Summary

Un semplice protocollo di analisi dei pozzi per visualizzare e quantificare il riassorbimento osteoclastico in vitro

Published: June 16, 2022
doi:

Summary

Qui, presentiamo una procedura di analisi semplice ed efficace per i saggi di riassorbimento della fossa utilizzando piastre di coltura cellulare rivestite di fosfato di calcio.

Abstract

Gli osteoclasti maturi sono cellule multinucleate che possono degradare l’osso attraverso la secrezione di acidi ed enzimi. Svolgono un ruolo cruciale in varie malattie (ad esempio, l’osteoporosi e il cancro alle ossa) e sono quindi importanti oggetti di ricerca. In vitro, la loro attività può essere analizzata dalla formazione di pozzi di riassorbimento. In questo protocollo, descriviamo un semplice metodo di analisi dei pozzi che utilizza piastre di coltura cellulare rivestite di fosfato di calcio (CaP), che possono essere facilmente visualizzate e quantificate. I precursori degli osteoclasti derivati da cellule mononucleate del sangue periferico umano (PBMC) sono stati coltivati sulle piastre rivestite in presenza di stimoli osteoclastogeni. Dopo 9 giorni di incubazione, gli osteoclasti sono stati fissati e colorati per l’imaging a fluorescenza mentre il rivestimento CaP è stato controcolorato dalla calceina. Per quantificare l’area riassorbita, il rivestimento CaP sulle piastre è stato colorato con AgNO3 al 5% e visualizzato mediante imaging a campo luminoso. L’area della fossa di riassorbimento è stata quantificata utilizzando ImageJ.

Introduction

Gli osteoclasti (OC) sono macrofagi tessuto-specifici derivati da cellule staminali ematopoietiche (HSC), che svolgono un ruolo fondamentale nel rimodellamento osseo insieme agli osteoblasti1. I disturbi ossei indotti da ormoni sessuali, immunologici e maligni che distruggono l’osso a livello sistemico o locale sono dovuti all’eccessiva attività osteoclastica, tra cui l’osteoporosi correlata alla menopausa2, l’artrite reumatoide3, la malattia parodontale4, la malattia ossea del mieloma5 e le metastasi ossee osteolitiche6. Al contrario, i difetti nella formazione e nella funzione dell’OC possono anche causare osteopetrosi7. Le HSC subiscono la differenziazione in progenitori OC sotto stimolazione del fattore stimolante le colonie di macrofagi (M-CSF, simbolo genico ACP5). In presenza sia di M-CSF che di attivatore recettoriale del ligando NF-κB (RANKL, simbolo genico TNFSF11), i progenitori OC si differenziano ulteriormente in OC mononucleati e successivamente si fondono per diventare OC multinucleati 8,9,10. Entrambe le citochine M-CSF e RANKL sono indispensabili e sufficienti per l’induzione di marcatori osteoclastici come il recettore della calcitonina (CT), l’attivatore del recettore del fattore nucleare κ B (RANK), la pompa protonica V-ATPasi, la subunità alfa del canale del cloruro 7 (CIC-7), l’integrina β3, la fosfatasi acida resistente al tartrato (TRAP, simbolo genico ACP5), la cisteina lisosomiale proteasi catepsina K (CTSK) e la metallopeptidasi 9 della matrice (MMP9). Gli OC attivati formano una zona di tenuta sulla superficie ossea attraverso la formazione di un anello di actina con un bordo arruffato11,12. All’interno della zona di tenuta, gli OC mediano il riassorbimento attraverso la secrezione di protoni tramite la pompa protonica V-ATPasi 12,13, MMP914 e CTSK15, portando alla formazione di lacune.

Per esperimenti in vitro, i progenitori oc possono essere ottenuti mediante espansione di macrofagi del midollo osseo dal femore e dalla tibia16,17 dei topi, nonché mediante isolamento di cellule mononucleate del sangue periferico umano (PBMC) da campioni di sangue e buffy coat 18,19,20, o mediante differenziazione delle cellule monocitiche murine immortalizzate RAW 264.7 21,22.

