אנו מציגים שיטה לחקור ארגון כונדרוציטים מרחבי בסיברווס אנולוס של הדיסק הבין חולייתי בשיטת חתך אופטית.
ניוון דיסק בין חולייתי (IVD) הוא גורם מוביל לכאבי גב תחתון והוא כרוך במידה גבוהה של פגיעה עבור אנשים מושפעים. כדי לפענח ניוון דיסק ולהיות מסוגל לפתח גישות התחדשות הבנה יסודית של הביולוגיה התאית של IVD הוא חיוני. היבט אחד של ביולוגיה זו שעדיין נותר ללא מענה הוא השאלה כיצד תאים מסודרים מרחבית במצב פיזיולוגי ובמהלך ניוון. המאפיינים הביולוגיים של IVD וזמינותו מקשים על ניתוח רקמה זו. המחקר הנוכחי חוקר ארגון כונדרוציטים מרחבי בסיברווס אנולוס מהתפתחות עוברית מוקדמת ועד ניוון סופני. שיטת חתך אופטית (Apotome) מוחלת כדי לבצע ניתוחי כתמים ברזולוציה גבוהה באמצעות רקמת עובר בקר כמודל בעלי חיים ורקמת דיסק אנושית המתקבלת מחולים שעברו ניתוח בעמוד השדרה. מתוך צפיפות כונדרוציטים גבוהה מאוד בדיסק בקר עוברי מוקדם, מספר התאים פוחת במהלך ההריון, הצמיחה וההתבגרות. בדיסקים אנושיים, עלייה בצפיפות התאים ליוותה את התקדמות ניוון הרקמות. כפי שכבר הוכח בסחוס מפרקי, היווצרות אשכול מייצג תכונה אופיינית של ניוון דיסק מתקדם.
הדיסק הבין חולייתי (IVD) הוא מבנה מבוסס סחוס, כי ביוכימית וביחס לארכיטקטורה הסלולר, ממבט ראשון, דומה במובנים רבים הסחוס המפרקי1. ואכן, הן ניוון IVD והן דלקת מפרקים ניוונית (OA) של סחוס מפרקים מאופיינים על ידי צמצום שטח משותף עקב שחיקת סחוס, ציסטה תת-כונדרית היווצרות אוסטאופיפט, וטרשת תת-ביתית2,3. למרות הדמיון לכאורה הזה ארכיטקטורה ותפקיד תפקודי של שתי הרקמות שונים. בעוד המטריצה של סחוס מפרקי נוצרת בעיקר מרשת קולגן מסוג II היוצרת ארקייד, ה- IVD מורכב משלושה סוגים שונים של רקמות: פולפוס הגרעין העשיר בקולגן II במרכז תופס עומסים ציריים ומעביר אותם לטבעת מקיפה של סיבי קולגן עגולים מסוג I צפופים הנקראים סינולוס סיביים. תפקידם הוא לספוג את הלחצים הארזיים המתורגמים המתקבלים על ידי הגרעין הפרוטאוגליקני והעשיר במים עם חוזק הסיבים האורך המתוח שלהם. בחלק העליון והתחתון של כל גרעין ואנולוס, לוחית קצה קרטלגינית היאלין יוצרת את הצומת לחוליות הסמוכות4 (איור 1).
בסחוס מפרקי ניתן למצוא ארבעה דפוסי כונדרוציטים מרחביים נפרדים: זוגות, מחרוזות, מחרוזות כפולות, אשכולות קטנים בהתאמה גדולים5,6,7 ( איור2). שינויים בתבנית זו משויכים להתפרצות OA ולהתקדמות8,9. ארגון chondrocyte מרחבי מעיד גם על מאפיין פונקציונלי ישיר של סחוס, כלומר נוקשותו, הדגיש את הרלוונטיות התפקודית של גישה זו דירוג מבוסס תמונה10,11. דפוסים אלה יכולים גם להיות מזוהים עם טכנולוגיה כבר קיים קליני זמין12. בשל הדמיון בין IVD וסחוס מפרקי, ניתן לשער כי דפוסי chondrocyte אופייניים נמצאים גם בעירוי. היווצרות אשכול היא תופעה שנצפתה גם בהבחנה מנוונת13,14.
