Summary

लिवर मेटास्टेसिस स्ट्रोमा का अध्ययन करने के लिए कोलोरेक्टल कैंसर ऑर्गेनोइड्स के पोर्टल वेन इंजेक्शन

Published: September 03, 2021
doi:

Summary

कोलोरेक्टल कैंसर (सीआरसी) ऑर्गेनोइड्स का पोर्टल शिरा इंजेक्शन स्ट्रोमा-समृद्ध यकृत मेटास्टेसिस उत्पन्न करता है। सीआरसी हेपेटिक मेटास्टेसिस का यह माउस मॉडल ट्यूमर-स्ट्रोमा इंटरैक्शन का अध्ययन करने और उपन्यास स्ट्रोमा-निर्देशित चिकित्सीय जैसे एडेनो-संबद्ध वायरस-मध्यस्थता जीन उपचार विकसित करने के लिए एक उपयोगी उपकरण का प्रतिनिधित्व करता है।

Abstract

कोलोरेक्टल कैंसर (सीआरसी) का यकृत मेटास्टेसिस कैंसर से संबंधित मृत्यु का एक प्रमुख कारण है। कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट्स (सीएएफ), ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट का एक प्रमुख घटक, मेटास्टैटिक सीआरसी प्रगति में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं और खराब रोगी के पूर्वानुमान की भविष्यवाणी करते हैं। हालांकि, मेटास्टैटिक कैंसर कोशिकाओं और सीएएफ के बीच क्रॉसस्टॉक का अध्ययन करने के लिए संतोषजनक माउस मॉडल की कमी है। यहां, हम यह जांचने के लिए एक विधि प्रस्तुत करते हैं कि यकृत मेटास्टेसिस प्रगति को मेटास्टैटिक आला द्वारा कैसे विनियमित किया जाता है और संभवतः स्ट्रोमा-निर्देशित चिकित्सा द्वारा नियंत्रित किया जा सकता है। सीआरसी ऑर्गेनोइड्स के पोर्टल शिरा इंजेक्शन ने एक डेस्मोप्लास्टिक प्रतिक्रिया उत्पन्न की, जिसने मानव सीआरसी यकृत मेटास्टेसिस के फाइब्रोब्लास्ट-समृद्ध हिस्टोलॉजी को ईमानदारी से दोहराया। यह मॉडल इंट्रा-प्लीहा इंजेक्शन मॉडल की तुलना में जिगर में एक उच्च ट्यूमर बोझ के साथ ऊतक-विशिष्ट था, जो माउस अस्तित्व के विश्लेषण को सरल बनाता है। लूसिफेरस-व्यक्त ट्यूमर ऑर्गेनोइड्स को इंजेक्ट करके, ट्यूमर विकास कैनेटीक्स को विवो इमेजिंग में मॉनिटर किया जा सकता है। इसके अलावा, यह प्रीक्लिनिकल मॉडल ट्यूमर मेसेनकाइम को लक्षित करने वाले चिकित्सीय की प्रभावकारिता का आकलन करने के लिए एक उपयोगी मंच प्रदान करता है। हम यह जांचने के तरीकों का वर्णन करते हैं कि क्या हेपेटोसाइट्स के लिए ट्यूमर-अवरोधक स्ट्रोमल जीन के एडेनो-संबद्ध वायरस-मध्यस्थता वितरण ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट को फिर से तैयार कर सकते हैं और माउस के अस्तित्व में सुधार कर सकते हैं। यह दृष्टिकोण सीआरसी के यकृत मेटास्टेसिस को बाधित करने के लिए उपन्यास चिकित्सीय रणनीतियों के विकास और मूल्यांकन को सक्षम बनाता है।

