Summary

Vurdering av svømme utholdenhet og svømmeadferd i voksen sebrafisk

Published: November 12, 2021
doi:

Summary

I stand til funksjonell utvinning etter ryggmargsskade, er voksen sebrafisk et førsteklasses modellsystem for å belyse medfødte mekanismer for nevral regenerering. Her beskriver vi svømme utholdenhet og svømmeadferd analyser som funksjonelle avlesninger av ryggmargsregenerering.

Abstract

På grunn av deres anerkjente regenerative kapasitet er voksen sebrafisk en førsteklasses virveldyrmodell for å forhøre mekanismer for medfødt ryggmargsregenerering. Etter fullstendig transeksjon av ryggmargen strekker sebrafisk glial- og axonalbroer over avkuttet vev, regenererer nevroner proksimalt til lesjonen, og gjenvinner svømmekapasiteten innen 8 uker etter skade. Gjenoppretting av svømmefunksjon er dermed en sentral avlesning for funksjonell ryggmargsreparasjon. Her beskriver vi et sett med atferdsanalyser for å kvantifisere sebrafiskmotorkapasitet inne i en lukket svømmetunnel. Målet med disse metodene er å gi kvantifiserbare målinger av svømme utholdenhet og svømmeadferd i voksen sebrafisk. For svømme utholdenhet blir sebrafisk utsatt for en stadig økende vannstrømhastighet til utmattelse, og tid ved utmattelse rapporteres. For vurdering av svømmeadferd blir sebrafisk utsatt for lave strømhastigheter og svømmevideoer er fanget med en dorsal visning av fisken. Prosentaktivitet, burstfrekvens og tid brukt mot vannstrømmen gir kvantifiserbare avlesninger av svømmeatferd. Vi kvantifiserte svømme utholdenhet og svømmeadferd i vill type sebrafisk før skade og etter ryggmargstranseksjon. Vi fant ut at sebrafisk mister svømmefunksjonen etter ryggmargstranseksjon og gradvis gjenvinner denne kapasiteten mellom 2 og 6 uker etter skade. Metodene beskrevet i denne studien kan brukes på nevrobehavioral, muskuloskeletal, skjelettmuskulaturregenerering og nevrale regenereringsstudier hos voksne sebrafisk.

Introduction

Voksen sebrafisk brukes eminent til å undersøke mekanismer for nevromuskulær og muskuloskeletal utvikling og sykdomsmodellering1,2,3. Sebrafisk er i stand til effektiv, spontan reparasjon av flere vev, inkludert hjernen, ryggmargen og skjelettmuskelen4,5,6,7. Den bemerkelsesverdige kapasiteten til å regenerere nevromuskulært vev og modellsykdommer tiltrekker seg et voksende vitenskapelig samfunn til voksen sebrafiskforskning1,2,3. Men mens analyser av bevegelse og svømmeadferd er tilgjengelig og standardisert for larval sebrafisk, er det et økende behov for å utvikle analoge protokoller i voksenfisk8,9,10,11. Målet med denne studien er å beskrive protokoller for å kvantifisere svømme utholdenhet og svømmeadferd i voksen sebrafisk. Vi presenterer disse protokollene i sammenheng med ryggmargsregenereringsforskning. Imidlertid er atferdsprotokollene beskrevet her like anvendelige for studier av nevral og muskelregenerering, nevromuskulær og muskuloskeletal utvikling, samt nevromuskulær og muskuloskeletal sykdomsmodellering.

Sebrafisk omvendt lammelse innen 8 uker etter fullstendig ryggmargstranseksjon. I motsetning til dårlig regenerative pattedyr, viser sebrafisk pro-regenerative immun-, nevronale og glial skaderesponser som kreves for funksjonell ryggmargsreparasjon12,13,14. En ultimate avlesning av funksjonell ryggmargsreparasjon er evnen til det lesjonerte vevet til å gjenvinne sin funksjon etter skade. En pakke med standardiserte metoder for å vurdere funksjonell regenerering hos gnagere inkluderer lokomotoriske, motoriske, sensoriske og sensoriske tester15,16,17. Mye brukt tester i musen ryggmargsskade inkluderer locomotor Basso Mouse Scale (BMS), forelimb motor tester, taktile sensoriske tester, og grid walking sensorimotoriske tester15,17. I motsetning til pattedyr- eller larval sebrafisksystemer er atferdstester i voksen sebrafisk mindre utviklet, men mye nødvendig for å imøtekomme de voksende behovene til vevsregenererings- og sykdomsmodelleringssamfunnene.

