Summary

Выделение и обогащение эпителиальных клеток-предшественников легких человека для органоидной культуры

Published: July 21, 2020
doi:

Summary

В данной статье представлена подробная методология диссоциации тканей и клеточного фракционирования, позволяющая обогатить жизнеспособные эпителиальные клетки из проксимальных и дистальных областей легкого человека. При этом эти подходы применяются для функционального анализа клеток-предшественников эпителия легких с помощью 3D-моделей культур органоидов.

Abstract

Эпителиальные органоидные модели служат ценными инструментами для изучения базовой биологии системы органов и для моделирования заболеваний. При выращивании в качестве органоидов эпителиальные клетки-предшественники могут самообновляться и генерировать дифференцированное потомство, которое проявляет клеточные функции, аналогичные функциям их аналогов in vivo . Здесь мы описываем пошаговый протокол для выделения региональных предшественников из легких человека и создания 3D-органоидных культур в качестве экспериментального и валидационного инструмента. Мы определяем проксимальные и дистальные области легкого с целью выделения областно-специфических клеток-предшественников. Мы использовали комбинацию ферментативной и механической диссоциации для выделения общих клеток из легких и трахеи. Специфические клетки-предшественники затем фракционировали из клеток проксимального или дистального происхождения с использованием флуоресцентной ассоциированной сортировки клеток (FACS) на основе специфических поверхностных маркеров типа клеток, таких как NGFR для сортировки базальных клеток и HTII-280 для сортировки альвеолярных клеток типа II. Изолированные базальные или альвеолярные предшественники типа II использовались для генерации 3D органоидных культур. Как дистальные, так и проксимальные предшественники образовывали органоиды с колониеобразующей эффективностью 9-13% в дистальной области и 7-10% в проксимальной области при покрытии 5000 клеток/колодец на 30 день. Дистальные органоиды поддерживали альвеолярные клетки HTII-280+ типа II в культуре, тогда как проксимальные органоиды дифференцировались в реснитчатые и секреторные клетки к 30-му дню. Эти 3D органоидные культуры могут быть использованы в качестве экспериментального инструмента для изучения клеточной биологии эпителия легких и эпителиальных мезенхимальных взаимодействий, а также для разработки и валидации терапевтических стратегий, направленных на эпителиальную дисфункцию при заболевании.

Introduction

Воздушное пространство дыхательной системы человека можно в широком смысле разделить на проводящую и дыхательную зоны, опосредующие перенос газов и их последующий обмен через эпителиально-микрососудистый барьер соответственно. Проводящие дыхательные пути включают трахею, бронхи, бронхиолы и терминальные бронхиолы, тогда как дыхательные воздушные пространства включают дыхательные бронхиолы, альвеолярные протоки и альвеолы. Эпителиальная оболочка этих воздушных пространств изменяется в составе вдоль проксимо-дистальной оси, чтобы удовлетворить уникальные требования каждой функционально отдельной зоны. Псевдостратифицированный эпителий трахео-бронхиальных дыхательных путей состоит из трех основных типов клеток, базальных, секреторных и реснитчатых, в дополнение к менее распространенным типам клеток, включая щетку, нейроэндокрин и ионоцит 1,2,3. Бронхиолярные дыхательные пути содержат морфологически сходные типы эпителиальных клеток, хотя существуют различия в их обилии и функциональных свойствах. Например, базальные клетки менее распространены в бронхиолярных дыхательных путях, а секреторные клетки включают большую долю клубных клеток по сравнению с серозными и бокаловидными клетками, которые преобладают в трахео-бронхиальных дыхательных путях.  Эпителиальные клетки дыхательной зоны включают плохо выраженный кубоидальный тип клеток в дыхательных бронхиолах, в дополнение к альвеолярным клеткам I типа (ATI) и типу II (ATII) альвеолярных протоков и альвеол 1,4.

Идентичность типов эпителиальных стволовых и клеток-предшественников, способствующих поддержанию и обновлению эпителия в каждой зоне, описана не полностью и в значительной степени выведена из исследований на животных моделях 5,6,7,8. Исследования на мышах показали, что либо базальные клетки псевдостратифицированных дыхательных путей, либо клубные клетки бронхиолярных дыхательных путей, либо ATII клетки альвеолярного эпителия служат эпителиальными стволовыми клетками, основанными на способности к неограниченному самообновлению и мультипотентной дифференцировке 7,9,10,11,12 . Несмотря на невозможность проведения исследований по отслеживанию генетической линии для оценки стволовых типов эпителиальных клеток легких человека, наличие моделей культур на основе органоидов для оценки функционального потенциала эпителиальных стволовых и клеток-предшественников обеспечивает инструмент для сравнительных исследований между мышью и человеком 13,14,15,16,17.