Introduction

कोलोरेक्टल कैंसर (सीआरसी) दुनिया भर में कैंसर की मृत्यु दर का एक प्रमुख कारण है। सीआरसी रोगियों के आधे से अधिक यकृत मेटास्टेसिस विकसित करते हैं जो पोर्टल शिरा प्रसार1 के माध्यम से होता है। वर्तमान में, कोई प्रभावी चिकित्सीय नहीं है जो उन्नत यकृत मेटास्टेसिस का इलाज कर सकता है, और अधिकांश रोगी मेटास्टैटिक बीमारी से पीड़ित हैं।

मेटास्टैटिक आला या ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट प्रसारित सीआरसी कोशिकाओं के एनग्राफ्टमेंट और विकास में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाताहै। कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट्स (सीएएफ), ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट का एक प्रमुख घटक, विकास कारकों को स्रावित करने, बाह्य कोशिकीय मैट्रिक्स (ईसीएम) को फिर से तैयार करने और प्रतिरक्षा परिदृश्य और एंजियोजेनेसिस 3,4,5 को संशोधित करने के माध्यम से कैंसर की प्रगति को बढ़ावा देने या रोकने के लिए। सीएएफ भी chemotherapys और immunotherapys 3 के लिए प्रतिरोध प्रदान करतेहैं। इसके अलावा, सीएएफ सीआरसी यकृत मेटास्टेसिस की दीक्षा और प्रगति को विनियमित करते हैं और सीआरसी 3,6,7,8 वाले रोगियों में पूर्वानुमान की भविष्यवाणी करते हैं इस प्रकार, सीआरसी यकृत मेटास्टेसिस को बाधित करने के लिए चिकित्सीय रणनीतियों के विकास के लिए सीएएफ से संबंधित कारकों का शोषण किया जा सकता है। हालांकि, मेटास्टैटिक ट्यूमर स्ट्रोमा का अध्ययन करने के लिए संतोषजनक माउस मॉडल की कमी स्ट्रोमा-लक्षित उपचार विकसित करने के लिए एक बड़ी बाधा रही है।

वर्तमान में, सीआरसी लिवर मेटास्टेसिस का अध्ययन करने के लिए पशु मॉडल में प्राथमिक सीआरसी मॉडल शामिल हैं जो अनायास यकृत मेटास्टेसिस और कैंसर सेल प्रत्यारोपण मॉडल को जिगर में विकसित करते हैं। प्राथमिक सीआरसी माउस मॉडल, जैसे आनुवंशिक रूप से इंजीनियर माउस मॉडल और कैंसर कोशिकाओं के कोलोनिक इंजेक्शन, शायद ही कभी जिगरको मेटास्टेसिस दिखाते हैं 9,10,11,12। इसके अलावा, यहां तक कि अगर एक जिगर मेटास्टेसिस मनाया जाता है, तो ये मॉडल प्राथमिक ट्यूमर प्रेरण से मेटास्टेसिस तक लंबी विलंबता दिखाते हैं, और संभावित रूप से प्राथमिक ट्यूमर के बोझ से मर जातेहैं। कुशलतापूर्वक सीआरसी यकृत मेटास्टेसिस उत्पन्न करने के लिए, सुसंस्कृत सीआरसी कोशिकाओं को तीन इंजेक्शन दृष्टिकोणों का उपयोग करके जिगर में प्रत्यारोपित किया जाता है: इंट्रा-स्प्लेनिक इंजेक्शन, जिगर में प्रत्यक्ष इंट्रा-पैरेन्काइमल इंजेक्शन, और पोर्टल शिरा इंजेक्शन। इंट्रा-स्प्लेनिक रूप से इंजेक्ट की गई कैंसर कोशिकाएं प्लीहा नस, पोर्टल नस, और अंततः जिगर13,14 में फैल जाती हैं। हालांकि, इंट्रा-स्प्लेनिक इंजेक्शन अन्य प्रत्यारोपण मॉडल15,16 की तुलना में कम ट्यूमर लेने का अनुपात पैदा करता है। इंट्रा-स्प्लेनिक इंजेक्शन के साथ, प्लीहा के सर्जिकल हटाने को प्लीहा में कैंसर के विकास से बचने के लिए किया जाता है, जो संभावित रूप से प्रतिरक्षा कोशिका परिपक्वता से समझौता कर सकताहै 17। इसके अलावा, इंट्रा-स्प्लेनिक इंजेक्शन के परिणामस्वरूप प्लीहा और उदर गुहा18 में अनपेक्षित ट्यूमर की वृद्धि भी हो सकती है, जो यकृत मेटास्टेसिस विश्लेषण को जटिल बनाती है। जिगर में प्रत्यक्ष इंट्रा-पैरेन्काइमल इंजेक्शन कुशलतापूर्वक यकृत मेटास्टेसिस 16,19,20 को प्रेरित करता है फिर भी, यह दृष्टिकोण पूरी तरह से यकृत मेटास्टेसिस के जैविक चरण को दोहराता नहीं है जो स्वाभाविक रूप से पोर्टल शिरा प्रसार के माध्यम से होता है। जिगर में सीधे इंजेक्शन का उपयोग करना, एक गैर-पोर्टल में कैंसर कोशिकाओं का प्रवेश, लेकिन प्रणालीगत परिसंचरण के परिणामस्वरूप कई बड़े फेफड़ों के मेटास्टेसिस भी हो सकतेहैं। हालांकि सीआरसी लिवर मेटास्टेसिस वाले अधिकांश रोगी जिगर21 में कई ट्यूमर नोड्यूल दिखाते हैं, एक विशिष्ट यकृत लोब में प्रत्यक्ष इंजेक्शन एक एकल ट्यूमर द्रव्यमान19,20 उत्पन्न करता है। पोर्टल शिरा इंजेक्शन या mesenteric शिरा इंजेक्शन, हालांकि तकनीकी रूप से चुनौतीपूर्ण, जिगर में ट्यूमर कोशिकाओं के कुशल वितरण की अनुमति देता है एक तरह से है कि रोगियों में देखा विकास पैटर्न recapitulates17. यह रणनीति माध्यमिक-साइट मेटास्टेसिस की संभावना को कम कर सकती है और जिगर में कैंसर कोशिकाओं के तेजी से विकास को सक्षम बनाती है, जिससे माउस अस्तित्व विश्लेषण को सरल बनाया जा सकता है।