Komplette ryggmargstranseksjoner resulterer i fullstendig lammelse kaudal til skadestedet. Kort tid etter skaden er lammede dyr mindre aktive og unngår å svømme så mye som mulig. For å kompensere for tapt svømmekapasitet viser lammede dyr korte, hyppige brister ved å overbruke brystfinner, som ligger rostral til lesjonen. Denne kompenserende svømmestrategien resulterer i rask utmattelse og lavere svømmekapasitet. Når sebrafiskens ryggmarg regenererer, gjenvinner dyrene en jevn oscillatorisk svømmefunksjon caudal til lesjonen, noe som gir økt svømme utholdenhet og forbedrede svømmeadferdsparametere. Her beskriver vi metoder for å kvantifisere sebrafisk svømme utholdenhet ved å øke vannstrømmens hastigheter og svømmeadferd ved lave strømhastigheter.

Protocol

Voksen sebrafisk av Ekkwill- og AB-stammene ble opprettholdt ved Washington University Zebrafish Core Facility. Alle dyreforsøk ble utført i samsvar med IACUC institusjonelle dyreprotokoller. MERK: Et eksempel på det eksperimentelle oppsettet vises i figur 1A. Kalibreringslokket (tilpasset), utholdenhetslokket for svømming (tilpasset) og svømmeadferdslokket (standard, vedlagt tunnellokk) er vist i figur 1B. Den eksperimentelle ar…

Representative Results

Vi setter opp svømmetunnelen som beskrevet i avsnitt 1 i denne protokollen (figur 1). Vi vurderte svømme utholdenhet (avsnitt 2 i denne protokollen) samt svømmeadferd (avsnitt 3 og 4 i denne protokollen) av voksen sebrafisk ved baseline og etter ryggmargsskade (figur 2). For å etablere baseline motorfunksjon undersøkte vi svømme utholdenheten til villfisk under økende vannstrømhastigheter (figur 3A</strong…

Discussion

Voksen sebrafisk er et populært virveldyrsystem for modellering av menneskelige sykdommer og studiemekanismer for vevregenerering. CRISPR/Cas9 genomredigering har revolusjonert omvendt genetiske studier for modellering av sykdom hos sebrafisk; Imidlertid har storskala genetikk i voksen sebrafisk blitt hindret av biologiske og tekniske utfordringer, inkludert utilgjengeligheten av voksne sebrafiskvev til høygjennomstrømning fenotyping. Gitt den komplekse anatomien til voksen sebrafisk, er langvarig histologisk behandli…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Washington University Zebrafish Shared Resource for dyrepleie. Denne forskningen ble støttet av NIH (R01 NS113915 til M.H.M.).

Materials

AutoSwim software Loligo Systems MI10000 Optional – for Automatic control of current velocity
Customized lid Loligo Systems MI10001 This customized lid is used for swim endurance
DAQ-BT Loligo Systems SW10600 Optional – for Automatic control of current velocity
Eheim pump Loligo Systems PU10160 20 L/min. This pump is placed in theflow-through tank.
Fiji Fiji Freely available through Image J (Fiji) Specific script available at https://github.com/MokalledLab/SwimBehavior
Flowtherm Loligo Systems AC10000 Handheld digital flow meter – for calibration
High Speed Camera Loligo Systems VE10380 USB 3.0 color video camera (4MP)
IR light panel Loligo Systems VE10775 450 x 210 mm, placed under the swim tunnel  chamber
Monofocal lens Loligo Systems VE10388 25mm manual lens
PVC Tubing VWR 60985-534 5/16 x 7/16"  Wall thickness: 1/16"
R Studio R Studio Freely available. Version 3.6 with extra packages. Specific script available at https://github.com/MokalledLab/SwimBehavior
Swim tunnel respirometer Loligo Systems SW10060 5L (120V/60Hz). The system includes the swim chamber, motor, manual control of water current velocity, 1 pump placed inside the chamber, standard swim tunnel lid for swim behavior, and modified swim tunnel lid for calibration
uEye Cockpit IDS Freely available software to control camera parameters Alternative cameras and accompanying softwares could be used
Vane wheel flow probe Loligo Systems AC10002 Digital flow probe – for calibration

