Summary

생쥐에서 자가면역 당뇨병의 입양 이식 모델에서 이식편 생존의 생물발광 모니터링

Published: November 18, 2022
doi:

Summary

이 프로토콜은 자발적 당뇨병 NOD 마우스에서 정제된 비장 세포로 도전받은 비만 당뇨병(NOD) 중증 복합 면역 결핍 마우스에서 NIT-1 세포를 이식하고 이미징하기 위한 간단하고 최소 침습적인 방법을 설명합니다.

Abstract

제 1 형 당뇨병은 췌장의 인슐린 생산 베타 세포의자가 면역 파괴를 특징으로합니다. 이 질병에 대한 유망한 치료법은 줄기 세포 유래 베타 세포의 이식입니다. 그러나 이식된 세포를 지속적인 자가면역으로부터 보호하기 위해 유전자 변형이 필요할 수 있습니다. 당뇨병 마우스 모델은 자가면역 공격으로부터 이식된 세포를 보호하기 위한 전략의 예비 평가에 유용한 도구입니다. 여기에 기술된 것은 마우스에서 당뇨병의 입양 이식 모델에서 세포 이식편을 이식하고 이미징하기 위한 최소 침습적 방법이다. 이 프로토콜에서, 반딧불이 루시페라아제 이식유전자 luc2 를 발현하는 쥐 췌장 베타 세포주 NIT-1의 세포를 면역결핍성 비비만 당뇨병(NOD)-중증 복합 면역결핍(scid) 마우스에 피하 이식합니다. 이 마우스는 자가면역을 전달하기 위해 자발적 당뇨병 NOD 마우스의 비장 세포를 동시에 정맥 주사합니다. 이식편은 세포 생존을 모니터링하기 위해 비침습적 생물발광 이미징을 통해 일정한 간격으로 이미지화됩니다. 돌연변이 세포의 생존은 동일한 마우스에 이식된 대조군 세포의 생존율과 비교됩니다.

Introduction

제1형 당뇨병(T1D)은 췌장의 인슐린 생산 베타 세포의 자가면역 파괴로 인해 발생합니다. 베타 세포 질량의 손실은 인슐린 결핍과 고혈당을 초래합니다. T1D 환자는 외인성 인슐린을 매일 여러 번 주사하고 평생 동안 심각한 고혈당증 및 저혈당증 에피소드를 경험합니다. 이러한 에피소드와 관련된 합병증으로는 당뇨병성 망막병증, 신장 기능 저하, 신경병증등이 있다 1.

인슐린 주사는 T1D의 치료법이지만 치료법은 아닙니다. 그러나 손실된 베타 세포 덩어리를 대체하면 환자가 자신의 인슐린을 생산할 수 있게 하여 질병을 역전시킬 수 있습니다. 그러나 사체기증자의 공급은 제한되어 있다2. 줄기 세포 유래 췌도(SC-islets)는 이식을 위한 베타 세포의 사실상 무제한 공급을 제공할 수 있다. 몇몇 그룹은 인간 배아 줄기 세포 (ESCs)와 유도 만능 줄기 세포 (iPSCs)가 기능적 베타 유사 세포를 생성하기 위해 분화 될 수 있음을 입증했다 3,4,5. 유망한 초기 임상 시험 데이터에 따르면 이 세포는 이식 후에도 기능을 유지하며 환자가 인슐린 의존성을 갖도록 할 수 있다6. 그러나 만성 면역 억제가 필요하므로 암과 감염에 대한 감수성이 증가합니다. 또한, 면역억제제는 장기적으로 이식편에 세포독성을 나타낼 수 있다7. 면역억제의 필요성을 없애기 위해, SC-섬은 이식 후 동종면역뿐만 아니라 재발성 자가면역으로부터 보호하기 위해 유전자 변형될 수 있다.

줄기 세포 연구는 비용과 노동력이 매우 까다롭습니다. 마우스 세포주 및 동물 모델은 이식된 세포를 자가면역으로부터 보호하기 위한 전략의 초기 식별 및 실험적 검증에 유용한 도구입니다. NOD 마우스는 인간 T1D8와 많은 유사성을 가진 자발성 자가면역 당뇨병을 앓고 있으며, NIT-1 인슐린종 세포주는 이 마우스 균주와 유전적 배경을 공유한다9. 당뇨병은 복제 실험 마우스에서 당뇨병의 발병을 시간적으로 동기화하기 위해 NOD 마우스로부터 당뇨병성 비장세포의 주입을 통해 관련 면역결핍 NOD-scid 마우스 균주에 입양적으로 전달될 수 있다10. 이 모델은 SC 섬에서 추가 검증을 위해 유전자 표적을 비교적 빠르고 저렴하게 식별하는 데 사용할 수 있습니다. 최근에, 이 방법은 생체 내 자가면역으로부터 일차 인간 섬을 보호하고 시험관 내 베타 세포 스트레스로부터 iPSC 유래 섬을 보호하는 것으로 밝혀진 표적인 RNLS를 식별하고 검증하기 위해 적용되었습니다 11. 여기에 설명된 것은 유전자 조작된 NIT-1 세포를 이식하고 마우스에서 자가면역 당뇨병의 입양 이식 모델에서 이들의 생존을 비침습적으로 모니터링하는 간단한 프로토콜입니다.