ऐतिहासिक रूप से, कोलोरेक्टल कैंसर सेल लाइनों जैसे माउस एमसी -38, मानव एचटी -29, और एसडब्ल्यू -620 का उपयोग यकृत मेटास्टेसिस22,23 के माउस मॉडल उत्पन्न करने के लिए किया गया था। हालांकि, ये कोलोरेक्टल कैंसर सेल लाइनें एक डेस्मोप्लास्टिक स्ट्रोमल प्रतिक्रिया को प्रेरित नहीं करती हैं। ट्यूमर में कम स्ट्रोमल सामग्री कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट की जैविक भूमिकाओं की जांच करना मुश्किल बनाती है। सीआरसी ऑर्गेनोइड्स और उनके प्रत्यारोपण में हाल की प्रगति ने कैंसर की प्रगतिमें स्ट्रोमा की महत्वपूर्ण भूमिकाओं का आकलन करने के लिए उपयोगी प्लेटफार्मों की पेशकश की है। सीआरसी ऑर्गेनोइड्स का यकृत प्रत्यारोपण एक फाइब्रोब्लास्ट-समृद्ध ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट उत्पन्न करता है और स्ट्रोमल अनुसंधान 6,25 में उपन्यास अंतर्दृष्टि प्रदान करता है। वर्तमान में, ऑर्गेनोइड्स के पोर्टल या मेसेन्टेरिक शिरा इंजेक्शन सीआरसी यकृत मेटास्टेसिस 6,25,26,27,28 उत्पन्न करने के लिए एक स्वर्ण मानक दृष्टिकोण बन गया है फिर भी, हमारे ज्ञान के लिए, किसी भी पिछले कागजात ने कोलोरेक्टल ट्यूमरोइड्स के पोर्टल शिरा इंजेक्शन के लिए विस्तृत तरीकों का वर्णन नहीं किया है। यहां, हम उपन्यास एडेनो-संबद्ध वायरस (एएवी) -मध्यस्थता स्ट्रोमा-निर्देशित चिकित्सा विकसित करने के लिए सीआरसी ऑर्गेनोइड्स के पोर्टल शिरा इंजेक्शन का उपयोग करने के लिए एक पद्धति प्रस्तुत करते हैं।