Referências

  1. Becker, C. G., Becker, T. Neuronal regeneration from ependymo-radial glial cells: cook, little pot, cook. Developmental Cell. 32 (4), 516-527 (2015).
  2. Mokalled, M. H., Poss, K. D. A regeneration toolkit. Developmental Cell. 47 (3), 267-280 (2018).
  3. Orger, M. B., de Polavieja, G. G. Zebrafish behavior: opportunities and challenges. Annual Review of Neuroscience. 40, 125-147 (2017).
  4. Becker, C. G., Becker, T. Adult zebrafish as a model for successful central nervous system regeneration. Restorative Neurology and Neuroscience. 26 (2-3), 71-80 (2008).
  5. Gurevich, D. B., et al. Asymmetric division of clonal muscle stem cells coordinates muscle regeneration in vivo. Science. 353 (6295), (2016).
  6. Mokalled, M. H., et al. Injury-induced ctgfa directs glial bridging and spinal cord regeneration in zebrafish. Science. 354 (6312), 630-634 (2016).
  7. Kizil, C., Kaslin, J., Kroehne, V., Brand, M. Adult neurogenesis and brain regeneration in zebrafish. Developmental Neurobiology. 72 (3), 429-461 (2012).
  8. Wolman, M. A., et al. A genome-wide screen identifies PAPP-AA-mediated IGFR signaling as a novel regulator of habituation learning. Neuron. 85 (6), 1200-1211 (2015).
  9. Granato, M., et al. Genes controlling and mediating locomotion behavior of the zebrafish embryo and larva. Development. 123, 399-413 (1996).
  10. Brockerhoff, S. E., et al. A behavioral screen for isolating zebrafish mutants with visual system defects. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (23), 10545-10549 (1995).
  11. Moens, C. B., Yan, Y. L., Appel, B., Force, A. G., Kimmel, C. B. Valentino: a zebrafish gene required for normal hindbrain segmentation. Development. 122 (12), 3981-3990 (1996).
  12. Cavone, L., et al. A unique macrophage subpopulation signals directly to progenitor cells to promote regenerative neurogenesis in the zebrafish spinal cord. Developmental Cell. 56 (11), 1617-1630 (2021).
  13. Reimer, M. M., et al. Motor neuron regeneration in adult zebrafish. Journal of Neuroscience. 28 (34), 8510-8516 (2008).
  14. Klatt Shaw, D., et al. Localized EMT reprograms glial progenitors to promote spinal cord repair. Developmental Cell. 56 (5), 613-626 (2021).
  15. Ahmed, R. U., Alam, M., Zheng, Y. P. Experimental spinal cord injury and behavioral tests in laboratory rats. Heliyon. 5 (3), 01324 (2019).
  16. Pajoohesh-Ganji, A., Byrnes, K. R., Fatemi, G., Faden, A. I. A combined scoring method to assess behavioral recovery after mouse spinal cord injury. Neuroscience Research. 67 (2), 117-125 (2010).
  17. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. Journal of Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  18. Scheff, S. W., Saucier, D. A., Cain, M. E. A statistical method for analyzing rating scale data: the BBB locomotor score. Journal of Neurotrauma. 19 (10), 1251-1260 (2002).
  19. Li, Q., et al. Differential behavioral responses of zebrafish larvae to yohimbine treatment. Psychopharmacology (Berl). 232 (1), 197-208 (2015).
  20. Wakamatsu, Y., Ogino, K., Hirata, H. Swimming capability of zebrafish is governed by water temperature, caudal fin length and genetic background. Scientific Reports. 9 (1), 16307 (2019).
  21. Ahmed, O., Seguin, D., Gerlai, R. An automated predator avoidance task in zebrafish. Behavioral Brain Research. 216 (1), 166-171 (2011).
  22. Conradsen, C., McGuigan, K. Sexually dimorphic morphology and swimming performance relationships in wild-type zebrafish Danio rerio. Journal of Fish Biology. 87 (5), 1219-1233 (2015).
  23. Leris, I., Sfakianakis, D. G., Kentouri, M. Are zebrafish Danio rerio males better swimmers than females. Journal of Fish Biology. 83 (5), 1381-1386 (2013).
check_url/pt/63240?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Burris, B., Jensen, N., Mokalled, M. H. Assessment of Swim Endurance and Swim Behavior in Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (177), e63240, doi:10.3791/63240 (2021).

View Video