Summary

Kwantificering van tumorcelhechting in cryosecties lymfeklieren

Published: February 09, 2020
doi:

Summary

Hier beschrijven we een eenvoudige en goedkope methode die het mogelijk maakt de kwantificering van lijmtumorcellen naar lymfeklier (LN) cryosecties. LN-aanhangende tumorcellen worden gemakkelijk geïdentificeerd door lichtmicroscopie en bevestigd door een fluorescentiegebaseerde methode, waardoor een adhesie-index wordt gegeven die de tumorcelbindende affiniteit met LN-parenchyma onthult.

Abstract

Tumordrainerende lymfeklieren (LNs) zijn niet alleen filters van tumorgeproduceerd afval. Ze zijn een van de meest voorkomende regionale locaties van voorlopige verblijfplaats van verspreide tumorcellen bij patiënten met verschillende vormen van kanker. De detectie van deze LN-residing tumorcellen is een belangrijke biomarker geassocieerd met een slechte prognose en adjuvante therapie beslissingen. Recente muismodellen hebben aangegeven dat LN-residing tumorcellen een wezenlijke bron van kwaadaardige cellen voor verre metastasen zouden kunnen zijn. De mogelijkheid om de adhesiviteit van tumorcellen te kwantificeren aan LN parenchyma is een kritische graadmeter in experimenteel onderzoek dat zich richt op de identificatie van genen of signaleringstrajecten die relevant zijn voor lymfe/gemetastaseerde verspreiding. Omdat LN’s complexe 3D-structuren zijn met een verscheidenheid aan verschijningen en samenstellingen in weefselsecties, afhankelijk van het vlak van sectie, zijn hun matrices moeilijk experimenteel in vitro te repliceren op een volledig gecontroleerde manier. Hier beschrijven we een eenvoudige en goedkope methode die het mogelijk maakt de kwantificering van lijmtumorcellen naar LN cryosecties. Met behulp van seriële secties van dezelfde LN passen we de klassieke methode die Brodt ontwikkelde aan om niet-radioactieve labels te gebruiken en direct het aantal vasthoudende tumorcellen per LN-oppervlak te tellen. LN-aanhangende tumorcellen worden gemakkelijk geïdentificeerd door lichtmicroscopie en bevestigd door een fluorescentiegebaseerde methode, waardoor een adhesie-index wordt gegeven die de celbindende affiniteit met LN-parenchyma onthult, wat suggestief bewijs is van moleculaire veranderingen in de affiniteitsbinding van integrinns aan hun correlerende LN-liganden.

Introduction

Kankermetastase is de belangrijkste reden voor het falen van de behandeling en het dominante levensbedreigende aspect van kanker. Zoals 130 jaar geleden gepostuleerde, de uitgezaaide verspreiding resultaten wanneer een elite van verspreide tumorcellen (DDC’s, de “zaden”) verwerven specifieke biologische vaardigheden die hen in staat stellen om primaire sites te ontwijken en kwaadaardige groei vast te stellen op verre plaatsen (de “bodem”)1. Onlangs zijn verschillende nieuwe concepten met betrekking tot de “zaad en bodem” relaties ontstaan, zoals de inductie van pregemetastaseerde niches (geconceptualiseerd als een “vruchtbare bodem” die nodig is voor “zaden” om te gedijen), zelfzaaiende primaire tumoren door DDC’s, “zaad” rust op secundaire organen en de parallelle progressie model van metastase2.

Voor de meeste solide maligniteiten kunnen DDC’s zich bevinden en worden gedetecteerd in veel mesenchymale organen, zoals beenmerg en lymfeklieren (LNs) bij patiënten met of zonder bewijs van klinische metastase. Omdat tumordrainerende LN’s de eerste locatie zijn van de regionale verspreiding van DDC’s, is de LN-status een belangrijke prognostische indicator en wordt vaak geassocieerd met adjuvante therapiebeslissingen3. Voor sommige tumortypes is de correlatie tussen LN-status en slechtere resultaten sterk, waaronder hoofd en nek4,5, borst6,prostaat7,long8, maag9, colorectale10,11 en schildklierkanker12.

