Spectral Imaging har blitt en pålitelig løsning for identifisering og separasjon av flere fluorescens signaler i en enkelt prøve og kan lett skille signaler av interesse fra bakgrunn eller autofluorescence. Eksitasjon-skanning hyperspektral Imaging forbedrer på denne teknikken ved å redusere den nødvendige bildet oppkjøpet tid samtidig øke signal-til-støy-forhold.
Flere teknikker er avhengige av påvisning av fluorescens signaler for å identifisere eller studere fenomener eller belyse funksjoner. Separasjon av disse fluorescens signalene ble påvist tungvint inntil advent av hyperspektral Imaging, der fluorescens kilder kan skilles fra hverandre så vel som fra bakgrunnen signaler og autofluorescence (gitt kjennskap til deres Spectral signaturer). Imidlertid, tradisjonell, utstråling-skanning hyperspektral tenkelig lide fra langsom oppkjøpet timene og lav signal-å-bråk forhold på grunn av det på krevd filterene av begge to eksitasjon og utstråling lyset. Det har tidligere vist at eksitasjon hyperspektral Imaging reduserer nødvendig anskaffelsestid samtidig øke signal-til-støy ratio av ervervet data. Ved hjelp av kommersielt tilgjengelig utstyr, beskriver denne protokollen hvordan å montere, kalibrere, og bruke et eksitasjon-skanning hyperspektral Imaging mikroskopi system for separasjon av signaler fra flere fluorescens kilder i en enkelt prøve. Mens svært aktuelt for mikroskopisk bildebehandling av celler og vev, denne teknikken kan også være nyttig for alle typer eksperiment utnytte fluorescens der det er mulig å variere eksitasjon bølgelengder, inkludert men ikke begrenset til: kjemisk Imaging, miljø applikasjoner, øye pleie, mat vitenskap, rettsmedisinske vitenskap, medisinsk vitenskap, og mineralogi.
Spectral Imaging kan utføres på en rekke måter, og er referert til av flere termer1,2,3,4. Vanligvis refererer Spectral Imaging til data ervervet i minst to romlige dimensjoner og en Spectral dimensjon. Multispectral og hyperspektral bilde er oftest preget av antall bølgelengde bånd eller om Spectral band er sammenhengende1. For dette programmet er hyperspektral data definert som Spectral data ervervet med sammenhengende bølgelengde band oppnås ved avstand fra sentrum bølgelengder ikke mindre enn halvparten av full bredde ved halv maksimal (FWHM) av hvert båndpassfilter som brukes for eksitasjon (dvs. 5 NM senter bølgelengde avstand for bånd pass filtre med 14-20 NM båndbredder). Sammenhengende natur av data båndene tillater en oversampling av datasettet, slik at Nyquist kriterier er oppfylt når prøvetaking av Spectral domenet.
Hyperspektral Imaging ble utviklet av NASA på 1970-og 1980-tallet i forbindelse med den første Landsat satellitten5,6. Innsamling av data fra flere sammenhengende Spectral band tillot generering av et utstråling spektrum av hver piksel. Identifisere og definere stråleglans spekteret av individuelle komponenter gjorde det mulig å ikke bare oppdage overflate materialer av deres karakteristiske Spectra, men det også tillatt for fjerning av mellomliggende signaler, for eksempel variasjoner i signalet på grunn av atmosfæriske forhold. Konseptet med å påvise materialer ved hjelp av deres karakteristiske Spectra ble brukt på biologiske systemer i 1996, da Schröck et al. brukte kombinasjoner av fem forskjellige fluorophores og deres kjent Spectra å skille merket kromosomer i en prosess betegnes Spectral karyotyping7. Denne teknikken ble utarbeidet på 2000 av Tsurui et al. for fluorescens avbildning av vevsprøver, ved hjelp av syv fluorescerende fargestoffer og en talls verdi nedbryting for å oppnå Spectral separasjon av hver piksel i lineære kombinasjoner av Spectra i referansen bibliotek8. I likhet med sine eksterne sensing motstykker, kan bidraget til hver kjente fluoroforen beregnes fra hyperspektral bildet, gitt a priori informasjon av spekteret av hver fluoroforen.