हेपेटोसाइट्स यकृत में मेटास्टैटिक ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट का एक महत्वपूर्ण घटक है और मेटास्टैटिक कैंसर की प्रगति में महत्वपूर्ण भूमिका निभाताहै। गैर-नियोप्लास्टिक रोगियों30,31 में हेपेटोसाइट्स में प्रोटीन अभिव्यक्ति को प्रेरित करने के लिए एएवी जीन थेरेपी दृष्टिकोण की सफलता से प्रेरित होकर, हमने एक समान दृष्टिकोण की जांच की, लेकिन सीआरसी25 में यकृत ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट को संशोधित करने का उद्देश्य। इस प्रकार, हम यकृत ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट को संशोधित करने के लिए एंटी-ट्यूमरजेनिक प्रोटीन की अभिव्यक्ति को प्रेरित करने के लिए एएवी 8 के पूंछ शिरा इंजेक्शन का भी वर्णन करते हैं। AAV8 serotype, वायरस उत्पादन के दौरान वायरल capsid प्रोटीन की पसंद द्वारा नामित, हेपेटोसाइट्स की विशेष रूप से उच्च transduction दक्षता की ओर जाता है (यानी, जिगर ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट में लक्षित जीन अभिव्यक्ति)32. हमने पहले दिखाया है कि Islr (इम्युनोग्लोबुलिन superfamily जिसमें ल्यूसीन-समृद्ध दोहराव होता है) एक सीएएफ-विशिष्ट जीन है जो हड्डी मॉर्फोजेनेटिक प्रोटीन (बीएमपी) सिग्नलिंग को प्रेरित करता है, सीआरसी ट्यूमरोइड विकास को कम करता है, और Lgr5 + आंतों के स्टेम सेल भेदभाव को बढ़ावा देताहै। हमने परीक्षण किया कि क्या एएवी 8-हेपेटोसाइट्स में कैंसर-निरोधक स्ट्रोमल जीन, इसएलआर के मध्यस्थता ओवरएक्सप्रेशन, एएवी 8-इस्लर-उपचारित चूहों में सीआरसी ट्यूमरोइड्स के पोर्टल शिरा इंजेक्शन का प्रदर्शन करके यकृत मेटास्टेसिस प्रगति को क्षीण कर सकता है।

इस पेपर में, हम पहले जिगर उष्णकटिबंधीय एएवी की पूंछ शिरा इंजेक्शन प्रक्रिया का वर्णन करते हैं। फिर, हम एएवी-उपचारित चूहों में ट्यूमरॉइड सेल तैयारी और पोर्टल शिरा इंजेक्शन के लिए एक विधि का वर्णन करते हैं। अंत में, हम स्ट्रोमा-निर्देशित चिकित्सीय की प्रभावकारिता का आकलन करने के लिए मेटास्टैटिक ट्यूमर प्रगति की निगरानी करने के लिए दृष्टिकोण प्रस्तुत करते हैं।

Protocol

इस लेख में सभी पशु प्रक्रियाओं की समीक्षा की गई और दक्षिण ऑस्ट्रेलियाई स्वास्थ्य और चिकित्सा अनुसंधान संस्थान पशु नैतिकता समिति (अनुमोदन संख्या, SAM322) द्वारा अनुमोदित किया गया। 1. एडेनो से जुड?…

Representative Results

एक ट्यूमर-निरोधक स्ट्रोमल जीन के एएवी-मध्यस्थता ओवरएक्सप्रेशन को प्रेरित करने के लिए, हेपेटोसाइट्स में, Islr 4,25,43,44, हम अंतःशिरा रूप से Islr-एन्कोडिंग AAV8 को इंजेक?…

