Summary

Mantenimiento de cultivos biológicos y medir la expresión génica en Aphis nerii: un sistema no-modelo de las interacciones planta-insecto

Published: August 31, 2018
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Summary

El pulgón Aphis nerii coloniza plantas muy defendido en la familia del dogbane (Apocyanaceae) y ofrece numerosas oportunidades para el estudio de las interacciones planta-insecto. Aquí, presentamos una serie de protocolos para el mantenimiento de la planta y el pulgón de las culturas y la generación y el análisis molecular y los datos de a. nerii– omic.

Abstract

Áfidos son excelentes modelos experimentales para una variedad de cuestiones biológicas que van desde la evolución de la simbiosis y el desarrollo de polyphenisms a preguntas alrededor de las interacciones de los insectos con sus plantas hospederas. Recursos genómicos están disponibles para varias especies de áfidos, y con los avances en la secuenciación de próxima generación, transcriptómicos estudios se se amplía a organismos no-modelo que carecen de genomas. Además, culturas de pulgón pueden ser recogidas del campo y criadas en el laboratorio para el uso en experimentos moleculares y el brecha entre los estudios ecológicos y genéticos. Por último, muchos pulgones se pueden mantener en el laboratorio en sus plantas del anfitrión favorito en ciclos de vida perpetuos, partenogénesis que permite comparaciones de reproducir asexualmente genotipos. Aphis nerii, el pulgón de la adelfa de algodoncillo, proporciona uno de estos modelos para estudiar interacciones de insectos con plantas tóxicas usando experimentos de organismos y moleculares. Métodos para la generación y mantenimiento de la planta y pulgón en la expresión diferencial del transcriptoma de invernadero y laboratorio, extracciones de DNA y RNA, análisis de microsatélites, de novo transcriptoma montaje y anotación, Análisis y verificación de la qPCR de genes diferencialmente expresados son descritos y discutidos aquí.

Introduction

Los áfidos son insectos hemimetabolous, pequeño que colonizan en familias de diversas plantas en todo el mundo. Son distintivos para varias características, más en particular sus ciclos de vida complejos con partenogénesis cíclica y polyphenisms discreta y sus simbiosis nutricionales obligados con endosimbionte bacteriano o de levadura que suministrar nutrientes en el la dieta de savia de planta1. Mientras más áfidos son especialistas de planta huésped, algunas especies generalistas son importantes plagas, causando un daño económico considerable en los cultivos ya sea directamente o a través de los agentes patógenos y virus vector2. La publicación del primer genoma del pulgón en el 2010, el áfido de la arveja Acyrthosiphon pisum3, marcó un hito importante en el estudio de la biología de los áfidos porque proporcionó los recursos genomic para abordar preguntas acerca de los insectos adaptaciones al estilo de vida herbívora, los que podrían conducir a un mejor control estrategias4incluidos. Desde entonces, han acumulado más recursos genomic con la publicación de un genoma anotado para la soja pulgón glycines Aphis5y recursos disponibles al público todo el genoma de otra especie de pulgón tres (Myzus Cerasi (cereza negra pulgón), Myzus persicae (pulgón de patatas y melocotón), Rhopalosiphum padi (pulgón de la avena de la cereza de pájaro)6. Valiosa de novo transcriptómicos recursos está disponible, así como para un número de otras especies de áfidos (e.g.,Aphis gossypii (pulgón del algodón)7, Sitobion avenae (áfido grano)8, Cinara pinitabulaeformis (pulgón del pino)9, Aphis nerii (pulgón de la adelfa de algodoncillo)10).

Áfidos también han hecho contribuciones duraderas a nuestro entendimiento de las interacciones planta-insecto y la ecología de la vida en las plantas11. Un área donde los pulgones han hecho contribuciones especialmente importantes es en nuestra comprensión de la ecología química de las interacciones de la planta de host. Adaptaciones expresan diversos insectos herbívoros para superar las defensas de la planta y algunos incluso cooptación las defensas de la planta para su propio benefician de12,13,14. Por ejemplo, el pulgón de la adelfa de algodoncillo, Aphis nerii, es un brillante amarillo, invasor pulgones encontrados en regiones templadas y tropicales en todo el mundo que colonizan en las plantas de la familia del algodoncillo (Apocynaceae). Planta de la familia Apocynaceae ha desarrollado defensas químicas diversas, incluyendo látex lechoso y glucósidos cardíacos conocidos como cardenolides, que se unen el portador de catión Na, K-ATPasa y son eficaces elementos de disuasión a generalistas herbívoros15, 16. especialistas de algodoncillo expresan distintos modos de resistencia a los cardenolides, y selectivamente o pasivamente se acumulan o modificar cardenolides en sus tejidos como medio para disuadir depredadores o para otros beneficios17. A. nerii piensa secuestrar cardenolides de esta manera, aunque los mecanismos y beneficios funcionales siguen siendo claro10,18.