Hyperspektral Imaging har også blitt brukt i områdene landbruk9, astronomi10, biomedisin11, Chemical Imaging12, miljømessige applikasjoner13, Eye Care14, mat Science15, Forensic Science16,17, Medical Science18, mineralogi19, og overvåkning20. En nøkkel begrensning av gjeldende fluorescens mikroskop hyperspektral Imaging systemer er at standard hyperspektral Imaging teknologi isolerer fluorescens signaler i trange bånd med 1) først filtrere eksitasjon lys for å kontrollere prøven eksitasjon, deretter 2) ytterligere filtrering slippes lys for å skille fluorescens utslipp til smale band som senere kan skilles matematisk21. Filtrering både eksitasjon belysning og slippes fluorescens reduserer mengden tilgjengelig signal, som senker signal-til-støy-forhold og nødvendiggjør lengre oppkjøp ganger. Den lave signal og lange oppkjøpet ganger begrense anvendelsen av hyperspektral Imaging som et diagnostisk verktøy.
En Imaging modalitet er utviklet som gjør bruk av hyperspektral Imaging men øker tilgjengelig signal, og dermed redusere den nødvendige oppkjøpet tid21,22. Denne nye modalitet, kalt eksitasjon-skanning hyperspektral Imaging, kjøper Spectral bildedata ved å variere eksitasjon bølgelengde og samle et bredt spekter av slippes ut lys. Det har tidligere vist at denne teknikken gir størrelsesordener økninger i signal-til-støy-forhold i forhold til utslipps skanning teknikker21,22. Økningen i signal-til-støy-forhold er i stor grad på grunn av den brede bånd pass (~ 600 NM) av utslipps lyset oppdaget, mens spesifisitet er gitt ved å filtrere bare eksitasjon lys i stedet for fluorescens utslipp. Dette gjør at alle slippes lys (for hver eksitasjon bølgelengde) for å nå detektoren21. I tillegg kan denne teknikken brukes til å diskriminere autofluorescence fra eksogene etiketter. Videre kan evnen til å redusere anskaffelses tiden på grunn av økt synlig signal reduserer faren for photobleaching i tillegg til at Spectral skanner på en anskaffelses hastighet som er akseptabelt for Spectral video Imaging.
Målet med denne protokollen er å tjene som en datainnsamling guide for eksitasjon-skanning hyperspektral Imaging mikroskopi. I tillegg er beskrivelser inkludert som bidrar til å forstå lys banen og maskinvaren. Også beskrevet er gjennomføringen av åpen kildekode-programvare for en eksitasjon-skanning hyperspektral Imaging mikroskop. Til slutt, beskrivelser er gitt for hvordan du skal kalibrere systemet til en NIST-sporbar standard, justere programvare og maskinvare for nøyaktige resultater, og unmix det oppdagede signalet inn bidrag fra enkelte komponenter.
Den optimale bruken av et hyperspektral bildeoppsett med eksitasjon skanning begynner med byggingen av lys banen. Spesielt valg av lyskilde, filtre (tunable og dichroic), filter veksling metoden, og kameraet bestemme tilgjengelig Spectral Range, mulig skannehastighet, detektor følsomhet, og romlig prøvetaking. Mercury Arc lamper tilbyr mange eksitasjon bølgelengde topper, men gir ikke en flat Spectral output og vil kreve betydelig signal reduksjon ved utgangs toppene for å korrigere Spectral bildedata tilbake til en …
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne vil gjerne erkjenne støtte fra NSF 1725937, NIH P01HL066299, NIH R01HL058506, NIH S10OD020149, NIH UL1 TR001417, NIH R01HL137030, AHA 18PRE34060163, og Abraham Mitchell Cancer Research Fund.