כאשר מנסים לנתח ארגון סלולרי מרחבי בעירוי, יש צורך להתגבר על מספר קשיים טכניים שאינם קיימים בעת חקירת סחוס מפרקי:
ראשית, עיבוד הרקמה עצמה הוא הרבה יותר מאתגר מאשר עם סחוס היאלין הומוגני אשר מורכב בעיקר קולגן סוג II. רכיב הסיבים העיקרי של ה-IVD הוא קולגן מסוג I, מה שמקשה הרבה יותר על יצירת מקטעים היסטולוגיים דקים. בעוד בסחוס מפרקי היאלין אפילו חלקים עבים ניתן לנתח בקלות בשל אופי “דמוי זכוכית” של הרקמה, סוג הקולגן I רשת של IVD הוא אופטי מאוד בלתי חדיר. מסיבה זו, רעש רקע חזק הוא בעיה נפוצה בהצטולוגיה של IVD. דרך מהירה וזולה לחדור לרקמה צפופה אופטית זו היא שימוש במכשיר חתך אופטי למשל, באמצעות אפופוטם. באפוטום כזה, רשת מוכנסת במסלול התאורה של מיקרוסקופ פלואורסצנטי קונבנציונלי. מול הרשת מונחת צלחת זכוכית מקבילה למטוס. פעולה זו נוטה קדימה ואחורה ובכך מקרינת את הרשת בתמונה בשלושה מיקומים שונים. עבור כל מיקום z, שלוש תמונות גולמיות עם הרשת המוקרנת נוצרות ומונחות על-גבי. באמצעות תוכנה מיוחדת, ניתן לחשב את האור מחוץ למיקוד. העיקרון הבסיסי הוא שאם הרשת גלויה, המידע הזה נמצא במוקד, אם לא הוא נחשב לא ממוקד. עם טכניקה זו, תמונות ממוקדות היטב ברזולוציה גבוהה ניתן לרכוש בפרק זמן סביר.
שנית, קשה להשיג את הרקמה מתורמים אנושיים. בעת ביצוע החלפת ברך מוחלטת, ניתן להשיג את כל פני השטח של המפרק לניתוח נוסף במהלך הניתוח. למרות דלקת מפרקים ניוונית של מפרק diarthrodial היא גם מחלה של המפרק כולו, ישנם בכל זאת הבדלים מוקדיים חזקים באיכות הסחוס עם בדרך כלל כמה אזורים של המפרק עדיין להיות שלם, למשל בשל עומס מופחת באזור זה. מצב זה שונה בהפריה הVD, שם הניתוח מבוצע בדרך כלל רק כאשר הדיסק נהרס ברחבי העולם. בעת קבלת רקמות מתורמים אנושיים מחדר הניתוח, הרקמה גם מקוטעת מאוד ויש צורך להקצות כראוי את הרקמה לאחד משלושת סוגי הסחוס של ה- IVD לפני ביצוע ניתוחים נוספים. כדי לאפשר ניתוחים מפורטים יותר של קטעי רקמות גדולים יותר ולבדוק את ההתפתחות העוברית של IVD הבחירה של אורגניזם מודל בעלי חיים היא, אם כן, הכרחית.
בעת בחירת אורגניזם מודל כזה חשוב שתהיה מערכת הדומה לדיסק האנושי ביחס לאנטומיה ומידותיו, העמסה המכנית שלו, אוכלוסיית התא הנוכחית כמו גם הרכב הרקמה שלה. לצורך הטכניקה המוצגת כאן אנו מציעים את השימוש ברקמת דיסק מותני בקר: מאפיין קריטי של הדיסק האנושי וכתוצאה מכך הפוטנציאל ההתחדשותי הנמוך שלו הוא אובדן תאים לא-רדודליים במהלך ההבשלה בגרעין. עם זאת, במודלים רבים אורגניזמים notochordal תאים ניתן לזהות כל חייהם. לרוב בעלי החיים המעטים שמאבדים את התאים הלא-נוכרודים שלהם כמו כבשים, עזים או כלבי כונדרודיסטרופיג יש IVD שהוא קטן בהרבה מדיסקים אנושיים. רק דיסקים מותניים של בקר נוכחים עם קוטר דיסק קשתי דומה לאלה של IVDs אנושי15.