Описаны методы выделения типов эпителиальных клеток из различных областей легкого человека и их культивирования с использованием 3D-органоидной системы для рекапитуляции региональных типов клеток. Аналогичные методы были разработаны для функционального анализа и моделирования заболеваний эпителиальных клеток из других систем органов 18,19,20,21. Эти методы обеспечивают платформу для идентификации региональных эпителиальных клеток-предшественников, для проведения механистических исследований, изучающих их регуляцию и микроокружение, а также для моделирования заболеваний и открытия лекарств. Несмотря на то, что исследования клеток-предшественников эпителия легких, выполненные на животных моделях, могут извлечь выгоду из анализа, либо in vivo, либо in vitro, понимание идентичности клеток-предшественников эпителия легких человека в значительной степени зависит от экстраполяции от модельных организмов. Таким образом, эти методы обеспечивают мост для связи идентичности и поведения типов эпителиальных клеток легких человека с их исследованиями, изучающими регуляцию стволовых / предшественников клеток.

Protocol

Легочная ткань человека была получена от умерших доноров тканей в соответствии с процедурами согласия, разработанными Международным институтом развития медицины (IIAM) и одобренными Советом по внутреннему обзору Медицинского центра Cedars-Sinai. 1. Обработка тканей для выделен?…

Representative Results

Источник легочной тканиТрахея и внелегочный бронх (рисунок 1А) использовались в качестве исходной ткани для выделения эпителиальных клеток проксимальных дыхательных путей и последующей генерации проксимальных органоидов. Дистальная легочная ткань, котора…

Discussion

Описан надежный метод выделения определенных субпопуляций клеток легких из легочной ткани человека для молекулярного или функционального анализа и моделирования заболеваний. К критическим элементам методов относятся способность достигать диссоциации тканей с сохранением поверхно…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы ценим поддержку со стороны Мидзуно Такако в окрашивании IFC и H и E, Ванессы Гарсия в секционировании тканей и Аники С. Чандрасекаран за помощь в подготовке рукописи. Эта работа поддерживается Национальными институтами здравоохранения (5RO1HL135163-04, PO1HL108793-08) и консорциумом Celgene IDEAL.

