Summary

Een RVS Protocol voor hoge kwaliteit RNA isolatie van Laser vangen Microdissected Purkinje cellen in het menselijke Post Mortem Cerebellum

Published: January 17, 2019
doi:

Summary

Dit protocol maakt gebruik van een vlek-vrije benadering om te visualiseren en te isoleren Purkinje cellen in vers bevroren weefsel van menselijke post mortem cerebellum via laser vangt microdissection. Het doel van dit protocol is het genereren van voldoende hoeveelheden van hoogwaardige RNA voor RNA-sequencing.

Abstract

Laser vangt microdissection (LCM) is een voordelig hulpmiddel waarmee voor de collectie van cytologically en/of fenotypische relevante cellen of gebieden uit heterogene weefsels. Opgenomen product kan worden gebruikt in een verscheidenheid van moleculaire methoden voor eiwitten, DNA of RNA isolatie. Behoud van RNA van menselijke postmortem hersenweefsel is echter vooral een uitdaging. Standaard visualisatietechnieken voor LCM vereisen histologische of immunohistochemische kleuring procedures die verder kunnen degraderen RNA. Dus, we ontwierpen een RVS protocol voor visualisatie in LCM met het beoogde doel van het behoud van de integriteit van het RNA in post mortem menselijk hersenweefsel. Het Purkinje-cel van het cerebellum is een goede kandidaat voor RVS visualisatie, vanwege zijn omvang en karakteristieke locatie. De cerebellaire cortex heeft duidelijke lagen die in celdichtheid verschillen, waardoor ze een goede archetype te identificeren onder hoge vergroting microscopie. Purkinje cellen zijn grote neuronen, gelegen tussen de submodule cellaag, oftewel een dichtbevolkte cellulair netwerk van kleine neuronen, en de moleculaire laag, die is schaars in cel organen. Vanwege deze architectuur is het gebruik van roestvast staal visualisatie haalbaar. Andere orgaan of cel systemen die dit fenotype na te bootsen zou ook geschikt. Het RVS protocol is ontworpen voor vers bevroren weefsel herstellen met ethanol en verwijderen van lipiden met xyleen voor verbeterde morfologische visualisatie onder de lichte microscopie van hoge vergroting. Dit protocol houdt geen rekening met andere methoden fixatie en is speciaal ontworpen voor vers bevroren weefselsteekproeven gevangen met behulp van een ultraviolet (UV)-LCM systeem. Hier presenteren we een volledige protocol voor segmenteren en tot vaststelling van vers bevroren post mortem menselijk cerebellaire weefsel en zuivering van RNA van Purkinje cellen geïsoleerd door UV-LCM, met behoud van RNA kwaliteit voor latere RNA-sequencing. In onze handen, dit protocol uitzonderlijke niveau van cellulaire visualisatie zonder de noodzaak voor kleurstoffen produceert en levert RNA met hoge RNA integriteit nummers (≥8) zo nodig voor transcriptionele profiling experimenten.

Introduction

Laser vangt microdissection (LCM) is een waardevolle onderzoeksinstrument waarmee de scheiding van pathologisch relevante cellen voor moleculair gedreven evaluatie achteraf. Het gebruik van moleculaire analyses in deze specimens van heterogene weefsel en de correlatie met pathologische en klinische gegevens is een noodzakelijke stap bij de beoordeling van de translationeel betekenis van biologisch onderzoek1. Bij het analyseren van gen expressie gegevens uit RNA, het gebruik van bevroren weefselsecties wordt sterk aanbevolen omdat het zorgt voor uitstekende kwaliteit van RNA evenals hoeveelheid2gemaximaliseerd. Het is goed opgezet dat hoge kwaliteit en kwantiteit van RNA essentieel voor zinvolle gegevens van RNA sequencing3 zijn. Wanneer met RNA uit vers bevroren post mortem weefsel voor LCM, is aantasting van het RNA echter een grote uitdaging, aangezien het vindt onmiddellijk plaats bij overlijden en de omvang ervan is bemiddeld door verschillende factoren die samenhangen met het weefsel collectie methode4,5 . Bovendien is de aantasting van het RNA verergerd wanneer kleuring technieken nodig zijn om te herkennen van de histologische details en identificatie van de cel. Gespecialiseerd kleuring technieken, zoals de haematoxyline en eosine, Nissl vlek, immunofluorescentie en immunohistochemistry zijn behulpzaam bij het differentiëren van cellen van omliggende stroma maar hebben aangetoond dat degraderen van RNA en transcript expressie wijzigen profielen6. Ons laboratorium heeft daarom een RVS protocol specifiek ontworpen om te bewaren van RNA in post mortem menselijk cerebellum voor de toepassing van RNA sequencing na LCM Purkinje neuronen Isolatievan gemaakt.