Airway Smooth Muscle Cells | National Disease Research Interchange (NDRI) | Isolated from human lung tissues obtained from NDRI | Highly autofluorescent, calcium sensitive cells |
Automated Shutter | Thorlabs Inc. | SHB1 | Remote-controllable shutter to minimize photobleaching |
Automated Stage | Prior Scientific | H177P1T4 | Remote-controllable stage for automated multiple field of view or stitched image collection. |
Automated Stage Controller (XY) | Prior Scientific | Proscan III (H31XYZE-US) | For interfacing automated stage with computer and joystick |
Buffer | Made in-house | Made in-house | 145 mM NaCl, 4 mM KCl, 20 mM HEPES, 10 mM D-glucose, 1 mM MgCl2, and 1mM CaCl2, at pH 7.3 |
Cell Chamber | ThermoFisher Scientific | Attofluor Cell Chamber, A7816 | Coverslip holder composed of surgical stainless steel and a rubber O-ring to seal in media and prevent sample and/or objective contamination |
Excitation Filters | Semrock Inc. | TBP01-378/16 | Center wavelength range (340-378 nm), Bandwidth (Minimum 16 nm, nominal FWHM 20 nm), Refractive index (1.88) |
Semrock Inc. | TBP01-402/16 | Center wavelength range (360-400 nm), Bandwidth (Minimum 16 nm, nominal FWHM 20 nm), Refractive index (1.8) | |
Semrock Inc. | TBP01-449/15 | Center wavelength range (400-448.8 nm), Bandwidth (Minimum 15 nm, nominal FWHM 20 nm), Refractive index (1.8) | |
Semrock Inc. | TBP01-501/15 | Center wavelength range (448.8-501.5 nm), Bandwidth (Minimum 15 nm, nominal FWHM 20 nm), Refractive index (1.84) | |
Semrock Inc. | TBP01-561/14 | Center wavelength range (501.5-561 nm), Bandwidth (Minimum 14 nm, nominal FWHM 20 nm), Refractive index (1.83) | |
Fluorescence Filter Cube Dichroic Beamsplitter | Semrock Inc. | FF495-Di03 | Separates excitation and emission light at 495 nm (>98% reflection between 350-488 nm, >93% transmission between 502-950 nm), Filter effective index (1.78) |
Fluorescence Filter Cube Longpass Filter | Semrock Inc. | FF01 496/LP-25 | Allows passage of light longer than 496 nm ( >93% average transmission between 503.2-1100 nm), Refractive index (1.86) |
GCaMP Probe | Addgene | G-CaMP3; Plasmid #22692 | A single-wavelength GCaMP2-based genetically encoded calcium indicator |
Integrating Sphere | Ocean Optics | FOIS-1 | Used for accurate measurement of wide-angle illumination |
Inverted Fluorescence Microscope | Nikon Instruments | TE2000 | Inverted microscopes allow direct excitation of sample without the need to penetrate layers of media and/or tissue. |
Mitotracker Green FM | ThermoFisher Scientific | M7514 | Labels mitochondria |
NIST-Traceable Calibration Lamp | Ocean Optics | LS-1-CAL-INT | A lamp with a known spectrum for use as a standard |
NIST-Traceable Fluorescein | ThermoFisher Scientific | F36915 | For verifying appropriate spectral response of the system |
NucBlue | ThermoFisher Scientific | R37605 | Labels cell nuclei |
Objective (10X) | Nikon Instruments | Plan Apo λ 10X/0.45 ∞/0.17 MRD00105 | Useful for large fields of view |
Objective (20X) | Nikon Instruments | Plan Apo λ 20X/0.75 ∞/0.17 MRD00205 | Most often used for tissue samples |
Objective (60X) | Nikon Instruments | Plan Apo VC 60X/1.2 WI ∞/0.15-0.18 WD 0.27 | Most often used for cell samples |
sCMOS Camera | Photometrics | Prime 95B (Rev A8-062802018) | For acquiring high-sensitivity digital images |
Spectrometer | Ocean Optics | QE65000 | Used to measure spectral output of excitation-scanning spectral system |
Tunable Filter Changer | Sutter Instrument | Lambda VF-5 | Motorized unit for automated excitation filter tuning/switching |
Xenon Arc Lamp | Sunoptic Technologies | Titan 300HP Lightsource | Light source with relatively uniform spectral output |