Summary

Свинину как учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

Здесь мы представляем собой протокол для использования лоскут перфоратор превосходной эпигастральной артерии свиньи как учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции.

Abstract

Живой модели, которые напоминают хирургические условия людей необходимы для подготовки свободных лоскут заготовки и анастомоза. Животные модели для учебных целей были доступны для лет во многих хирургических областях. Мы использовали самка (потому что они просты в обращении для процедуры) Йоркшир свиней для реконструкции головы и шеи при уборке perforator глубоко нижней эпигастральной артерии или лоскут перфоратор превосходной эпигастральной артерии. Анастомоз сайта (дефект кожи шеи или дефект стенки трахеи) был подготовлен через диссекция общей сонной артерией и внутренней яремной вены, в котором 3,5 × Увеличение лупы был использован для анастомоза, как мы используем на случаи заболевания людей в реальной жизни. Данная процедура демонстрирует новый метод обучения, с использованием надежных обучения модели и предоставляет подробное анатомии в сценарии живой. Мы сосредоточились на время ишемии, сбора урожая, судно анастомоза и проектирование лоскут, чтобы поместиться на сайте дефекта. Эта модель улучшает обработку ткани и с применением надлежащих инструментов может повторяться много раз, так что хирург полностью уверены, перед началом операции на людях.

Introduction

Реконструкция после хирургии головы и шеи злокачественных заболеваний является сложной процедуры, связанной с значительным заболеваемости. Микроваскулярная бесплатно лоскут реконструкции была создана хорошо как стандартный подход к реконструкции для более чем 20 лет1,2,3. Бесплатно лоскут передачи играет значительную роль в улучшении управления головы и шеи в раковых больных и Посттравматические повреждения, тем самым раздвигая границы хирургическое иссечение болезни за пределами предыдущих методов, что приводит к большей пациента качество жизни и больше выживание ставки1,2,3. Различные клапаны для реконструкции включают вращения, взяточничество и свободной закрылки.

Расширилась роль свободного заслонки в реконструкции головы и шеи. Это наиболее сложных лоскут, чтобы работать с, требующих квалифицированной и деликатного обращения. Лоскут отказ является катастрофическое событие, с значительным заболеваемости4,5. Таким образом значительные учебного времени требуется для разработки точности, необходимой для успешного хирургического результаты3,4,5,6,,78, 9. Крутой кривой обучения, связанного с такой операции может повлиять на результаты для пациентов и влияют на лечение управления3,4,5,6,7, 8,9. Чтобы сократить время обучения и кривой обучения для новых хирургов, модель обучения необходима который имитирует биологии человека и обеспечивает аналогичные операционного поля условия8.

Цель этого исследования заключается в том, чтобы показать видимость свинину в качестве хорошей учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции, напоминающий человеческий случай с улучшение навыков в активной форме.

Это исследование изучали использование свинину модели для подготовки новых коллег в головы и шеи микрососудистой реконструкции для свободного лоскута передачи для обеспечения рентабельной и меньше стрессовых дополнение к клинической полевой подготовки с надежно аналогичные возможности для свободного лоскута процедур. Свиньи были использованы для многих исследований и обучения моделей для различных хирургических реконструкций, например, реконструкции груди; 5 однако, свиньи никогда не были использованы для реконструкции головы и шеи за исключением в нашем исследовании трахеи реконструкции благодаря стеноз трахеи10.

Идея была начата после Фредерик Бодин7, которые описывают аналогичный клапан для реконструкции груди. Главное преимущество для исследования над другой модуль микрососудистой обучения является активной livening модуль с реальной непосредственным результатом процедуры.

Protocol

Это исследование руководствовался и одобрены Департаментом лабораторных животных ресурсов, Йонсей биомедицинских научно-исследовательского института, Йонсейского университета медицинский колледж, аккредитованных в ассоциации оценки и аккредитации лабораторных животных уход Межд…

Representative Results

Мы выполнили процедуру на шесть свиней: реконструкция дефект шейки матки кожи на двух свиней, трахеи реконструкция двух свиней, и свободным лоскутом проверить устройство сосудистого анастомоза в двух свиней. Свиней наблюдали за 3 месяца, и нет никаких клинических приз…

Discussion

Значительные заболеваемости и дефекты могут произойти в голове и шеи во время хирургического лечения больных злокачественными опухолями. Микроваскулярная бесплатные ткани передачи стала необходимой для реконструкции в большинстве случаев. Жизнеспособность лоскут является одним из…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была финансируется и поддерживается базовой программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством науки, ИКТ и будущего планирования (2015R1C1A1A01051907). Эта работа была также поддерживается базовой программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством науки, ИКТ и будущего планирования (СР 2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

Referências

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
check_url/pt/58104?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

View Video