Discussion

इस अध्ययन में, हमने दिखाया है कि माउस सीआरसी ऑर्गेनोइड्स के पोर्टल शिरा इंजेक्शन को फिर से विकसित किया जाता है जो फाइब्रोब्लास्ट-समृद्ध यकृत मेटास्टेसिस उत्पन्न करता है जो मानव सीआरसी यकृत मेटास्टेस…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन को राष्ट्रीय स्वास्थ्य और चिकित्सा अनुसंधान परिषद (APP1156391 से D.L.W., S.L.W.) से अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था। (APP1081852 करने के लिए D.L.W., APP1140236 S.L.W., APP1099283 करने के लिए D.L.W.,); कैंसर काउंसिल एसए बीट कैंसर परियोजना अपने दाताओं और स्वास्थ्य विभाग के माध्यम से दक्षिण ऑस्ट्रेलिया की राज्य सरकार की ओर से (MCF0418 S.L.W., D.L.W.) के माध्यम से; जापान के शिक्षा, संस्कृति, खेल, विज्ञान और प्रौद्योगिकी मंत्रालय द्वारा कमीशन किए गए वैज्ञानिक अनुसंधान (बी) (20H03467 से एमटी) के लिए अनुदान-इन-एड; AMED-CREST (चिकित्सा अनुसंधान और विकास के लिए जापान एजेंसी, विकास विज्ञान और प्रौद्योगिकी के लिए कोर अनुसंधान (19gm0810007h0104 और 19gm1210008s0101 से A.E.); कैंसर अनुसंधान और चिकित्सीय विकास के लिए परियोजना (P-CREATE) AMED से (19cm0106332h0002 से A.E.); युवा शोधकर्ताओं के लिए विज्ञान विदेशी चुनौती कार्यक्रम के संवर्धन के लिए जापान सोसायटी (एच.के.), टेकेडा साइंस फाउंडेशन फैलोशिप (एच.के.), ग्रेटन इंटरनेशनल पीएचडी छात्रवृत्ति (एच.के.के.के.), लायंस मेडिकल रिसर्च फाउंडेशन छात्रवृत्ति (के.जी.)।

हम वेक्टर और जीनोम इंजीनियरिंग सुविधा (वीजीईएफ), बच्चों के चिकित्सा अनुसंधान संस्थान (सीएमआरआई) (एनएसडब्ल्यू, ऑस्ट्रेलिया) में डॉ लेज़ेक लिसोव्स्की को पुनः संयोजक एएवी वैक्टर के उत्पादन के लिए धन्यवाद देते हैं।