Materials

Cell Isolation
10 mL Sterile syringes, Luer-Lok Tip Fisher scientific BD 309646
30 mL Sterile syringes, Luer-Lok Tip VWR BD302832
Biohazard bags VWR 89495-440
Biohazard bags VWR 89495-440
connecting ring Pluriselect 41-50000-03
Deoxyribonuclease (lot#SLBF7798V) sigma Aldrich DN25-1G
Disposable Petri dishes Corning/Falcon 25373-187
Funnel Pluriselect 42-50000
HBSS Corning 21-023
Liberase TM Research Grade sigma Aldrich 5401127001
needle 16G VWR 305198
needle 18G VWR 305199
PluriStrainer 100 µm (Cell Strainer) Pluriselect 43-50100-51
PluriStrainer 300 µm (Cell Strainer) Pluriselect 43-50300-03
PluriStrainer 40 µm (Cell Strainer) Pluriselect 43-50040-51
PluriStrainer 500 µm (Cell Strainer) Pluriselect 43-50500-03
PluriStrainer 70 µm (Cell Strainer) Pluriselect 43-50070-51
Razor blades VWR 55411-050
Red Blood Cell lysis buffer eBioscience 00-4333-57
Equipment’s
GentleMACS C Tubes MACS Miltenyi Biotec 130-096-334
GentleMACS Octo Dissociator MACS Miltenyi Biotec 130-095-937
Leica ASP 300s Tissue processor
LS Columns MACS Miltenyi Biotec 130-042-401
MACS MultiStand** Miltenyi Biotech 130-042-303
Thermomixer Eppendorf 05-412-503
Thermomixer Eppendorf 05-412-503
HBSS+ Buffer
Amphotericin B Thermo fisher scientific 15290018 2ml
EDTA (0.5 M), pH 8.0, RNase-free Thermo fisher scientific AM9260G 500µl
Fetal Bovine Serum Gemini Bio-Products 100-106 10ml
HBSS Hank's Balanced Salt Solution 1X 500 ml VWR 45000-456 500ml bottle
HEPES (1 M) Thermo fisher scientific 15630080 5ml
Penicillin-Streptomycin-Neomycin (PSN) Antibiotic Mixture Thermo fisher scientific 15640055 5ml
List of antibodies for FACS
Alexa Fluor 647 anti-human CD326 (EpCAM) Antibody BioLegend 369820 1:50
BD CompBead Anti-Mouse Ig, K/ Negative control particles set Fisher Scientific BDB552843
CD31 MicroBead Kit, human Miltenyi Biotec 130-091-935 20µl/ 107 total cells
CD45 MicroBeads, human Miltenyi Biotec 130-045-801 20µl/ 107 total cells
DAPI Sigma Aldrich D9542-10MG 1:10000
FITC anti-human CD235a BioLegend 349104 1:100
FITC anti-human CD31 BioLegend 303104 1:100
FITC anti-human CD45 BioLegend 304054 1:100
FITC anti-mouse IgM Antibody BioLegend 406506 1:500
Mouse IgM anti human HT2-280 Terrace Biotech TB-27AHT2-280 1:300
PE anti-human CD271(NGFR) BioLegend 345106 1:50
Composition of Organoid Culture mediums
MRC-5 ATCC CCL-171
PneumaCult -ALI Medium Stemcell Technologies 5001
Small Airway Epithelial Cell Growth Medium PromoCell C-21170
ThinCert Tissue Culture Inserts, Sterile Greiner Bio-One 662641
Y-27632 (ROCK inhibitor) 100mM stock (1000x) Stemcell Technologies 72302
Mouse Basal medium:
Amphotericin B Thermo fisher scientific 15290018 50 µl
DMEM/F-12, HEPES ThermoFisher scientific 11330032 50 ml
Fetal Bovine Serum Gemini Bio-Products 100-106 5 ml
Insulin-Transferrin-Selenium (ITS -G) (100X) ThermoFisher scientific 41400045 500 µl
Penicillin-Streptomycin-Neomycin (PSN) Antibiotic Mixture Thermo fisher scientific 15640055 500 µl
SB431542 TGF-β pathway inhibitor (stock 100 mM) Stem cell 72234 5 µl
List of antibodies for Immunohistochemistry
Antigen unmasking solution, citric acid based Vector H-3300 937 µl in 100ml water
Histogel Thermo Scientific HG-4000-012
Primary Antibodies
Anti HT2-280 Terracebiotech TB-27AHT2-280 1:500
FOXJ1 Monoclonal Antibody (2A5) Thermo Fisher Scientific 14-9965-82 1:300
Human Uteroglobin/SCGB1A1 Antibody R and D systems MAB4218 1:300
Keratin 5 Polyclonal Chicken Antibody, Purified [Poly9059] Biolegend 905901 1:500
MUC5AC Monoclonal Antibody (45M1) Thermo Fisher Scientific MA5-12178 1:300
PDPN / Podoplanin Antibody (clone 8.1.1) LifeSpan Biosciences LS-C143022-100 1:300
Purified Mouse Anti-E-Cadherin BD biosciences 610182 1:1000
Sox-2 Antibody Santa Cruz biotechnologies sc-365964 1:300
Secondary Antibodies
Donkey anti-rabbit lgG, 488 Thermo Fisher Scientific A-21206 1:500
FITC anti-mouse IgM Antibody BioLegend 406506 1:500
Goat anti-Hamster IgG (H+L), Alexa Fluor 594 Thermo Fisher Scientific A-21113 1:500
Goat anti-Mouse IgG1 Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-21121 1:500
Goat anti-Mouse IgG2a Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-21131 1:500
Goat anti-Mouse IgG2a Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 Thermo Fisher Scientific A-21134 1:500
Goat anti-Mouse IgG2b Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 Thermo Fisher Scientific A-21144 1:500
Buffers
Immunohistochemistry Blocking Solution 3% BSA, o.4% Triton-x100 in TBS (Tris based saline)
Immunohistochemistry Incubation Solution 3% BSA, ).1% Triton-X100 in TBS
Immunohistochemistry Washing Solution TBS with 0.1% Tween 20