Teniendo en cuenta los recursos genomic a la mano, a. nerii ofrece un excelente modelo experimental para el estudio de los mecanismos moleculares y genéticos involucrados en las interacciones chemo-ecológicas entre las plantas tóxicas acogida y su especialista herbívoros. Cabe señalar que, mientras algunos de los primeros estudios de a. nerii se centró en el secuestro de cardenolides19, desde entonces, los estudios de a. nerii han proporcionado penetraciones en un amplio conjunto de preguntas evolutivas y ecológicas, incluyendo la estructura genética de insectos invasores20 y la interacción entre regulación ascendente y descendente de la densidad de herbívoros21. A. nerii así es un buen candidato como un modelo experimental para un conjunto especialmente amplio de estudios de las interacciones planta insecto. Crítico para el éxito de cualquier estudio con a. nerii es la cultura de cuidado del pulgón las poblaciones, que incluye el cultivo de plantas de las que dependen los pulgones, así como una eficiente generación de datos de alta calidad – omic. Nuestro objetivo es guiar al lector a través de ambos. A continuación figuran los métodos para la generación y mantenimiento de la planta y pulgón en invernadero y laboratorio, DNA y RNA extracciones, análisis de microsatélites, de novo transcriptoma conjunto y anotación, transcriptoma Análisis de expresión diferencial y verificación de la qPCR de diferencialmente expresan genes. Mientras que estos métodos se escriben de a. nerii, los métodos generales de cultivo, la extracción y el análisis se pueden extender a una gran variedad de especies de áfidos.

Protocol

1. planta de culturas Comprar semillas de cualquier proveedor comercial u obtener de plantas maduras en el campo.Nota: Este protocolo es adecuado para muchas especies de algodoncillo comercialmente disponibles (e.g., Asclepias incarnata, a. syriaca, a. curassavica, Gomphocarpus physocarpus). Algunas semillas pueden necesitar ser estratificado en frío, y deben revisarse las instrucciones del proveedor de semilla. Planta las semillas en un suelo fino de …

Representative Results

Las culturas de la planta: Las semillas llevará aproximadamente de dos a cuatro semanas, dependiendo de la temporada, para crecer lo suficiente como para ser nuevo en maceta (figura 1A). Las plántulas a macetas tendrá otras dos a cuatro semanas para crecer a un tamaño óptimo para los cultivos de pulgón (figura 1B). <p class="jove_content" fo:keep-together.within-page="1…

Discussion

Durante mucho tiempo se ha reconocido que la catalogada a. nerii puede proporcionar penetraciones en los patrones y mecanismos de resistencia a las defensas de la planta y secuestro particularmente química18,37. Recientemente ha surgido una serie de recursos genómicos de a. nerii10, ofreciendo nuevas oportunidades para estudios de genómica funcionales y ecológicos que usan a. nerii como modelo. Describiremos …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nos gustaría agradecer a Michelle Moon (Vanderbilt University) por asistencia con la fotografía. Proporcionado la Universidad de Vanderbilt a PA y SSLB se admiten por DGE-1445197.

Materials

Sun Gro Fafard Germination Mix Hummert International 10-0952-2
Sun Gro Fafard 3B/ Metro Mix Hummert International 10-0951-2
2x 4" Round Standard Pot Anderson Pots 1503
DreamTaq DNA Polymerase ThermoFisher Scientific EP0701
Trizol ThermoFisher Scientific 15596026
SuperScript® III First-Strand Synthesis kit ThermoFisher Scientific 18080051
Power SYBR Green PCR Master Mix ThermoFisher Scientific 4367659

