Summary

Ex Vivo 마우스 자궁 세포에서 아데노바이러스-Cre 매개 유전자 결실의 오가노이드 모델

Published: May 05, 2022
doi:

Summary

이 프로토콜은 관심있는 유전자에 결실을 품고 있는 마우스 비뇨생식기 오가노이드의 생성 및 특성화의 과정을 기술한다. 상기 방법은 마우스 비뇨생식기 세포 수확, CMV 프로모터로 Cre 발현을 유도하는 아데노바이러스를 이용한 생체외 형질도입, 및 시험관내생체외 특성화를 포함한다.

Abstract

방광암은 특히 유전자 조작 마우스 모델 (GEMMs)에서 과소 연구 된 영역입니다. 조직 특이적 Cre 및 loxP 부위를 갖는 교배 GEMMs는 조건부 또는 유도성 유전자 표적화를 위한 황금 표준이었다. 보다 빠르고 효율적인 실험 모델을 제공하기 위해, 종양 억제제 Trp53, PtenRb1의 다중 loxP 대립 유전자를 운반하는 아데노바이러스 Cre 및 정상 비뇨생식기 세포를 사용하여 생체외 오가노이드 배양 시스템이 개발된다. 정상적인 비뇨생식기 세포는 삼중 플록스 마우스의 네 개의 방광으로부터 효소적으로 분리된다(Trp53 f/f: Pten f/f: Rb1 f/f). 비뇨생식기 세포는 CMV 프로모터(Ad5CMVCre)에 의해 구동되는 아데노바이러스-Cre로 생체외로 형질도입된다. 형질도입된 방광 오가노이드는 배양되고, 전파되고, 시험관내생체내에서 특성화된다. PCR은 Trp53, PtenRb1에서 유전자 결실을 확인하는 데 사용됩니다. 오가노이드의 면역형광(IF) 염색은 비뇨생식기 계통 마커(CK5 및 p63)의 양성 발현을 입증한다. 오가노이드는 종양 확장 및 연속 통과를 위해 숙주 마우스에 피하 주사된다. 이종이식편의 면역조직화학(IHC)은 CK7, CK5 및 p63의 양성 발현 및 CK8 및 우로플라킨 3의 음성 발현을 나타낸다. 요약하면, loxP 부위로 조작된 마우스 비뇨생식기 세포로부터의 아데노바이러스-매개 유전자 결실은 정의된 유전적 변경의 종양원성 잠재력을 신속하게 시험하는 효율적인 방법이다.

Introduction

방광암은 남성에서 네 번째로 흔한 암이며 미국에서 매년 80,000 명 이상의 사람들에게 영향을 미칩니다1. 백금 기반 화학 요법은 삼십 년 이상 진행성 방광암 환자를위한 치료의 표준이었습니다. 방광암 치료의 풍경은 최근 FDA (Food and Drug Administration)의 면역 요법 (항 PD-1 및 항 PD-L1 면역 체크포인트 억제제), 에르다 피티닙 (섬유 아세포 성장 인자 수용체 억제제) 및 엔포르투맙 베도틴 (항체 – 약물 접합체)2,3,4의 승인으로 혁명을 일으켰습니다. 그러나, 화학요법 또는 면역요법에 대한 반응을 예측하기 위해 임상적으로 승인된 바이오마커는 이용가능하지 않다. 방광암 진행을 유도하는 메커니즘에 대한 이해를 향상시키고 다양한 치료 양식에 대한 예측 바이오마커를 개발할 수 있는 유익한 전임상 모델을 생성해야 할 절실한 필요성이 있습니다.