Materials

10% Formalin Sigma HT501128
15 mL centrifuge tube Corning 430791
33-gauge needle TSK LDS-33013 For portal vein injection
4-0 vicryl suture ETHICON J494G
40-µm cell strainer Corning 431750
5 mL Syringe BD 302130 Used to apply saline to the intestine after portal vein injection
50 mL centrifuge tube Corning 430829
50 mL syringe TERUMO SS*50LE Luer lock syringe for perfusion fixation
70% Isopropyl alcohol wipe Briemar 5730
Anaesthesia machine Darvall 9356
αSMA antibody DAKO M0851 Clone 1A4. 1/500 dilution for immunohistochemistry
Buprenorphine TROY N/A ilium Temvet Injection, 300 µg/ml Buprenorphine
Cotton buds Johnson & Johnson N/A Johnson's pure cotton bud applicators. Need to be autoclaved before use.
D-luciferin Biosynth L-8220
Electric shaver Sold by multiple suppliers
Forceps Sold by multiple suppliers
Hamilton syringe HAMILTON 81020 For portal vein injection
Heat box (animal warming chamber) Datesand MK3
Heat lamp Sold by multiple suppliers
Hemostatic sponge Pfizer 09-0891-04-015 Gelfoam absorbable gelatin sponge, USP, 12-7 mm
India ink Talens 44727000
Injection syringe and needle BD 326769 For tail vein injection
Islr probe (RNAscope) ACD 450041
Isoflurane Henry Schein 988-3244
IVIS Spectrum In Vivo Imaging System Perkin Elmer 124262
Living Image Software Perkin Elmer 128113
Matrigel Corning 356231
MRI fibrosis tool N/A N/A https://github.com/MontpellierRessourcesImagerie/imagej_macros_and_scripts/wiki/MRI_Fibrosis_Tool
Phosphate-buffered saline (PBS) Sigma D8537
RNAscope kit ACD 322300
Rodent restrainer Sold by multiple suppliers
Rosa26-Cas9 mouse The Jackson Laboratory 024858
Saline Pfizer PHA19042010
Scissors Sold by multiple suppliers
Skin staplers Able Scientific AS59028 9 mm wound clips
Stapler applicator Able Scientific AS59026 9 mm wound clip applicator
Stapler remover Able Scientific AS59037 Wound clip remover
Surgical drape Multigate 29-220
Surgical gauze Sentry Medical GS001
Topical anesthesia cream EMLA N/A EMLA 5% cream, 25 mg/g lignocaine and 25 mg/g prilocaine
TrypLE Express Gibco 12605028 Recombinant cell-dissociation enzyme mix
Y-27632 Tocris 1254