Nel presente protocollo, descriviamo un saggio di riassorbimento osteoclastico in piastre di coltura cellulare rivestite di CaP utilizzando OC derivati da PBMC primari. Il metodo delle piastre di coltura cellulare rivestite di CaP qui utilizzato è adottato e perfezionato dal metodo descritto in precedenza da Patntirapong et al.17 e Maria et al.21. Per ottenere precursori OC, i PBMC vengono isolati mediante centrifugazione a gradiente di densità ed espansi come descritto in precedenza20.

Protocol

Il protocollo è stato rivisto e approvato dal comitato etico locale (numero di approvazione 287/2020B02). 1. Preparazione di piastre di coltura cellulare rivestite di fosfato di calcio Preparazione di soluzione madre di calcio (25 mM CaCl2·2H 2O, 1,37 mM NaCl, 15 mM MgCl2·6H2O in tampone Tris) Preparare il tampone Tris da 1,0 M e regolare il pH a 7,4 utilizzando 1 M HCl. Impostare un becher di vetro su…

Representative Results

Il rivestimento di fosfato di calcio sul fondo delle piastre di coltura cellulare è stato eseguito in due fasi di rivestimento comprendenti una precalcificazione di 3 giorni e una fase di calcificazione di 1 giorno. Come mostrato nella Figura 1, il fosfato di calcio uniformemente distribuito è stato ottenuto sul fondo delle piastre a 96 pozzetti. Il rivestimento ha aderito molto bene al fondo dopo le fasi di lavaggio eseguite. <p class="jove_content biglegend" fo:keep-together.within-p…

Discussion

Qui descriviamo un metodo semplice e affidabile per un test di riassorbimento osteoclastico utilizzando OC derivati ed espansi in vitro da PBMC. Le piastre di coltura cellulare rivestite in CaP utilizzate possono essere facilmente preparate e visualizzate utilizzando materiali disponibili in laboratorio. Oltre alle PBMC non selezionate adottate in questo protocollo, anche le OC generate da cellule monocitiche murine21 e cellule macrofagiche del midollo osseo17 sono…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato parzialmente finanziato dal China Scholarship Council [CSC No. 201808440394]. W.C. è stato finanziato dal CSC.

Materials

AgNO3 SERVA Electrophoresis GmbH 35110 Silver nitrate
a-MEM Gibco 32561-029 MEM alpha, GlutaMAX, no nucleosides
amphotericin B Biochrom 03-028-1B Amphotericin B Solution
CaCl2 Sigma-Aldrich 21097-50G Calcium chloride Dihydrate
Calcein Sigma-Aldrich C0875 Calcein
FBS Sigma-Aldrich F7524 fetal bovine serum
Ficoll Cytiva 17144002 Ficoll Paque Plus
Fixation buffer Biolegend 420801 Paraformaldehyde
HCl Merk 1.09057.1000 Hydrochloric acid
Hoechst 33342 Promokine PK-CA707-40046 Hoechst 33342
M-CSF PeproTech 300-25 Recombinant Human M-CSF
MgCl2 Sigma-Aldrich 7791-18-6 Magnesium chloride
Na2HPO4 AppliChem GmbH A2943,0250 di- Sodium hydrogen phosphate anhydrous
NaCl Merk S7653-250G Sodium chloride
NaHCO3 Merk K15322429 Bicarbonate of Soda
PBS Lonza 17-512F Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (1X), DBPS without Calcium and Magnesium
Pen-Strep Lonza DE17-602E Penicillin-Streptomycin Mixture
Phalloidin-Alexa Fluor 546 Invitrogen A22283 Alexa Fluor 546 Phalloidin
RANKL PeproTech 310-01 Recombinant Human sRANK Ligand (E.coli derived)
Tris Sigma-Aldrich 93362 Tris(hydroxymethyl)aminomethan
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787 Alkyl Phenyl Polyethylene Glycol
TrypLE Express Gibco 12605010 Recombinant cell-dissociation enzymes

Referências

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Citar este artigo
Cen, W., Reinert, S., Avci-Adali, M., Alexander, D., Umrath, F. A Simple Pit Assay Protocol to Visualize and Quantify Osteoclastic Resorption In Vitro. J. Vis. Exp. (184), e64016, doi:10.3791/64016 (2022).

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