Bij de verwerking van vers bevroren weefsel voor LCM, kan de methode fixatie variabel beïnvloeden zowel RNA en weefsel integriteit. Formaline fixatie is standaard voor morfologische behoud, maar oorzaken die dwarsbinding kunnen fragment van RNA en interfereren met RNA amplificatie7. Ethanol fixatie is een beter alternatief voor RNA isolatie, want het is een coagulative fixatief die niet toe cross-linking1 brengt er. Ter verhoging van de visualisatie van weefsel morfologie, is xyleen de beste keuze, zoals het lipiden uit het weefsel verwijdert. Echter, er zijn bekende beperkingen wanneer met behulp van xyleen in LCM, zoals de weefsels kunnen uitdrogen en broos waardoor weefsel fragmentatie op laser vastleggen7geworden. Xyleen is ook een vluchtige toxine en correct moet worden behandeld in een zuurkast. Xyleen heeft echter aangetoond dat weefsel visualisatie ook behoud van RNA integriteit8verbeteren. Daarom is ons protocol gecentreerd rond het gebruik van 70% ethanol fixatie en ethanol uitdroging, gevolgd door xyleen broedtijd morfologische duidelijkheid.

Het is belangrijk op te merken van de verschillende soorten microdissection laser gebaseerde systemen, zoals ze verschillen in snelheid, precisie en kwaliteit van RNA is gebleken. De infrarood (IR) laser vastleggen van microdissection en het ultraviolette (UV) microbeam microdissection lasersystemen waren beide roman LCM-platforms die ontstaan bijna gelijktijdig8. De IR-LCM-systeem maakt gebruik van een “contact systeem” met behulp van een transparante kunststof film rechtstreeks op de weefselsectie geplaatst, en cellen van belang zich selectief aan de film door gerichte pulsen van een IR-laser. U kunt ook is de UV-LCM-systeem een “contactloze systeem” waarbij een gerichte laserstraal weg de cellen of de regio’s van belang in het weefsel snijdt; afhankelijk van de configuratie in twee momenteel beschikbare commerciële platforms die gebruik maken van ofwel een omgekeerde of rechtop Microscoop ontwerp, weefsel is verworven in een collectie apparaat door een laser-geïnduceerde druk golf die het tegen de zwaartekracht katapulten of weefsel is verzameld door de zwaartekracht, respectievelijk. Belangrijke voordelen van het UV-LCM-systeem zijn snellere cel acquisitie, verontreiniging-gratis-collectie met de contactloze aanpak en nauwkeuriger dissectie als gevolg van een veel kleinere laser beam diameter9. Dit protocol werd speciaal ontworpen voor een UV-LCM-systeem en is niet getest in een IR-LCM-systeem. In het ontwerp van het systeem van beide UV-LCM, wanneer accumuleren cellen in het GLB van de verzameling, het gebruik van een dekglaasje aan die verbetert de is cellulaire duidelijkheid tijdens microscopie niet geschikt, zoals de cellen zou kunnen aangaan van het GLB van de collectie. Daarom, om weefsel visualisatie te verbeteren, we testten het gebruik voor dekkende verzameling caps, die zijn ontworpen om te fungeren als een dekglaasje aan voor microscopische visualisatie in UV-LCM systemen, tegen vloeistof gevulde collectie caps. Vloeistof gevulde collectie caps kunnen lastig zijn, als de vloeistof onderworpen aan verdamping is en moet regelmatig worden vervangen terwijl het werken bij en met de Microscoop. Tijd wordt een belangrijke factor voor de stabiliteit van het RNA, zoals het vastgelegde weefsel onmiddellijk7 lost.

