Esta metodologia visa ilustrar os mecanismos pelos quais pistas de matriz extracelular, como rigidez do substrato, composição de proteínas e morfologia celular regulam o fenótipo de células schwann (SC).
Atualmente, as lesões traumáticas do sistema nervoso periférico (PNS) não possuem tratamentos adequados para recuperar a recuperação funcional completa. As células schwann (SCs), como as principais células gliais da PNS, desempenham um papel vital na promoção da regeneração da PNS, dediferindo-se em um fenótipo celular regenerativo após a lesão. No entanto, o estado dediferenciado das SCs é desafiador para manter-se durante o período de tempo necessário para a regeneração e é impactado por mudanças na matriz extracelular circundante (ECM). Portanto, determinar a interação complexa entre SCs e ECM diferente para fornecer pistas de potencial regenerativo das SCs é essencial. Para lidar com isso, foi criada uma estratégia onde diferentes proteínas ECM foram adsorvidas em um substrato de polidimetilatilaxitano (PDMS) que forneceu uma plataforma onde a rigidez e a composição proteica podem ser moduladas. As SCs foram semeadas nos substratos tunable e foram medidas funções celulares críticas que representam a dinâmica do fenótipo de SC. Para ilustrar a interação entre a expressão proteica SC e a morfologia celular, foram utilizadas diferentes densidades de semeadura de SCs, além de padrões celulares impressos em microcontatos individuais e caracterizados pela coloração da imunofluorescência e mancha ocidental. Os resultados mostraram que as células com menor área de disseminação e maior extensão do alongamento celular promoveram níveis mais elevados de marcadores fenotípicos regenerativos de SC. Essa metodologia não só começa a desvendar a relação significativa entre o ECM e a função celular das SCs, mas também fornece diretrizes para a otimização futura de biomateriais na reparação do nervo periférico.
As lesões do sistema nervoso periférico (PNS) continuam sendo um grande desafio clínico na saúde, comprometendo a qualidade de vida dos pacientes e criando um impacto significativo através de uma infinidade de fatores socioeconômicos1,2. As células schwann (SC), como as principais células gliais da PNS, fornecem sinais moleculares e físicos necessários para induzir a regeneração da PNS e auxiliar em recuperações funcionais em lesões de curto espaço. Isso se deve à notável capacidade dos SCs de dediferentes em um fenótipo celular de “reparação” de um fenótipo de mieliagem ou remak3. O reparo SC é um fenótipo celular distinto de várias maneiras. Após a lesão, as SCs aumentam sua taxa de proliferação reentrando no ciclo celular e iniciam a expressão de vários fatores transcricionais para facilitar a reinervação. Esses fatores, como c-Jun e p75 NTR, são regulados, enquanto os marcadores de SC de mielin, como a proteína básica de mielina (MBP), estão abaixo da regulação4,,5. Além disso, os SCs mudam a morfologia para se alongarem e se alinharem entre si para formar bandas de Büngner em todo o local da lesão6. Isso fornece um mecanismo de orientação física para que os axônios se estendam até o alvo distal correto7. No entanto, apesar da capacidade que as SCs possuem para promover a regeneração nervosa em lesões de curto espaço de espaço, o resultado da recuperação funcional permanece ruim em lesões graves. Isso se deve, em parte, à perda de pistas de orientação da matriz extracelular (ECM), bem como à incapacidade das SCs de manter o fenótipo regenerativo por longos períodos de tempo8.
O processo de regeneração nervosa e recuperação estão intimamente ligados ao estado da lamina basal após lesão. A lamina basal é uma camada de ECM em torno do nervo que facilita a orientação e fornece pistas vinculadas ao ECM para axônios e SCs nos casos em que permanece intacta após a lesão9. O estado do ECM e sua capacidade de entregar pistas ligadas à matriz às células é de vital importância e já foi explorado anteriormente em uma variedade de diferentes contextos10,11,,12,,13,14. Por exemplo, foi demonstrado que a rigidez do ECM pode orientar funções celulares como proliferação e diferenciação11,,15,,16. A composição do ECM também pode levar a uma resposta celular distinta e regular comportamentos celulares como migração e diferenciação através de vias de sinalização intracelular17,18. Além disso, a morfologia celular, incluindo a expansão da área e o alongamento celular, desempenham um papel importante na regulação da função e podem ser regidas pelas pistas vinculadas ao ECM19,,20. Muitos estudos anteriores se concentraram em células-tronco que se diferenciam em linhagens definidas, mas as SCs possuem uma capacidade semelhante de alterar o fenótipo de um HOMEOSTático, adulto SC dentro de um nervo saudável, para um SC reparador capaz de segregar proteínas e fatores de crescimento enquanto remodelam o ECM após lesão nervosa5,,21. Portanto, é especialmente crucial identificar mecanismos subjacentes à relação entre a capacidade regenerativa de SC inata e as pistas vinculadas ao ECM para que a percepção exaia essa capacidade de regeneração nervosa.
