Summary

Модель in экстракорпоральное для изучения агрегация Тау с использованием ленто-вирусно-опосредованное производство нейронов человека

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

Этот протокол детализирует процедуру, в которой нейронные культуры человека преобразуются с лентивирусными конструкциями, кодирующие для мутантного человека Тау. Трансдуктед культур отображения Тау агрегатов и сопутствующих патологий.

Abstract

Аберрантное агрегирование белка Тау патогенично участвует в ряде нейродегенеративных заболеваний, включая болезнь Альцгеймера (AD). Хотя мышиные модели толопатии предоставили ценный ресурс для исследования нейротоксических механизмов агрегированного Тау, становится все более очевидным, что из-за межвидовой разницы в нейрофизиологии, мозг мыши непригоден для моделирования состояния человека. Достижения в области клеточной культуры сделали человека нейрональных культур доступны для экспериментального использования в пробирке и способствовали развитию нейротерапии. Однако, несмотря на адаптацию человеческих нейрональных клеточных культур, в пробирке модели человеческой таулопатии еще не широко доступны. Этот протокол описывает клеточную модель агрегации Тау, в которой человеческие нейроны преобразуются с лентивирусными векторами, которые кодируют патогенически мутировавшего Тау, сплавленного в репортера желтого флуоресцентного белка (YFP). Трансдукд культур производят Тау агрегатов, что пятно положительно для тиофлавина и отображения маркеров нейротоксичности, такие как снижение длины аксонов и увеличение лизосомальный объем. Данная процедура может быть полезной и рентабельной моделью для изучения человеческих тауопатий.

Introduction

Патологическая агрегация микротрубочек связанных белка Тау является определяющей чертой многих нейродегенеративных заболеваний, в том числе AD, фронтовисочной деменции (FTD), болезнь пика, и прогрессивный надъядерного паралич (PSP)1. В небольное состояние, Тау связывается и стабилизирует микротрубочек нитей в нейрональных аксонов2. Однако, связанное с болезнью гиперфосфорилирование Тау способствует агрегацию Тау, диссоциации из микротрубочек и нейрональной токсичности3. Токсическое воздействие агрегированного Тау может включать аномальную активацию холинергических4 и глутаматергических рецепторов5 , приводящее к регуляции внутриклеточного кальция и, в конечном счете, клеточной смерти. В моделях животных, снижение мозга Тау улучшает патологии в мышах AD6 и в мышах моделей повторяющихся мягкой черепно-мозговой травмой7.

Монтаж доказательств свидетельствует о том, что структура и обязательным сродство мыши полученных Тау отличаются от человека, полученных Тау и что мышь Тау непригодна для моделирования человеческих тауопатий8. Тем не менее, человеческие клетки таулопатии модели не являются широко коммерчески доступными. Общая цель этой работы состоит в том, чтобы описать в пробирке модель агрегация Тау, в которой человеческие нейроны преобразуются с лентивирусных производных векторов, содержащих мутантные человеческие конструкции Тау9. Тау совокупности вызывает лентивирусные конструкции кодирует для Тау повторить домен укрывательство P301L и V337M мутаций, слиты с корреспондентом YFP (Тау-RDDM-YFP), а Управление строит код для дикого типа (ДФ) Тау повторить домен сливается с репортер YFP (Тау-т-YFP). Нейронные культуры трансдукты с помощью этого метода выражают примерно в девять раз больше Тау, чем нетрансдукты культур. Хотя количество выражения Тау чрезмерно выражено примерно равным между Тау-РДМ-ИФФ-и Тау-т-ЗПС-трансдукзные клетки, только нейроны трансдукты с дисплеем Тау-РДМ-YFP агрегаты. Культур преобразователи с Тау-РДМ-YFP пятно положительно для тиофлавина и отображения сокращений в аксональной длины и синаптической плотности. Таким образом, эта клеточная модель может быть полезным инструментом для изучения агрегация Тау в пробирке.

Protocol

1. подготовка средств массовой информации и реагентов Оттепель матричных Мембранные покрытия для культуры пластин при температуре 4 ° c (не позволяйте матрице фундамента мембраны, чтобы согреться или он затвердеет). Сделайте 1 mL aliquототы и храните их при температуре-20 °C или-70 ° c. <…

Representative Results

Тау-РДМ-ИФФ-трансдукдированные нейроны были маркированные с помощью YFP, а РДМ-трансдукдированные культуры отображены агрегатами после транспроизводство. Эти включения окрашиваются в положительную для тиофлавина (рис. 1). Как показано на рисунке 1 , этот п…