Referências

  1. Brisson, J. A., Stern, D. L. The pea aphid, Acyrthosiphon pisum.: an emerging genomic model system for ecological, developmental and evolutionary studies. BioEssays. 28, 747-755 (2006).
  2. Dixon, A. F. G. . Aphid Ecology: An Optimization Approach. , (1985).
  3. Consortium, T. I. A. G. Genome Sequence of the Pea Aphid Acyrthosiphon pisum. PLoS Biology. , 1000313 (2010).
  4. Srinivasan, D. G., Brisson, J. A. Aphids: A Model for Polyphenism and Epigenetics. Genetics Research International. 2012, 1-12 (2012).
  5. Wenger, J. A., et al. Whole genome sequence of the soybean aphid, Aphis glycines. Insect Biochememistry and Molecular Biology. , 1-10 (2017).
  6. Li, Z. -. Q., et al. Ecological adaption analysis of the cotton aphid (Aphis gossypii) in different phenotypes by transcriptome comparison. PLoS ONE. 8, 83180 (2013).
  7. Wang, D., Liu, Q., Jones, H. D., Bruce, T., Xia, L. Comparative transcriptomic analyses revealed divergences of two agriculturally important aphid species. BMC Genomics. 15 (1), 1023-1024 (2014).
  8. Wu, S., et al. De novo characterization of the pine aphid Cinara pinitabulaeformis Zhang et Zhang transcriptome and analysis of genes relevant to pesticides. PLoS ONE. 12, 0178496-0178517 (2017).
  9. Birnbaum, S. S. L., Rinker, D. C., Gerardo, N. M., Abbot, P. Transcriptional profile and differential fitness in a specialist milkweed insect across host plants varying in toxicity. Molecular Ecology. , (2017).
  10. Dixon, A. F. G. . Insect Herbivore-Host Dynamics. , (2005).
  11. Goggin, F. L. Plant-aphid interactions: molecular and ecological perspectives. Current Opinion in Plant Biology. 10, 399-408 (2007).
  12. Will, T., Furch, A., Zimmermann, M. R. How phloem-feeding insects face the challenge of phloem-located defenses. Frontiers in Plant Science. 4, 1-12 (2013).
  13. Webster, B. The role of olfaction in aphid host location. Physiological Entomology. 37, 10-18 (2012).
  14. Agrawal, A. A., Petschenka, G., Bingham, R. A., Weber, M. G., Rasmann, S. Toxic cardenolides: chemical ecology and coevolution of specialized plant-herbivore interactions. New Phytologist. 194, 28-45 (2012).
  15. Dobler, S., Petschenka, G., Pankoke, H. Coping with toxic plant compounds- the insect’s perspective on iridoid glycosides and cardenolides. Phytochemistry. 72, 1593-1604 (2011).
  16. Opitz, S. E. W., Müller, C. Plant chemistry and insect sequestration. Chemoecology. 19, 117-154 (2009).
  17. Birnbaum, S. S. L., Abbot, P. Insect adaptations toward plant toxins in milkweed-herbivores systems – a review. Entomologia Experimentalis et Applicata. 58, 579-610 (2018).
  18. Rothschild, M., von Euw, J., Reichstein, T. Cardiac glycosides in the oleander aphid, Aphis nerii. Journal of Insect Physiology. 16, 1141-1145 (1970).
  19. Harrison, J. S., Mondor, E. B. Evidence for an invasive aphid ‘superclone’: extremely low genetic diversity in oleander aphid (Aphis nerii) populations in the southern United States. PLoS ONE. 6, 17524 (2011).
  20. Mooney, K. A., Halitschke, R., Kessler, A., Agrawal, A. A. Evolutionary trade-offs in plants mediate the strength of trophic cascades. Science. 327, 1642-1644 (2010).
  21. Grabherr, M. G., et al. Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature Biotechnology. 29, 644-652 (2011).
  22. Haas, B. J., et al. De novo transcript sequence reconstruction from RNA-seq using the Trinity platform for reference generation and analysis. Nature Protocols. 8, 1494-1512 (2013).
  23. Finn, R. D., et al. The Pfam protein families database: towards a more sustainable future. Nucleic Acids Research. 44, 279-285 (2016).
  24. The UniProt Consortium. UniProt: the universal protein knowledgebase. Nucleic Acids Research. 45, 158-169 (2017).
  25. Johnson, M., et al. NCBI BLAST: a better web interface. Nucleic Acids Research. 1 (36), 5-9 (2008).
  26. Fu, L., Niu, B., Zhu, Z., Wu, S., Li, W. CD-HIT: accelerated for clustering the next generation sequencing data. Bioinformatics. 28 (23), 3150-3152 (2012).
  27. Simão, F. A., Waterhouse, R. M., Ioannidis, P., Kriventseva, E. V., Zdobnov, E. M. BUSCO: assessing genome assembly and annotation completeness with single-copy orthologs. Bioinformatics. 31, 3210-3212 (2015).
  28. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 30, 2114-2120 (2014).
  29. Langmead, B., Salzberg, S. L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 9, 357-359 (2012).
  30. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25, 2078-2079 (2009).
  31. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biology. 15, 31 (2014).
  32. Rieu, I., Powers, S. J. Real-time quantitative RT-PCR: design, calculations, and statistics. Plant Cell. 21, 1031-1033 (2009).
  33. Malcolm, S. B. Chemical defence in chewing and sucking insect herbivores: plant-derived cardenolides in the monarch butterfly and oleander aphid. Chemoecology. 1, 12-21 (1990).
  34. Agrawal, A. A., Underwood, N., Stinchcombe, J. R. Intraspecific variation in the strength of density dependence in aphid populations. Ecological Entomology. 29, 521-526 (2004).
  35. Zehnder, C. B., Hunter, M. D. A comparison of maternal effects and current environment on vital rates of Aphis nerii, the milkweed-oleander aphid. Ecological Entomology. 32, 172-180 (2007).
  36. Hartbauer, M. Collective defense of Aphis nerii and Uroleucon hypochoeridis (Homoptera, Aphididae) against natural enemies. PLoS ONE. 5, 10417 (2010).

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Birnbaum, S. S., Rinker, D. C., Abbot, P. Maintaining Biological Cultures and Measuring Gene Expression in Aphis nerii: A Non-model System for Plant-insect Interactions. J. Vis. Exp. (138), e58044, doi:10.3791/58044 (2018).

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