Para lidar com isso, desenvolvemos uma metodologia detalhada para produzir um substrato de cultura celular onde rigidez mecânica e tipo de ligante podem ser facilmente sintonizados em faixas fisiologicamente relevantes. O siloxano de polidimtil (PDMS) foi escolhido como substrato devido à sua mecânica altamente tíclica em comparação com o gel de poliacrilamida, onde o módulo máximo de Young é em torno de 12 kPa contrastado com PDMS em torno de 1000 kPa22,23,,24. Isso é benéfico para o trabalho em questão, pois estudos recentes mostraram que o módulo de um nervo ciático de coelho pode exceder 50 kPa durante o desenvolvimento, sugerindo assim que a gama de rigidez dos nervos dentro da PNS é maior do que o examinado anteriormente. Diferentes proteínas são capazes de adsorção em substratos PDMS para analisar a regulação combinatória de mecânica e ligantes sobre o comportamento de SC. Isso permite a investigação de múltiplas pistas microambientais presentes no processo de regeneração da PNS e comparação de um alto grau de sintonia com o trabalho com foco apenas na rigidez do substrato25. Além disso, esses substratos de cultura celular projetada são compatíveis com uma infinidade de métodos de análise quantitativa, como imunohistoquímica, mancha ocidental e reação quantitativa em cadeia de polimerase (q-PCR).
Esta plataforma de cultura celular projetada é altamente adequada para analisar caminhos mecanicistas devido ao alto nível de sintonia individual de cada sinal vinculado ao ECM. Além disso, métodos populares para micropatterning celular, incluindo impressão de microcontatos, podem ser alcançados nos substratos para permitir a adesão celular controlada para analisar a forma celular em relação a outras pistas ligadas ao ECM24. Isso é fundamental porque substratos padronizados de linha, que promovem o alongamento em populações celulares, fornecem uma ferramenta para imitar e estudar SCs alongados e regenerativos dentro de bandas Büngner durante a regeneração nervosa. Além disso, a morfologia celular é um potente regulador de múltiplas funções celulares e pode potencialmente introduzir resultados experimentais confusos se não for controlada26,27. Atenção significativa está sendo dada aos mecanismos que regem o fenótipo regenerativo de SC, conforme regulado pelas sugestões ECM28,,29,,30. Isso é essencial para fornecer uma visão sobre o desenho de biomateriais que podem ser aplicados como conduítes de orientação nervosa para auxiliar na regeneração nervosa da PNS. Esses protocolos detalhados podem, em última análise, ser aplicados como uma ferramenta potencial para decifrar os mecanismos de SC e outros tipos de células funcionam conforme regulado por pistas vinculadas ao ECM.
As SCs podem promover a regeneração nervosa devido à sua transformação fenotípica e potencial regenerativo após lesão nervosa. No entanto, a forma como as sugestões de ECM regulam essa capacidade regenerativa permanece em sua maioria incerta, potencialmente dificultando não apenas o desenvolvimento de biomateriais que visam promover a regeneração nervosa, mas também a compreensão dos mecanismos envolvidos na regeneração nervosa. Para começar a examinar essa interação, substratos de cultura celular fora…
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem o apoio ao financiamento da Universidade de Cincinnati. Os autores também agradecem a Ron Flenniken, do laboratório de Caracterização de Materiais Avançados da Universidade de Cincinnati, pelo apoio.
Albumin from Bovine Serum (BSA), Texas Red conjugate | Thermo Fisher Scientific | A23017 | BSA staining to show micropatterns |
Anti-mouse IgG, HRP-linked Antibody | Cell Signaling Technology | 7076S | Antibody used for western blot analysis |
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody | Cell Signaling Technology | 7074S | Antibody used for western blot analysis |
BrdU | Thermo Fisher Scientific | B23151 | Reagent used to measure cell proliferation |
BrdU primary antibody conjugated with Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher Scientific | B35130 | Used to visualize BrdU in cell proliferation assays |
Collagen I | Thermo Fisher Scientific | A10483-01 | Protein used to coat coverslips |
Compression force test machine | TestResources | Instrument to quantify mechanical properties of polymers | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Thermo Fisher Scientific | 11965092 | Cell culture medium |
Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | 16000044 | Cell culture medium supplemental |
Fibronectin | Thermo Fisher Scientific | 33010-018 | Protein used to coat coverslips |
Fluorescence microscope | Nikon | Eclipse Ti2 | Fluorescence microscope |
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail (100X) | Thermo Fisher Scientific | 78440 | Protease and Phosphatase Inhibitor |
Laminin | Thermo Fisher Scientific | 23017015 | Protein used to coat coverslips |
Mounting medium with DAPI | Thermo Fisher Scientific | P36971 | Coverslip mountant and nuclei staining |
Mouse c-Jun primary antibody | Thermo Fisher Scientific | 711202 | Primary antibody to visualize c-Jun protein |
Mouse β-Actin primary antibody | Cell Signaling Technology | 3700S | Loading control for western blot experiments |
Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | Cell culture medium supplemental |
Photoresist SU 2010 | KAYAKU | SU8-2010 | Photoresist |
Pluronic F-127 | Sigma Aldrich | P-2443 | Block non-specific protein binding |
Rabbit c-Jun primary antibody | Cell Signaling Technology | 9165S | Primary antibody for visualization of c-Jun protein |
Rabbit myelin basic protein primary antibody | Abcam | ab40390 | Primary antibody for visualization of MBP |
Rabbit p75NTR primary antibody | Cell Signaling Technology | 8238S | Primary antibody for visualization of p75NTR |
Rhodamine phalloidin | Thermo Fisher Scientific | R415 | Visualization of cell cytoskeleton |
RIPA buffer | Abcam | ab156034 | Cell lysis buffer |
RT4-D6P2T Schwann cell line | ATCC | CRL-2768 | Cell line used in experiments |
SYLGARD 184 PDMS base and curing agent | Sigma Aldrich | 761036 | Tunable polymer used to coat coverslips |
Trypsin | Thermo Fisher Scientific | 15090-046 | Cell dissociation reagent |
UV-Ozone cleaner | Novascan | Increase hydrophicility of PDMS | |
Versene (1x) | Thermo Fisher Scientific | 15040066 | Cell dissociation reagent |