방광 번역 연구의 주요 장애물은 인간 방광암 발병기전과 치료 반응 5,6을 재검토하는 전임상 모델의 부족이다. 시험관내 2D 모델(세포주 또는 조건부로 재프로그램된 세포), 시험관내 3D 모델(오가노이드, 3D 프린팅) 및 생체내 모델(이종이식편, 발암물질-유도, 유전자 조작 모델 및 환자 유래 이종이식편)2,6을 포함하는 다수의 전임상 모델이 개발되었다. 유전자 조작된 마우스 모델(GEMMs)은 종양 표현형의 분석, 후보 유전자 및/또는 신호전달 경로의 기계론적 조사, 치료 반응의 전임상 평가6,7을 포함하여 방광암 생물학의 많은 응용에 유용하다. GEMMs는 하나 이상의 종양 억제 유전자에서 유전적 결실을 조절하기 위해 부위-특이적 재조합효소(Cre-loxP)를 이용할 수 있다. 여러 유전자 결실로 원하는 GEMM을 생성하는 과정은 시간이 많이 걸리고 힘들고 비용이 많이 듭니다5. 이 방법의 전반적인 목표는 삼중 플록스 대립 유전자 (Trp53, Pten,Rb1)8을 운반하는 정상 마우스 비뇨 생식기 세포로부터 방광 삼중 녹아웃 (TKO) 모델을 확립하기위한 생체외 Cre 전달의 신속하고 효율적인 방법을 개발하는 것입니다. 생체 외 방법의 가장 큰 장점은 빠른 워크 플로 (수년간의 마우스 번식 대신 1-2 주)입니다. 이 글에서는 플록스 대립유전자, 생체외 아데노바이러스 형질도입, 오가노이드 배양, 면역적격 C57 BL/6J 마우스에서의 시험관내 및 생체내 특성화를 갖는 정상 비뇨생식기 세포를 수확하기 위한 프로토콜을 설명한다. 이 방법은 플록스 대립 유전자의 임의의 조합을 보유하는 면역적격 마우스에서 임상적으로 관련된 방광암 오가노이드를 생성하는데 추가로 사용될 수 있다.

Protocol

모든 동물 절차는 뉴욕 버팔로의 Roswell Park Comprehensive Cancer Center의 IACUC (Institutional Animal Care and Use Committee) (1395M, Biosafety 180501 및 180502)의 승인을 받았습니다.참고: 같은 날에 1-3단계를 수행하십시오. 1. 마우스 방광의 해부 해부 준비 가위, 포셉, 멸균 DPBS를 포함한 모든 멸균 기구를 35mm 배양 접시, 70% 에탄올, 멸균 거즈 및 깨끗한 종이 타월에 준비하…

Representative Results

마우스 비뇨생식기 세포에서 아데노바이러스-Cre 매개 유전자 결실의 워크플로우를 도 1A에 나타내었다. 수반되는 비디오는 비뇨생식기 세포가 방광의 안저로부터 어떻게 분리되는지, 그리고 삼중 플록싱된 세포가 Ad5CMVCre로 생체외 에서 어떻게 형질도입되는지를 보여준다. 도 1A는 효소 소화 후 최소 점막하 및 근육 세포가 분리되었음을 보여주?…

Discussion

GEMM은 정상 세포에서 시작된 암 모델링의 황금 표준이었으며, 잠재적 인 종양원성 교란 (종양 유전자 활성화 및 / 또는 종양 억제제의 손실)의 결과를 엄격하게 테스트 할 수 있습니다. 여기서, 관심 유전자에 플록스된 대립유전자를 운반하는 정상 마우스 비뇨생식기 세포의 생체외 유전자 편집을 통해 방광암 오가노이드를 생성시키기 위한 신속하고 효율적인 프로토콜이 제공된다. H&E 및 IH…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구 작업은 NIH Grants, K08CA252161 (Q.L.), R01CA234162 및 R01 CA207757 (D.W.G.), P30CA016056 (NCI Cancer Center Core Support Grant), Roswell Park Alliance Foundation 및 Friends of Urology Foundation이 부분적으로 지원했습니다. 원고를 교정해 주신 Marisa Blask와 Mila Pakhomova에게 감사드립니다.

Materials

100 μm sterile cell strainer Corning 431752
1 mL syringe BD 309659
25G 1.5 inches needle EXELINT International 26406
Adenovirus (Ad5CMVCre High Titer, 1E11 pfu/ml) UI Viral Vector Core VVC-U of Iowa-5-HT
C57 BL/6J Jackson Lab 000664
Charcoal-stripped FBS Gibco A3382101
Collagenase/hyaluronidase Stemcell Technologies 07912
Dispase Stemcell Technologies 07913
DPBS, 1x Corning 21-031-CV
L-glutamine substitute (GlutaMAX) Gibco 35-050-061
Mammary Epithelial Cell Growth medium Lonza CC-3150
Matrix extracts from Engelbreth–Holm–Swarm mouse sarcomas (Matrigel) Corning CB-40234
Monoclonal mouse anti-CK20 DAKO M7019 IF 1:100
Monoclonal mouse anti-CK7 Santa Cruz Biotechnology SC-23876 IHC 1:50
Monoclonal mouse anti-p63 Abcam ab735 IHC 1:100, IF 1:50
Monoclonal mouse anti-Upk3 Fitzgerald 10R-U103A IHC 1:50
Monoclonal mouse anti-Vimentin Santa Cruz Biotechnology SC-6260 IF 1:100
Monoclonal rat anti-CK8 Developmental Studies Hybridoma Bank TROMA-I-s IF 1:100
HERAcell vios 160i CO2 incubator Thermo Fisher 51033557
Polyclonal chicken anti-CK5 Biolegend 905901 IF 1:500
Primocin InvivoGen ant-pm-1
Recombinant enzyme of trypsin substitute (TrypLE Express Enzyme) Thermo Fisher 12605036
Signature benchtop shaking incubator Model 1575 VWR 35962-091
Specimen Processing Gel (HistoGel) Thermo Fisher HG-4000-012
Surgical blade size 10 Integra Miltex 4-110
Sorvall T1 centrifuge Thermo Fisher 75002383
Y-27632 Selleckchem S1049