Referências

  1. Rackley, C. R., Stripp, B. R. Building and maintaining the epithelium of the lung. Journal of Clinical Investigation. 122 (8), 2724-2730 (2012).
  2. Montoro, D. T., et al. A revised airway epithelial hierarchy includes CFTR-expressing ionocytes. Nature. 560 (7718), 319-324 (2018).
  3. Plasschaert, L. W., et al. A single-cell atlas of the airway epithelium reveals the CFTR-rich pulmonary ionocyte. Nature. 560 (7718), 377-381 (2018).
  4. Barkauskas, C. E., et al. Type 2 alveolar cells are stem cells in adult lung. Journal of Clinical Investigation. 123 (7), 3025-3036 (2013).
  5. Barkauskas, C. E., et al. Lung organoids: current uses and future promise. Development. 144 (6), 986-997 (2017).
  6. Leeman, K. T., Fillmore, C. M., Kim, C. F. Lung Stem and Progenitor Cells in Tissue Homeostasis and Disease. Stem Cells in Development and Disease. 107, 207-233 (2014).
  7. Rawlins, E. L., et al. The Role of Scgb1a1(+) Clara Cells in the Long-Term Maintenance and Repair of Lung Airway but Not Alveolar, Epithelium. Cell Stem Cell. 4 (6), 525-534 (2009).
  8. Rock, J. R., et al. Basal cells as stem cells of the mouse trachea and human airway epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (31), 12771-12775 (2009).
  9. Chang, W. I., et al. Bmp4 is essential for the formation of the vestibular apparatus that detects angular head movements. Plos Genetics. 4 (4), 1000050 (2008).
  10. McQualter, J. L., Bertoncello, I. Concise Review: Deconstructing the Lung to Reveal Its Regenerative Potential. Stem Cells. 30 (5), 811-816 (2012).
  11. Gonzalez, R. F., Allen, L., Gonzales, L., Ballard, P. L., Dobbs, L. G. HTII-280, a Biomarker Specific to the Apical Plasma Membrane of Human Lung Alveolar Type II Cells. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 58 (10), 891-901 (2010).
  12. Rock, J. R., et al. Notch-Dependent Differentiation of Adult Airway Basal Stem Cells. Cell Stem Cell. 8 (6), 639-648 (2011).
  13. Page, H., Flood, P., Reynaud, E. G. Three-dimensional tissue cultures: current trends and beyond. Cell and Tissue Research. 352 (1), 123-131 (2013).
  14. Hynds, R. E., Giangreco, A. Concise Review: The Relevance of Human Stem Cell-Derived Organoid Models for Epithelial Translational Medicine. Stem Cells. 31 (3), 417-422 (2013).
  15. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: Modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), (2014).
  16. Weber, C. Organoids test drug response. Nature Cell Biology. 20 (6), 634 (2018).
  17. Fatehullah, A., Tan, S. H., Barker, N. Organoids as an in vitro model of human development and disease. Nature Cell Biology. 18 (3), 246-254 (2016).
  18. Nikolic, M. Z., Rawlins, E. L. Lung Organoids and Their Use To Study Cell-Cell Interaction. Current Pathobiology Reports. 5 (2), 223-231 (2017).
  19. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology. 141 (5), 1762-1772 (2011).
  20. Reynolds, B. A., Rietze, R. L. Neural stem cells and neurospheres–re-evaluating the relationship. Nature Methods. 2 (5), 333-336 (2005).
  21. Chua, C. W., et al. Single luminal epithelial progenitors can generate prostate organoids in culture. Nature Cell Biology. 16 (10), 951-961 (2014).
  22. Teisanu, R. M., et al. Functional analysis of two distinct bronchiolar progenitors during lung injury and repair. American Journal of Respiratory and Cellular Molecular Biology. 44 (6), 794-803 (2011).
  23. Chen, H., et al. Airway epithelial progenitors are region specific and show differential responses to bleomycin-induced lung injury. Stem Cells. 30 (9), 1948-1960 (2012).
  24. Benam, K. H., et al. Small airway-on-a-chip enables analysis of human lung inflammation and drug responses in vitro. Nature Methods. 13 (2), 151-157 (2016).
  25. Huh, D., et al. Reconstituting organ-level lung functions on a chip. Science. 328 (5986), 1662-1668 (2010).
  26. Jain, A., et al. Primary Human Lung Alveolus-on-a-chip Model of Intravascular Thrombosis for Assessment of Therapeutics. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 103 (2), 332-340 (2018).
  27. Mulay, A., et al. SARS-CoV-2 infection of primary human lung epithelium for COVID-19 modeling and drug discovery. bioRxiv. , (2020).

Play Video

Citar este artigo
Konda, B., Mulay, A., Yao, C., Beil, S., Israely, E., Stripp, B. R. Isolation and Enrichment of Human Lung Epithelial Progenitor Cells for Organoid Culture. J. Vis. Exp. (161), e61541, doi:10.3791/61541 (2020).

View Video