Method Article

Microdissection laser RNA-Sequenciamento para Análise de Expressão Genética Espacial e Temporal-Específica do Tecido em Plantas

DOI:

10.3791/61517

August 5th, 2020

In This Article

Summary

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Apresentado aqui é um protocolo para microdisseção de captura a laser (LCM) de tecidos vegetais. LCM é uma técnica microscópica para isolar áreas de tecido de forma livre de contaminação. O procedimento inclui fixação tecidual, incorporação de parafina, secção, LCM e extração de RNA. O RNA é usado na análise temporalmente resolvida do tecido a jusante dos transcriptomes.

Abstract

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O desenvolvimento de um complexo organismo multicelular é regido por tipos de células distintas que têm diferentes perfis transcricionais. Para identificar redes regulatórias transcricionais que regem os processos de desenvolvimento é necessário medir os perfis de expressão genética espacial e temporal desses tipos de células individuais. Portanto, a visão sobre o controle espóvio-temporal da expressão genética é essencial para obter a compreensão de como os processos biológicos e de desenvolvimento são regulados. Aqui, descrevemos um método de microdissecção de captura a laser (LCM) para isolar um pequeno número de células de três órgãos de embrião de cevada durante um curso de tempo durante a germinação seguido de perfil de transcrição. O método consiste em fixação tecidual, processamento de tecidos, incorporação de parafina, secção, LCM e extração de RNA seguido de PCR em tempo real ou RNA-seq. Este método nos permitiu obter perfis espaciais e temporais de transcritos de órgãos de sementes de diferentes números de células (dezenas a centenas), fornecendo uma especificidade tecidual muito maior do que as análises típicas de tecido a granel. A partir desses dados, conseguimos definir e comparar redes regulatórias transcricionais, bem como prever fatores de transcrição regulatória de candidatos para tecidos individuais. O método deve ser aplicável a outros tecidos vegetais com otimização mínima.

Introduction

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O desenvolvimento e o crescimento das plantas envolvem a ação coordenada de redes reguladoras transcricionais dentro de diferentes células que existem em um ambiente celular complexo. Para entender a atividade dessas redes regulatórias, exigimos o conhecimento da expressão genética espacial e temporal dentro de diferentes tipos de células em estágios de desenvolvimento. No entanto, as análises da expressão genética são mais comumente conduzidas em órgãos inteiros ou amostras de tecido a granel devido ao desafio técnico de isolar e analisar um pequeno número de células. O método que descrevemos aqui permitiu a obtenção de análises de transcriptome espacial e temporal e....

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Protocol

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Como o produto final é RNA, tome cuidado para evitar contaminar o trabalho com RNases. Usar luvas é imperdível. Use pirocarbonato dietil (DEPC) -água tratada, tampões, etc. Tampões de autoclave e assar vidros antes de usar.

1. Fixação de tecidos

  1. Preparar fixação de escolha dependendo das espécies e tipos de tecidos; para sementes de cevada, use o fixador do Farmer (75% de etanol, 25% ácido acético glacial (v/v)).
  2. Esfrie o fixador no gelo antes de colher tecidos.
  3. Colete o material vegetal de interesse e, se necessário, disseca-o em pedaços de tamanho apropriado para caber no molde de incorporação selecionado. Pa....

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Results

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Geramos transcrições espaciais e temporais específicas de tecidoes a partir de sementes de cevada durante a germinação usando nosso protocolo LCM RNA-seq10. O estudo foi realizado aplicando LCM RNA-seq a um pequeno número de células de três órgãos embrionários (plumule, ponta de radículo, scutellum) a cada 8 h durante um curso de tempo de 48h durante a germinação (0-48 h, 7 pontos de tempo)(Figura 2A,B).

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Discussion

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Muitos estudos de expressão genética específicos do tecido têm sido limitados pela dissecação manual de amostras, que é demorado, trabalhoso, tem um alto risco de contaminação e só pode utilizar amostras que um agente humano é suficientemente hábil para colher. LCM é uma técnica precisa e livre de contatos para coletar células de seções de tecido fixo usando um raio laser operado mecanicamente sob visualização microscópica.

Uma boa preparação amostral é fundamental para LCM. O processo conta c.......

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Disclosures

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Os autores não têm nada a revelar.

Acknowledgements

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Este trabalho foi apoiado pelo Australian Research Council Centre of Excellence in Plant Energy Biology (CE140100008) para jw. M.G.L foi apoiado por uma bolsa inicial da Universidade La Trobe. Agradecemos à Plataforma de Genômica La Trobe por seu apoio em sequenciamento de alta produtividade e análise de dados. Agradecemos ao Professor Associado Matthew Tucker por conselhos especializados sobre a criação de LCM em nosso laboratório.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Ácido acético 100 % ACS/R.AnalaR NORMAPUR (BioStrategies)VWRC20104.323
AdhesiveCap 200 opacoZeiss415190-9181-000
Moldes de base transparente 8 X 10Leica3803015
Diethyl pyrocarbonateSigma-Aldrich40718-25ML
Fita de Tela de RNA de Alta SensibilidadeAgilent5067-5579
Baixo&tímido; lâminas de perfil DB80LSLeica14035843489
MembraneSlide 1.0 PENZeiss415190-9041-000
Kit de amplificação de aRNA MessageAmp IIAmbion (ThermoFisher)AMB17515
Conjunto de digestão DNase I na colunaSigma-AldrichDNASE70
Ovation RNA-Seq System V2NuGen (Integrated Science)7102-08
Parafina (Surgipath Paraplast)Leica39601006
Kit de isolamento de RNA PicoPureABI (ThermoFisher)KIT0214
Solução de descontaminação de RNase RNaseZapAmbion (ThermoFisher)AM9780
XilenoAnalaR NORMAPUR (BioStrategies)VWRC28975.360
Processador de tecidos de bancada LeicaBiosystemsTP1020
Módulo de incorporação de parafina aquecida LeicaBiosystemsEG1150H
Placa fria LeicaGabinetes de segurança biológica Safemate Classe 2 daLeica Biosystems
LAF Technologies Pty LtdSafemate 1.5
Micrótomo rotativo totalmente automatizadoLeica BiosystemsRM2265com software PALMRobo v 4.6
Sistema Zeiss PALM MicroBeam LCM FitaZeiss
TapeStationAgilentTapeStation 2200
Biosystems EG1150C de varredura

References

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  1. Emmert-Buck, M. R., et al. Laser capture microdissection. Science. 274 (5289), 998-1001 (1996).
  2. Alevizos, I., et al. Oral cancer in vivo gene expression profiling assisted by laser capture microdissection and microarray analysis. Oncogene. 20

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