Ons laboratorium studies de postmortem neuropathologic veranderingen in het cerebellum van patiënten met essentiële tremor (ET) en verwante neurodegeneratieve aandoeningen van het cerebellum. We hebben bewezen morfologische veranderingen gecentreerd op Purkinje-cellen die het onderscheiden van ET gevallen ten opzichte van de besturingselementen, met inbegrip van een verminderd aantal Purkinje cellen, verhoogd dendritische regressie en een verscheidenheid van axonale veranderingen, leidt ons om te postuleren dat Purkinje cel degeneratie is een biologische functie van de kern in ET pathogenese10,11,12,13. Transcriptionele profilering is gebruikt in vele neurologische ziekten te verkennen van de onderliggende moleculaire basis van degeneratieve cellulaire veranderingen. Echter transcriptionele profielen uit heterogene monsters, zoals weefsel hersengebieden, kunnen effectually maskeren de uitdrukking van lage overvloed transcripten en/of verminderen de detectie van moleculaire veranderingen die alleen in een kleine populatie van waarin dit probleem optreedt optreden cellen, zoals Purkinje cellen in de cerebellaire cortex. Bijvoorbeeld, Purkinje cellen zijn enorm in de minderheid door de overvloedige submodule cellen in de cerebellaire cortex door ongeveer 1:3000; dus effectief richten vereist hun transcriptome specifieke isolatie van deze neuronen. De cerebellaire cortex is afgebakend door verschillende lagen die in de celdichtheid en celgrootte verschillen. Deze cellulaire architectuur is ideaal om te visualiseren in een monster van de vers bevroren weefsel zonder kleurstof bevattende kleuring reagentia. In theorie kan dit protocol ook worden toegepast op andere weefseltypes (HLA) die soortgelijke onderscheidend weefsel hebben organisatie.

Dit protocol werd ontworpen om werk speciaal voor Purkinje cel visualisatie in het cerebellum van menselijke post-mortem. Er zijn talrijke protocollen voor de fixatie, visualisatie en RNA behoud van vele soorten weefsels ten behoeve van zowel IR – en UV-LCM kleuring. Wanneer overweegt een proefopzet voor UV-LCM, moeten individuen hun protocol om het beste passen bij de behoeften en eisen van de begin- en einddatum van de materialen op maat. Hier combineren we vele aspecten van verschillende LCM protocollen om te zorgen voor een verbeterde methode voor het visualiseren van Purkinje cellen in het post mortem menselijk cerebellum zonder de noodzaak van kleurstof bevattende kleuring reagentia voor te bereiden op kwalitatief hoogwaardige RNA transcriptome sequencing.

Protocol

Alle menselijke specimens die in dit protocol wordt gebruikt met geïnformeerde toestemming hebben verkregen en zijn goedgekeurd door de interne Review Board (IRB) aan Columbia University en aan Yale University. Opmerking: Het geheel van dit protocol moet volgen strikte RNA behandeling richtlijnen, waarbij een gehandschoende hand altijd wordt gebruikt, alle oppervlakken worden gereinigd met een RNase waterbasis en alle werken materialen RNA/DNA/Nuclease gratis zijn. <p cla…

Representative Results

Dit protocol detailleert de stappen voor het voorbereiden van vers bevroren post mortem menselijk hersenweefsel voor UV-LCM. Grondig specificaties en aantekeningen worden gegeven voor het snijden van de cryostaat, als het kan moeilijk zijn om te snijden vers bevroren hersenweefsel met een hoge mate van precisie. Het belangrijkste punt om te overwegen is dat vers bevroren weefsel extreem koude is en vereist een aanzienlijke hoeveelheid tijd om te acclimatiseren aan de warmere temperatuur v…

Discussion

Het protocol hier gepresenteerd is speciaal aangepast om een RVS aanpak in het visualiseren van morfologisch verschillende weefsels voor UV-LCM. Deze methode is ontworpen om te maximaliseren RNA integriteit voor latere directe RNA sequencing, met behoud van een hoger beveiligingsniveau van weefsel visualisatie. Het vermogen om te onderscheiden van de verschillende soorten cellen voor het vastleggen, maken de zuiverste bevolking van cellen mogelijk, is van essentieel belang voor het begrijpen van de verschillende Molecula…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs wil erkennen de hersenen van de New York Bank, Dr. Jean Paul Vonsattel en Dr. Etty Cortés, voor hun hulp bij het snijden en het behoud van de bevroren menselijk brein weefselmonsters voor deze experimenten. De auteurs wil erkennen de personen die gul gedoneerd hun hersenen voor de voortdurende onderzoek in essentiële Tremor. Dr. Faust en Dr. Martuscello wil erkennen van Columbia University afdeling pathologie en celbiologie voor hun voortdurende steun en kern onderzoekruimte. De auteurs wil erkennen NIH R01 NS088257 Louis/Faust) voor de financiering van onderzoek voor dit project. LCM beelden werden uitgevoerd in de Confocal en gespecialiseerd microscopie gedeelde Resource van de Herbert Irving uitgebreide Cancer Center aan de Columbia University, ondersteund door de NIH grant #P30 CA013696 (National Cancer Institute). De auteurs wil Theresa Swayne en Laura Munteanu erkennen voor hun voortdurende steun met gespecialiseerde microscopie.