Discussion

Этот протокол описывает поколение в пробирке модель человеческой тауопатии, что экспонаты серебра-пятно-позитивные агрегаты и Тиофлавин-положительных нейрофибриллярных связок (Нфтс). Кроме того, трансдукты клеток отображения Тау-индуцированных патологий, таких как морфологические д…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить д-р Питер Дэвис в Альберт Эйнштейн колледж медицины для поставки PHF-1 и CP13 антител и д-р Марк Diamond в Техасском университете, Юго-Западный, за предоставление Тау конструкций. Эта работа была поддержана гранты Ассоциации Альцгеймера (НИРГ-14-322164) в С.Х.И. и из Калифорнийского института регенеративной медицины (TB1-01193) для PR

Materials

10 cm culture dishes Thermofisher 12556002
15 ml tubes Biopioneer CNT-15
16% paraformaldehyde Thermofisher 50-980-487
24 well culture plates Thermofisher 930186
50ml tubes Biopioneer CNT-50
70% ethanol in spray bottle Various sources NA
B27 supplement Thermofisher 17504044
Basement membrane matrix (Matrigel) Corning 356231
Basic FGF Biopioneer HRP-0011
Bovine serum albumin Sigma A7906
Cell culture incubator Various sources NA
Centrifuge Various sources NA
DMEM-F12 culture media with glutamine Thermofisher 10565042
Ethanol (50% concentration or higher) Various sources NA
Flourescently labeled secondary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Fluorescent microscope Various sources NA
Glass coverslips Thermofisher 1254581
Glass slides Thermofisher 12-550-15
Human neural stem cells Various sources NA
Lentiviral vectors Various sources custom order
Mounting media Thermofisher P36934
N2 supplement Thermofisher 17502048
Penicillin-Streptomycin Thermofisher 15140122
Phosphate buffered saline Thermofisher 14190250
Primary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Rocking or rotating platform Various sources NA
Sterile cell culture hood Various sources NA
Thioflavin S Sigma T1892-25G
Triton X-100 Thermofisher BP151-100
Water bath Various sources NA

Referências

  1. Rojas, J. C., Boxer, A. L. Neurodegenerative disease in 2015: Targeting tauopathies for therapeutic translation. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 74-76 (2016).
  2. Kadavath, H., et al. Tau stabilizes microtubules by binding at the interface between tubulin heterodimers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (24), 7501-7506 (2015).
  3. Wang, Y., Mandelkow, E. Tau in physiology and pathology. Nature Reviews Neurology. 17 (1), 5-21 (2016).
  4. Gomez-Ramos, A., et al. Characteristics and consequences of muscarinic receptor activation by tau protein. European Neuropsychopharmacology. 19 (10), 708-717 (2009).
  5. Warmus, B. A., et al. Tau-mediated NMDA receptor impairment underlies dysfunction of a selectively vulnerable network in a mouse model of frontotemporal dementia. Journal of Neuroscience. 34 (49), 16482-16495 (2014).
  6. DeVos, S. L., et al. Tau reduction in the presence of amyloid-beta prevents tau pathology and neuronal death in vivo. Brain. 141 (7), 2194-2212 (2018).
  7. Cheng, J. S., et al. Tau reduction diminishes spatial learning and memory deficits after mild repetitive traumatic brain injury in mice. PLOS ONE. 9 (12), e115765 (2014).
  8. Ando, K., et al. Accelerated human mutant tau aggregation by knocking out murine tau in a transgenic mouse model. The American Journal of Pathology. 178 (2), 803-816 (2011).
  9. Reilly, P., et al. Novel human neuronal tau model exhibiting neurofibrillary tangles and transcellular propagation. Neurobiology of Disease. 106, 222-234 (2017).
  10. Kfoury, N., Holmes, B. B., Jiang, H., Holtzman, D. M., Diamond, M. I. Trans-cellular Propagation of Tau Aggregation by Fibrillar Species. The Journal of Biological Chemistry. 287 (23), 19440-19451 (2012).
  11. Yuan, S. H., et al. Cell-surface marker signatures for the isolation of neural stem cells, glia and neurons derived from human pluripotent stem cells. PLOS ONE. 6 (3), e17540 (2011).
  12. Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging human neural stem cells. Journal of Visualized Experiments. (7), e263 (2007).
  13. Lathuiliere, A., et al. Motifs in the tau protein that control binding to microtubules and aggregation determine pathological effects. Scientific Reports. 7 (1), 13556 (2017).
  14. Asai, H., et al. Depletion of microglia and inhibition of exosome synthesis halt tau propagation. Nature Neuroscience. 18 (11), 1584-1593 (2015).
check_url/pt/59433?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Aulston, B., Liu, Q., Reilly, P., Yuan, S. H. An In Vitro Model for Studying Tau Aggregation Using Lentiviral-mediated Transduction of Human Neurons. J. Vis. Exp. (147), e59433, doi:10.3791/59433 (2019).

View Video