Referências

  1. Zarour, L. R., et al. Colorectal cancer liver metastasis: Evolving paradigms and future directions. Cell and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 3 (2), 163-173 (2017).
  2. Peinado, H., et al. Pre-metastatic niches: organ-specific homes for metastases. Nature Reviews. Cancer. 17 (5), 302-317 (2017).
  3. Kobayashi, H., et al. Cancer-associated fibroblasts in gastrointestinal cancer. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 16 (5), 282-295 (2019).
  4. Mizutani, Y., et al. Meflin-positive cancer-associated fibroblasts inhibit pancreatic carcinogenesis. Pesquisa do Câncer. 79 (20), 5367-5381 (2019).
  5. Gieniec, K. A., Butler, L. M., Worthley, D. L., Woods, S. L. Cancer-associated fibroblasts-heroes or villains. British Journal of Cancer. 121 (4), 293-302 (2019).
  6. Tauriello, D. V. F., et al. TGFbeta drives immune evasion in genetically reconstituted colon cancer metastasis. Nature. 554 (7693), 538-543 (2018).
  7. Calon, A., et al. Dependency of colorectal cancer on a TGF-beta-driven program in stromal cells for metastasis initiation. Cancer Cell. 22 (5), 571-584 (2012).
  8. Shen, Y., et al. Reduction of liver metastasis stiffness improves response to cevacizumab in metastatic colorectal cancer. Cancer Cell. 37 (6), 800-817 (2020).
  9. Romano, G., Chagani, S., Kwong, L. N. The path to metastatic mouse models of colorectal cancer. Oncogene. 37 (19), 2481-2489 (2018).
  10. Roper, J., et al. In vivo genome editing and organoid transplantation models of colorectal cancer and metastasis. Nature Biotechnology. 35 (6), 569-576 (2017).
  11. Lannagan, T. R. M., et al. Genetic editing of colonic organoids provides a molecularly distinct and orthotopic preclinical model of serrated carcinogenesis. Gut. 68 (4), 684-692 (2019).
  12. Lannagan, T. R., Jackstadt, R., Leedham, S. J., Sansom, O. J. Advances in colon cancer research: in vitro and animal models. Current Opinion in Genetics & Development. 66, 50-56 (2021).
  13. Soares, K. C., et al. A preclinical murine model of hepatic metastases. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (91), e51677 (2014).
  14. Yazdani, H. O., Tohme, S. Murine model of metastatic liver tumors in the setting of ischemia reperfusion injury. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (150), e59748 (2019).
  15. Frampas, E., et al. The intraportal injection model for liver metastasis: advantages of associated bioluminescence to assess tumor growth and influences on tumor uptake of radiolabeled anti-carcinoembryonic antigen antibody. Nuclear Medicine Communications. 32 (2), 147-154 (2011).
  16. O’Rourke, K. P., et al. Transplantation of engineered organoids enables rapid generation of metastatic mouse models of colorectal cancer. Nature Biotechnology. 35 (6), 577-582 (2017).
  17. Goddard, E. T., Fischer, J., Schedin, P. A portal vein injection model to study liver metastasis of breast cancer. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (118), e54903 (2016).
  18. Lee, W. Y., Hong, H. K., Ham, S. K., Kim, C. I., Cho, Y. B. Comparison of colorectal cancer in differentially established liver metastasis models. Anticancer Research. 34 (7), 3321-3328 (2014).
  19. Kollmar, O., Schilling, M. K., Menger, M. D. Experimental liver metastasis: standards for local cell implantation to study isolated tumor growth in mice. Clinical & Experimental Metastasis. 21 (5), 453-460 (2004).
  20. McVeigh, L. E., et al. Development of orthotopic tumour models using ultrasound-guided intrahepatic injection. Scientific Reports. 9 (1), 9904 (2019).
  21. Engstrand, J., Nilsson, H., Stromberg, C., Jonas, E., Freedman, J. Colorectal cancer liver metastases – a population-based study on incidence, management and survival. BMC Cancer. 18 (1), 78 (2018).
  22. Thalheimer, A., et al. The intraportal injection model: a practical animal model for hepatic metastases and tumor cell dissemination in human colon cancer. BMC Cancer. 9, 29 (2009).
  23. Limani, P., et al. Selective portal vein injection for the design of syngeneic models of liver malignancy. American Journal of Physiology Gastrointestinal and Liver Physiology. 310 (9), 682-688 (2016).
  24. Lau, H. C. H., Kranenburg, O., Xiao, H., Yu, J. Organoid models of gastrointestinal cancers in basic and translational research. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 17 (4), 203-222 (2020).
  25. Kobayashi, H., et al. The balance of stromal BMP signaling mediated by GREM1 and ISLR drives colorectal carcinogenesis. Gastroenterology. 160 (4), 1224-1239 (2021).
  26. Fumagalli, A., et al. Genetic dissection of colorectal cancer progression by orthotopic transplantation of engineered cancer organoids. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (12), 2357-2364 (2017).
  27. Fumagalli, A., et al. Plasticity of Lgr5-Negative Cancer Cells Drives Metastasis in Colorectal Cancer. Cell Stem Cell. 26 (4), 569-578 (2020).