LNs zijn kleine eivormige organen van het lymfestelsel, die zijn bedekt met reticulaire cellen en ingesloten met lymfevaten. Deze organen zijn absoluut noodzakelijk voor de werking van het immuunsysteem13. LNs fungeren als attractant platforms voor immuun circulerende cellen, het samenbrengen van de lymfocyten en antigeen-presenterende cellen14. Echter, LNs trekken ook circulerende tumorcellen. Gedurende tientallen jaren werden LN’s afgebeeld als passieve routes van transport voor uitgezaaide tumorcellen. Recente studies hebben echter aangetoond dat tumorcellen ook naar LN’s kunnen worden geleid door chemotactische (chemokines) en/of haptotactische (extracellulaire matrixelementen) signalen die worden afgescheiden door het lymfeendotheel15. Als voorbeelden vergemakkelijkt overexpressie van de CCR7-receptor in tumorcellen de begeleiding van uitgezaaide melanoomcellen naar tumordrainerende LNs16. Bovendien, extracellulaire LN eiwitten bieden een kleefsteiger voor de werving en overleving van circulerende tumorcellen17. In feite, tumor-drainerende LNs bieden vruchtbare bodem voor het zaaien van DDC’s, die kan worden gehandhaafd in proliferative of slapende staten door specifieke LN microenvironmental signalen18. Het uiteindelijke lot van deze LN-residing DTCs is controversieel; sommige werken suggereren dat deze cellen passieve indicatoren zijn van uitgezaaide progressie19, terwijl anderen voorstellen dat ze waarschijnlijker grondleggers zijn van resistentie (door zelfzaaiende primaire sites) en/of fungeren als cellulaire reservoirs voor metastasen (verspreiding van “zaden” voor tertiaire kankergroei)20,21. Onlangs, met behulp van preklinische modellen, is aangetoond dat een fractie van deze LN-residing DTCs actief binnengevallen bloedvaten, in de bloedcirculatie en gekoloniseerd de longen21.

Gezien het feit dat de aanwezigheid van kankercellen in LN’s is een marker voor kanker agressiviteit en invasieve, in deze studie, hebben we geoptimaliseerd een klassieke methode ontwikkeld door Brodt22 kwantitatief te meten tumorcel hechting aan LN’s in vitro. Het gebruik van een op fluorescentie gebaseerde test stelde ons in staat om een goedkoop, snel, gevoelig en milieuvriendelijk (niet-radioactief) protocol te ontwikkelen voor de detectie van lijmveranderingen tussen tumorcellen en LN-cryosecties. Met behulp van de MCF-7 borstkankercellen die verschillende niveaus van NDRG4-genexpressie en ratten LN-bevroren secties uitdrukken om de methode te illustreren, toonden we aan dat dit protocol een goede correlatie mogelijk maakte tussen tumorcelhechting aan LN’s in vitro en LN metastase waargenomen bij borstkankerpatiënten24.

Protocol

LNs werden teruggevonden uit verse karkassen van gezonde volwassen Wistar ratten geofferd door cervicale dislocatie. We volgden de NIH-richtlijnen voor pijn en nood in proefdieren en alle procedures zijn goedgekeurd door het Ethische Comité en Dieronderzoek van het Onderzoeks- en Onderwijsinstituut van het Sírio-Libanês-ziekenhuis (CEUA P 2016-04). OPMERKING: Alle verse bevroren weefsels worden als biogevaarlijk beschouwd en moeten worden behandeld met behulp van passende bioveiligheidsvoor…

Representative Results

We illustreren de test door de evaluatie van de LN lijm potentieel van rode fluorescerende MCF-7 borstkankercellen uitdrukken verschillende niveaus van de NDRG4 gen (aangeduid als NDRG4-positieve en NDRG4-negatieve cellen), een negatieve modulator van beta1-integrin clustering op het celoppervlak24, door het onderzoeken van de fracties van rat LN-aanhangende tumorcellen. Voorbeelden van de ruwe beelden van dit protocol worden weergegeven in fig…

Discussion

Lymfatische systeem verspreiding van kankercellen vereist een verscheidenheid van complexe cel-gedreven gebeurtenissen. Ze initiëren met celonthechting van primaire tumor en de remodelleren van de extracellulaire matrix (ECM) architectuur, en worden ondersteund door aanhoudende chemotaxis en actieve migratie via de afferente lymfoïden op weg naar de sentinel LN’s. Als kankercellen zich hechten en overleven in LNs, kunnen ze zich gemakkelijk verspreiden naar andere secundaire organen. Hier beschrijven we een eenvoudige …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken Dr. Rosana De Lima Pagano en Ana Carolina Pinheiro Campos voor technische assistentie. Dit werk werd ondersteund door subsidies van: FAPESP – São Paulo Research Foundation (2016/07463-4) en Ludwig Institute for Cancer Research (LICR).