Referências

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Fuchs, H. E., Jemal, A. Cancer statistics, 2021. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 71 (1), 7-33 (2021).
  2. Zhu, S., et al. Preclinical models for bladder cancer research. Hematology/Oncology Clinics of North America. 35 (3), 613-632 (2021).
  3. DeGraff, D. J., et al. Current preclinical models for the advancement of translational bladder cancer research. Molecular Cancer Therapeutics. 12 (2), 121-130 (2013).
  4. Andreev-Drakhlin, A. Y., et al. The evolving treatment landscape of advanced urothelial carcinoma. Current Opinion in Oncology. 33 (3), 221-230 (2021).
  5. Mullenders, J., et al. Mouse and human urothelial cancer organoids: A tool for bladder cancer research. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (10), 4567-4574 (2019).
  6. Kobayashi, T., Owczarek, T. B., McKiernan, J. M., Abate-Shen, C. Modelling bladder cancer in mice: opportunities and challenges. Nature Reviews. Cancer. 15 (1), 42-54 (2015).
  7. Kersten, K., de Visser, K. E., van Miltenburg, M. H., Jonkers, J. Genetically engineered mouse models in oncology research and cancer medicine. EMBO Molecular Medicine. 9 (2), 137-153 (2017).
  8. Ku, S. Y., et al. Rb1 and Trp53 cooperate to suppress prostate cancer lineage plasticity, metastasis, and antiandrogen resistance. Science. 355 (6320), 78-83 (2017).
  9. Lee, S. H., et al. Tumor evolution and drug response in patient-derived organoid models of bladder cancer. Cell. 173 (2), 515-528 (2018).
  10. Fujii, E., et al. A simple method for histopathological evaluation of organoids. Journal of Toxicologic Pathology. 31 (1), 81-85 (2018).
  11. Georgas, K. M., et al. An illustrated anatomical ontology of the developing mouse lower urogenital tract. Development. 142 (10), 1893-1908 (2015).
  12. Santos, C. P., et al. Urothelial organoids originating from Cd49f(high) mouse stem cells display Notch-dependent differentiation capacity. Nature Communication. 10 (1), 4407 (2019).
  13. Wang, L., et al. A genetically defined disease model reveals that urothelial cells can initiate divergent bladder cancer phenotypes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (1), 563-572 (2020).
  14. Yang, D., et al. Intertumoral heterogeneity in SCLC is influenced by the cell type of origin. Cancer Discovery. 8 (10), 1316-1331 (2018).
  15. Sutherland, K. D., et al. Cell of origin of small cell lung cancer: inactivation of Trp53 and Rb1 in distinct cell types of adult mouse lung. Cancer Cell. 19 (6), 754-764 (2011).
  16. Bottger, F., et al. Tumor heterogeneity underlies differential cisplatin sensitivity in mouse models of small-cell lung cancer. Cell Reports. 27 (11), 3345-3358 (2019).
  17. Puzio-Kuter, A. M., et al. Inactivation of p53 and Pten promotes invasive bladder cancer. Genes & Development. 23 (6), 675-680 (2009).
  18. Park, S., et al. Novel mouse models of bladder cancer identify a prognostic signature associated with risk of disease progression. Pesquisa do Câncer. 81 (20), 5161-5175 (2021).
  19. Hawley, S. P., Wills, M. K., Jones, N. Adenovirus-mediated genetic removal of signaling molecules in cultured primary mouse embryonic fibroblasts. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (43), e2160 (2010).
  20. Feng, W., et al. Rapid interrogation of cancer cell of origin through CRISPR editing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (32), 2110344118 (2021).
check_url/pt/63855?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Xu, D., Wang, L., Wieczorek, K., Wang, Y., Zhang, X., Goodrich, D. W., Li, Q. Ex Vivo Organoid Model of Adenovirus-Cre Mediated Gene Deletions in Mouse Urothelial Cells. J. Vis. Exp. (183), e63855, doi:10.3791/63855 (2022).

View Video