גורם מפתח המוביל לניוון דיסק מוקדם הוא טעינה מכנית מוגזמת. הלחצים התוך-ממדיים של פרה עומדת בעמוד השדרה המותני הם בסביבות 0.8 MPa כשעמוד השדרה מיושר אופקית. באופן מפתיע לחצים אלה דומים ללחצים התוך-דיקליים המותניים שדווחו לעמוד השדרה האנושי הזקוף (0.5 MPa)15,16. גם כמות המים ופרוטוגליקנים בדיסקים של בקר דומה לזו של ה- IVD מבני אדם צעירים17. לכן, למרות שדפוס התנועה בפועל של מקטעי התנועה עשוי להיות שונה בבעלי חיים מרובעים מהאדם הדו-רגליים, ביחס למאפייני הטעינה והדיסק הכוללים, הפרה קרובה הרבה יותר לביולוגיה האנושית מאשר מודלים בעלי חיים מבוססים אחרים עבור IVD כגון כבשים וכלבים.
בפרוטוקול זה אנו מציגים טכניקה כיצד לנתח שינויים בהפריה חוץ גופית מנקודת המבט של ארגון כונדרוציטים מרחבי מהתפתחות עוברית מוקדמת ועד ניוון שלב הסיום.
באמצעות מיקרוסקופיית פלואורסצנטיות מוגברת על ידי הדמיית פסיפס וחתך אופטי, הערכנו את הסידור המרחבי של כונדרוציטים באנולוס של IVD המותני לאורך כל הפיתוח, ההתבגרות, ניוון. בעוד רקמות ניווניות ניתן לקצור מחולים שקיבלו ניתוח עמוד השדרה עבור ניוון דיסק, ניתוח של התקופה העוברית ושלב ההתבגרות נדר…
The authors have nothing to disclose.
אנו מודים למחברים השותפים שלנו מהפרסומים המקוריים על עזרתם ותמיכתם. אנו מודים לשרלוט אמה במברגר על שעזרה להשיג את תמונות האפוטום.
Amphotericin B | Merck KGaA, Germany | A2942 | |
Adhesion Microscope Slides SuperFrost Plus | R. Langenbrinck, Germany | 03-0060 | |
ApoTome | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | 462000115 | |
AxioVision Rel. 4.8 with Modul MosaiX | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | ||
CellMask Actin Tracking Stain | Thermo Fischer Scientific, US | A57249 | |
Cryostat | Leica Biosystems, US | CM3050S | |
DAPI | Thermo Fischer Scientific, US | D1306 | |
Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) | Gibco, Life Technologies, Germany | 41966052 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma-Aldrich, US | 60004 | |
Fluorescence Miscoscope – Axio Observer Z1 with Axio Cam MR3 and Colibri | Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Germany | 3834000604 | |
Formaldehyde | Merck KGaA, Germany | 104002 | |
Image J 1.53a, with Cell counter plugin | National Insittute of Health (NIH), US | ||
Invitrogen Alexa Fluor 568 Phalloidin | Thermo Fischer Scientific, US | A12380 | |
Microscopic Cover Glasses | R. Langenbrinck, Germany | 01-1818/1 | |
PAP Pen Liquid Blocker | Science Sevices GmbH, Germany | N71310 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich, US | P4333 | |
Phosphate buffered saline | Sigma-Aldrich,US | P5119 | |
Scalpel | pf medical AG, Germany | 2023-01 | |
Tissue-tek O.C.T. Compound | Sakura Finetek, Netherlands | SA6255012 |