Materials

15 mL Conical Tubes Corning 352096
2-propanol Merck 109634
Benchtop Laminar Flow Esco Cell Culture
Bin for Disc Leica 14020139126
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A9647-100
Cell culture flask T-25 cm2 Corning 430372
Cryostat Leica CM1860 UV
Cryostat-Brush with magnet Leica 14018340426
DiIC18 Cell Traker Dye Molecular Probes V-22885
Fetal Bovine Serum (FBS) Life Technologies 12657-029
Fluorescence microscope Nikon Eclipse 80
Forma Series II CO2 incubator Thermo Scientific
Formaldehyde Sigma-Aldrich 252549
High Profile Disposable Razor Leica 14035838926
Incubation Cube (IHC) KASVI K560030
Inverted microscope Olympus CKX31
Isofluran 100 mL Cristália
Liquid Bloquer Super Pap Pen Abcam, Life Science Reagents ab2601
Optimal Cutting Temperature "OCT" compound Sakura 4583
Phosphate-buffered Saline (PBS) Life Technologies 70011-044
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich P8920
RPMI Gibco 31800-022
Serological Pipettes 1 mL Jet Biofil GSP010001
Serological Pipettes 10 mL Jet Biofil GSP010010
Serological Pipettes 2 mL Jet Biofil GSP010002
Serological Pipettes 5 mL Jet Biofil GSP010005
Serological Pipettes 50 mL Jet Biofil GSP010050
Serological Pipettor Easypet 3 Eppendorf
Tissue-Tek cryomold Sakura 4557
Trypan Blue 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Instituto Adolfo Lutz ATV