Materials

MembraneSlide NF 1.0 PEN Zeiss 415190-9081-000 Membrane slides for tissue. We do not recommend using glass slides. 
AdhesiveCap 500 Opaque Zeiss 415190-9201-000 Opaque caps are used to enhance visualization on inverted scopes only
RNase Away Molecular BioProducts 7005-11 Other RNase decontamination products are also suitable. Use to clean all surfaces prior to work. 
200 Proof Ethanol Decon Laboratories 2701 If using alternative Ethanol, ensure high quality. Essential for tissue fixation. 
Xylenes (Certified ACS) Fisher Scientific X5P-1GAL If using alternative xylene, ensure high quality. Essential for tissue visualization. 
UltraPure Distilled Water Invitrogen 10977-015 Other RNA/DNA/Nuclease free water also suitable. Utilized in ethanol dilution only. 
Slide-Fix Slide Jars Evergreen 240-5440-G8K Any slide holder/jar is also suitable. Must be cleaned prior to use. Used for fixation following sectioning. 
Anti-Roll Plate, Assy. 70mm 100um Leica Biosystems 14041933980 Anti-roll plate type is determined by type of cryostat and attachment location on stage. All cryostats have differing requirements. 
Diethyl pyrocarbonate (DEPC) Sigma Aldrich D5758-50mL DEPC from any vendor will do. Follow directions for water treatment. 
Kimwipes Fisher Scientific 06-666A Kimwipes can be ordered from any vendor and used at any size. Kimwipes are to be used to clean microscope and cryostat. 
Tissue-Plus O.C.T. Compound Fisher Scientific 23-730-571 Any brand of OCT is acceptable. No tissue will be embedded in the OCT, it is strickly to attach tissue to 'chuck'. 
Edge-Rite Low-Profile Microtome Blades Thermo Scientific 4280L Blade type is determined by type of cryostat. All cryostats have differing requirements. 
Leica Microsystems 3P 25 + 30MM CRYOSTAT CHUCKS Fisher Scientific NC0558768 Chuck type is determined by type of cryostat. All cryostats have different requirements. Either size is suitable. 
RNeasy Micro Kit (50) Qiagen 74004 Required for RNA extraction post LCM. RLT Lysis buffer essential to gather captured cells from opaque cap. 
RNeasy Mini Kit (50) Qiagen 74104 Required for RNA extraction of section preps, which are performed prior to LCM to test RNA integrity of starting tissues. 
RNase-Free DNase Set Qiagen 79254 Dnase will remove any DNA to allow for a pure RNA population. Ensure Dnase is made fresh. 
2-Mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250-100ML Purchased volume at user discretion. Necessary for addition to RLT buffer for cell lysis. Prevents RNase activity. 
Globe Scientific Lot Certified Graduated Microcentrifuge Tube (2 mL) Fisher Scientific 22-010-092 Any 2 mL tube that is RNase free, DNase free, human DNA free, and Pyrogen free will do. 