  28. de Sousa e Melo, F., et al. A distinct role for Lgr5(+) stem cells in primary and metastatic colon cancer. Nature. 543 (7647), 676-680 (2017).
  29. Lee, J. W., et al. Hepatocytes direct the formation of a pro-metastatic niche in the liver. Nature. 567 (7747), 249-252 (2019).
  30. Dunbar, C. E., et al. Gene therapy comes of age. Science. 359 (6372), 4672 (2018).
  31. George, L. A., et al. Hemophilia B gene therapy with a high-specific-activity factor IX variant. The New England Journal of Medicine. 377 (23), 2215-2227 (2017).
  32. Colella, P., Ronzitti, G., Mingozzi, F. Emerging issues in AAV-mediated in vivo gene therapy. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 8, 87-104 (2018).
  33. Fripont, S., Marneffe, C., Marino, M., Rincon, M. Y., Holt, M. G. Production, purification, and quality control for adeno-associated virus-based vectors. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (143), e58960 (2019).
  34. Sands, M. S. AAV-mediated liver-directed gene therapy. Methods in Molecular Biology. 807, 141-157 (2011).
  35. O’Rourke, K. P., Ackerman, S., Dow, L. E., Lowe, S. W. Isolation, culture, and maintenance of mouse intestinal stem cells. Bio-protocol. 6 (4), 1733 (2016).
  36. Ellerstrom, C., Strehl, R., Noaksson, K., Hyllner, J., Semb, H. Facilitated expansion of human embryonic stem cells by single-cell enzymatic dissociation. Stem Cells. 25 (7), 1690-1696 (2007).
  37. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  38. Oshima, G., et al. Advanced animal model of colorectal metastasis in liver: Imaging techniques and properties of metastatic clones. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (117), e54657 (2016).
  39. Anker, J. F., Mok, H., Naseem, A. F., Thumbikat, P., Abdulkadir, S. A. A bioluminescent and fluorescent orthotopic syngeneic murine model of androgen-dependent and castration-resistant prostate cancer. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (133), e57301 (2018).
  40. Baklaushev, V. P., et al. Luciferase expression allows bioluminescence imaging but imposes limitations on the orthotopic mouse (4T1) model of breast cancer. Scientific Reports. 7 (1), 7715 (2017).
  41. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e3564 (2012).
  42. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  43. Hara, A., et al. Roles of the mesenchymal stromal/stem cell marker meflin in cardiac tissue repair and the development of diastolic dysfunction. Circulation Research. 125 (4), 414-430 (2019).
  44. Hara, A., et al. Meflin defines mesenchymal stem cells and/or their early progenitors with multilineage differentiation capacity. Genes to Cells. 26 (7), 495-512 (2021).
  45. Wang, H., et al. RNAscope for in situ detection of transcriptionally active human papillomavirus in head and neck squamous cell carcinoma. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (85), e51426 (2014).
  46. Lattouf, R., et al. Picrosirius red staining: a useful tool to appraise collagen networks in normal and pathological tissues. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 62 (10), 751-758 (2014).
  47. Lugli, A., et al. Recommendations for reporting tumor budding in colorectal cancer based on the International Tumor Budding Consensus Conference (ITBCC) 2016. Modern Pathology. 30 (9), 1299-1311 (2017).
  48. Sangisetty, S. L., Miner, T. J. Malignant ascites: A review of prognostic factors, pathophysiology and therapeutic measures. World Journal of Gastrointest Surgery. 4 (4), 87-95 (2012).
  49. Jung, B., Staudacher, J. J., Beauchamp, D. Transforming growth factor beta superfamily signaling in development of colorectal cancer. Gastroenterology. 152 (1), 36-52 (2017).
  50. Hapach, L. A., Mosier, J. A., Wang, W., Reinhart-King, C. A. Engineered models to parse apart the metastatic cascade. NPJ Precision Oncology. 3, 20 (2019).
  51. Jackstadt, R., et al. Epithelial NOTCH signaling rewires the tumor microenvironment of colorectal cancer to drive poor-prognosis subtypes and metastasis. Cancer Cell. 36 (3), 319-336 (2019).
  52. Lo, Y. -. H., Karlsson, K., Kuo, C. J. Applications of organoids for cancer biology and precision medicine. Nature Cancer. 1 (8), 761-773 (2020).
  53. van de Wetering, M., et al. Prospective derivation of a living organoid biobank of colorectal cancer patients. Cell. 161 (4), 933-945 (2015).
  54. Ben-David, U., et al. Genetic and transcriptional evolution alters cancer cell line drug response. Nature. 560 (7718), 325-330 (2018).
  55. Kattenhorn, L. M., et al. Adeno-associated virus gene therapy for liver disease. Human Gene Therapy. 27 (12), 947-961 (2016).
check_url/pt/62630?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Kobayashi, H., Gieniec, K. A., Ng, J. Q., Goyne, J., Lannagan, T. R. M., Thomas, E. M., Radford, G., Wang, T., Suzuki, N., Ichinose, M., Wright, J. A., Vrbanac, L., Burt, A. D., Takahashi, M., Enomoto, A., Worthley, D. L., Woods, S. L. Portal Vein Injection of Colorectal Cancer Organoids to Study the Liver Metastasis Stroma. J. Vis. Exp. (175), e62630, doi:10.3791/62630 (2021).

View Video