Pancreatoids from Mouse Pancreatic Progenitors In Vitro. J. Vis. Exp. (136), e57599, doi:10.3791/57599 (2018).

View Video