Referências

  1. Paget, S. The distribution of secondary growths in cancer of the breast. Cancer and Metastasis Reviews. 8 (2), 98-101 (1989).
  2. Liu, Q., Zhang, H., Jiang, X., Qian, C., Liu, Z., Zuo, D. Factors involved in cancer metastasis: a better understanding to seed and soil hypothesis. Molecular Cancer. 16 (1), 176 (2017).
  3. Padera, T. P., Meijer, E. F., Munn, L. L. The Lymphatic System in Disease Processes and Cancer Progression. Annual Review of Biomedical Engineering. 18, 125-158 (2016).
  4. Leemans, C. R., Tiwari, R., Nauta, J. J., van der Waal, I., Snow, G. B. Regional lymph node involvement and its significance in the development of distant metastases in head and neck carcinoma. Cancer. 71 (2), 452-456 (1993).
  5. Kowalski, L. P., et al. Prognostic significance of the distribution of neck node metastasis from oral carcinoma. Head & Neck. 22 (3), 207-214 (2000).
  6. McGuire, W. L. Prognostic factors for recurrence and survival in human breast cancer. Breast Cancer Research and Treatment. 10 (1), 5-9 (1987).
  7. Gervasi, L. A., et al. Prognostic significance of lymph nodal metastases in prostate cancer. The Journal of Urology. 142 (2 Pt 1), 332-336 (1989).
  8. Naruke, T., Suemasu, K., Ishikawa, S. Lymph node mapping and curability at various levels of metastasis in resected lung cancer. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 76 (6), 832-839 (1978).
  9. Sasako, M., et al. D2 lymphadenectomy alone or with para-aortic nodal dissection for gastric cancer. The New England Journal of Medicine. 359 (5), 453-462 (2008).
  10. Chang, G. J., Rodriguez-Bigas, M. A., Skibber, J. M., Moyer, V. A. Lymph node evaluation and survival after curative resection of colon cancer: systematic review. Journal of the National Cancer Institute. 99 (6), 433-441 (2007).
  11. Watanabe, T., et al. Extended lymphadenectomy and preoperative radiotherapy for lower rectal cancers. Surgery. 132 (1), 27-33 (2002).
  12. Machens, A., Dralle, H. Correlation between the number of lymph node metastases and lung metastasis in papillary thyroid cancer. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 97 (12), 4375-4382 (2012).
  13. Dijkstra, C. D., Kamperdijk, E. W. A., Veerman, A. J. P., Jones, T. C., Ward, J. M., Mohr, U., Hunt, R. D. Normal Anatomy, Histology, Immunohistology, and Ultrastructure, Lymph Node, Rat. Hemopoietic System. , 129-136 (1990).
  14. Gretz, J. E., Anderson, A. O., Shaw, S. Cords, channels, corridors and conduits: critical architectural elements facilitating cell interactions in the lymph node cortex. Immunological Reviews. 156, 11-24 (1997).
  15. Podgrabinska, S., Skobe, M. Role of lymphatic vasculature in regional and distant metastases. Microvascular Research. 95, 46-52 (2014).
  16. Wiley, H. E., Gonzales, E. B., Maki, W., Wu, M. T., Hwang, S. T. Expression of CC chemokine receptor-7 and regional lymph node metastasis of B16 murine melanoma. Journal of the National Cancer Institute. 93 (21), 1638-1643 (2001).
  17. Chen, J., Alexander, J. S., Orr, A. W. Integrins and their extracellular matrix ligands in lymphangiogenesis and lymph node metastasis. International Journal of Cell Biology. 2012, 853703 (2012).
  18. Müller, M., Gounari, F., Prifti, S., Hacker, H. J., Schirrmacher, V., Khazaie, K. EblacZ tumor dormancy in bone marrow and lymph nodes: active control of proliferating tumor cells by CD8+ immune T cells. Pesquisa do Câncer. 58 (23), 5439-5446 (1998).
  19. Cady, B. Regional lymph node metastases; a singular manifestation of the process of clinical metastases in cancer: contemporary animal research and clinical reports suggest unifying concepts. Annals of Surgical Oncology. 14 (6), 1790-1800 (2007).
  20. Klein, C. A. The systemic progression of human cancer: a focus on the individual disseminated cancer cell-the unit of selection. Advances in Cancer Research. 89, 35-67 (2003).
  21. Pereira, E. R., et al. Lymph node metastases can invade local blood vessels, exit the node, and colonize distant organs in mice. Science. 359 (6382), 1403-1407 (2018).
  22. Brodt, P. Tumor cell adhesion to frozen lymph node sections-an in vitro correlate of lymphatic metastasis. Clinical & Experimental Metastasis. 7 (3), 343-352 (1989).
  23. Badylak, S. F. Xenogeneic extracellular matrix as a scaffold for tissue reconstruction. Transplant Immunology. 12 (3-4), 367-377 (2004).
  24. Jandrey, E. H. F., et al. NDRG4 promoter hypermethylation is a mechanistic biomarker associated with metastatic progression in breast cancer patients. NPJ Breast Cancer. 5, 11 (2019).
  25. Honig, M. G., Hume, R. I. Dil and diO: versatile fluorescent dyes for neuronal labelling and pathway tracing. Trends in Neurosciences. 12 (9), 333 (1989).
  26. Costa, E. T., et al. Intratumoral heterogeneity of ADAM23 promotes tumor growth and metastasis through LGI4 and nitric oxide signals. Oncogene. 34 (10), 1270-1279 (2015).
  27. Song, J., et al. Extracellular matrix of secondary lymphoid organs impacts on B-cell fate and survival. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (31), E2915-E2924 (2013).
  28. Kramer, R. H., Rosen, S. D., McDonald, K. A. Basement-membrane components associated with the extracellular matrix of the lymph node. Cell and Tissue Research. 252 (2), 367-375 (1988).
  29. Sobocinski, G. P., Toy, K., Bobrowski, W. F., Shaw, S., Anderson, A. O., Kaldjian, E. P. Ultrastructural localization of extracellular matrix proteins of the lymph node cortex: evidence supporting the reticular network as a pathway for lymphocyte migration. BMC Immunology. 11, 42 (2010).
  30. Pathak, A. P., Artemov, D., Neeman, M., Bhujwalla, Z. M. Lymph Node Metastasis in Breast Cancer Xenografts Is Associated with Increased Regions of Extravascular Drain, Lymphatic Vessel Area, and Invasive Phenotype. Pesquisa do Câncer. 66 (10), 5151-5158 (2006).
check_url/pt/60531?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Jandrey, E. H. F., Kuroki, M. A., Camargo, A. A., Costa, E. T. Quantification of Tumor Cell Adhesion in Lymph Node Cryosections. J. Vis. Exp. (156), e60531, doi:10.3791/60531 (2020).

View Video