Referências

  1. Liu, H., et al. Laser capture microdissection for the investigative pathologist. Veterinary Pathology. 51 (1), 257-269 (2014).
  2. Datta, S., et al. Laser capture microdissection: Big data from small samples. Histology and Histopathology. 30 (11), 1255-1269 (2015).
  3. Romero, I. G., Pai, A. A., Tung, J., Gilad, Y. RNA-seq: impact of RNA degradation on transcript quantification. BMC Biology. 12 (42), 1-13 (2014).
  4. Bevilacqua, C., Ducos, B. Laser microdissection: A powerful tool for genomics at cell level. Molecular Aspects Medicine. 59, 5-27 (2018).
  5. Sidova, M., Tomankova, S., Abaffy, P., Kubista, M., Sindelka, R. Effects of post-mortem and physical degradation on RNA integrity and quality. Biomolecular Detection and Quantification. 5, 3-9 (2015).
  6. Wang, H., et al. Histological staining methods preparatory to laser capture microdissection significantly affect the integrity of the cellular RNA. BMC Genomics. 7, 97 (2006).
  7. Mahalingam, M., Murray, G. I. . Laser Capture Microdissection: Methods and Protocols. , (2018).
  8. Vandewoestyne, M., et al. Laser capture microdissection: should an ultraviolet or infrared laser be used. Analytical Biochemistry. 439 (2), 88-98 (2013).
  9. Graeme, M. I. . Laser Capture Microdissection. Third edn. , (2018).
  10. Louis, E. D. Re-thinking the biology of essential tremor: From models to morphology. Parkinsonism & Related Disorders. 20, 88-93 (2014).
  11. Choe, M., et al. Purkinje cell loss in essential tremor: Random sampling quantification and nearest neighbor analysis. Movement Disorders. 31 (3), 393-401 (2016).
  12. Louis, E. D., et al. Neuropathological changes in essential tremor: 33 cases compared with 21 controls. Brain. , 3297-3307 (2007).
  13. Louis, E. D., et al. Neuropathologic findings in essential tremor. Neurology. 13 (66), 1756-1759 (2006).
  14. Schroeder, A., et al. The RIN: an RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Molecular Biology. 7, 3 (2006).
  15. Jensen, E. Laser Capture Microdissection. The Anatomical Record. (296), 1683-1687 (2013).
  16. Waller, R., et al. Isolation of enriched glial populations from post-mortem human CNS material by immuno-laser capture microdissection. Journal of Neuroscience Methods. 208 (2), 108-113 (2012).
  17. Lee, S., et al. Laser-capture microdissection and transcriptional profiling of the dorsomedial nucleus of the hypothalamus. Journal of Comparative Neurology. 520 (16), 3617-3632 (2012).
  18. Cummings, M., et al. A robust RNA integrity-preserving staining protocol for laser capture microdissection of endometrial cancer tissue. Analytical Biochemistry. 416 (1), 123-125 (2011).
  19. Sonne, S. B., et al. Optimizing staining protocols for laser microdissection of specific cell types from the testis including carcinoma in situ. PLoS One. 4 (5), 5536 (2009).
  20. Butler, A. E., et al. Recovery of high-quality RNA from laser capture microdissected human and rodent pancreas. Journal of Histotechnology. 39 (2), 59-65 (2016).
  21. Schuierer, S., et al. A comprehensive assessment of RNA-seq protocols for degraded and low-quantity samples. BMC Genomics. 18 (1), 442 (2017).
  22. Kumar, A., et al. Age-associated changes in gene expression in human brain and isolated neurons. Neurobiology of Aging. 34 (4), 1199-1209 (2013).
  23. Sampaio-Silva, F., Magalhaes, T., Carvalho, F., Dinis-Oliveira, R. J., Silvestre, R. Profiling of RNA degradation for estimation of post mortem [corrected] interval. PLoS One. 8 (2), 56507 (2013).
  24. Walker, D. G., et al. Characterization of RNA isolated from eighteen different human tissues: results from a rapid human autopsy program. Cell Tissue Bank. 17 (3), 361-375 (2016).
  25. Birdsill, A. C., Walker, D. G., Lue, L., Sue, L. I., Beach, T. G. Postmortem interval effect on RNA and gene expression in human brain tissue. Cell Tissue Bank. 12 (4), 311-318 (2011).
  26. Adiconis, X., et al. Comparative analysis of RNA sequencing methods for degraded or low-input samples. Nature Methods. 10 (7), 623-629 (2013).
  27. Parekh, S., Ziegenhain, C., Vieth, B., Enard, W., Hellmann, I. The impact of amplification on differential expression analyses by RNA-seq. Scientific Reports. 6, 25533 (2016).
  28. . . Carl Zeiss Microscopy. , (2012).
check_url/pt/58953?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Martuscello, R. T., Louis, E. D., Faust, P. L. A Stainless Protocol for High Quality RNA Isolation from Laser Capture Microdissected Purkinje Cells in the Human Post-Mortem Cerebellum. J. Vis. Exp. (143), e58953, doi:10.3791/58953 (2019).

View Video