Protocol

그림 1: 생쥐에서 당뇨병의 입양 이식 모델에서 이식편을 이식하고 이미징하기 위한 워크플로. 반딧불이 이식유전자 루시페라아제(luc2)를 발현하는 NIT-1 세포를 NOD-scid 마우스에 피하 이식합니다. 마우스에는 자발적 당뇨병 NOD 마우스에서 분리된 자가반응성 ?…

Representative Results

프로토콜에 대한 개요는 그림 1에 요약되어 있습니다. 2개의 세포주, 예컨대 돌연변이체 및 비표적화 대조군의 생존을 비교하거나, 하나의 세포주의 생존을 다수의 마우스 그룹, 예컨대 약물-처리된 마우스 대 비히클-처리된 대조군에서 측정할 수 있다. 도 3A 는 비표적 대조군(왼쪽)과 돌연변이(오른쪽) 세포주를 이식한 8주령의 암컷 NOD-scid 마우스 3마?…

Discussion

T1D는 현재 치료법이 존재하지 않는 치명적인 질병입니다. 베타 세포 대체 요법은 이 질환을 앓고 있는 환자에게 유망한 치료법을 제공하지만 이 전략의 중요한 장벽은 이식된 베타 세포에 대한 반복적인 자가면역 공격의 가능성입니다. SC-베타 세포의 면역 가시성이나 감수성을 줄이기 위한 유전 공학은 이 문제에 대한 잠재적인 해결책 중 하나입니다. 여기에 기술된 것은 마우스에서 자가면역 당…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 프로토콜에 설명된 방법을 개발한 Erica P. Cai 박사와 Yuki Ishikawa 박사에게 감사드립니다(참조 11 참조). S.K.와 P.Y.의 실험실에서의 연구는 미국 국립보건원(NIH)(R01DK120445, P30DK036836), JDRF, 하버드 줄기세포 연구소 및 비트슨 재단의 보조금으로 지원됩니다. T.S.는 국립 당뇨병 및 소화기 및 신장 질환 연구소 (NIDDK) (T32 DK007260-45)의 박사후 연구원의 지원을 받았으며 K.B.는 Mary K. Iacocca Foundation의 펠로우 십에 의해 부분적으로 지원되었습니다.

Materials

0.05% Trypsin, 0.53 mM EDTA Corning 25-052-CI
293FT Invitrogen R70007 Fast-growing, highly transfectable clonal isolate derived from human embryonal kidney cells transformed with the SV40 large T antigen
ACK Lysing Buffer Gibco A10492-01
Alcohol prep pads, 70% Isopropyl alcohol Amazon/Ever Ready First Aid B08NWF31DX
BD 5ml Syringe Luer-Lok Tip BD 309646
BD PrecisionGlide Needle 26G x 5/8 (0.45 mm x 16 mm) Sub-Q BD 305115
BD 1 mL TB Syringe Slip Tip BD 309659
Blasticidin S HCl Corning  30-100-RB
Cell strainer premium SureStrain, 70 µm, sterile Southern Labware C4070 Or use similar sterile strainer with 40-70um pore size
CellDrop automated cell counter Denovix CellDrop BF-PAYG Or use similar cell counter device
Corning 100 mL Penicillin-Streptomycin Solution, 100x Corning 30-002-CI
Disposable Aspirating Pipets, Polystyrene, Sterile, Capacity=2 mL VWR 414004-265 Or use similar aspirating pipette
D-Luciferin, Potassium Salt , Molecular Biology Grade, Powder, >99% Goldbio LUCK-100
DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine Gibco 10313039
Falcon BD tubes, 50 mL Fisher Scientific 14-959-49A
Fetal Bovine Serum Gibco 10437-028
Forceps premium for tissues, 1 x 2 teeth 5 in, German Steel Fisher Scientific 13-820-074
Glucose urine test strip California Pet Pharmacy u-tsg100 Or use similar test strip for glucose measurments in urine/blood
GlutaMAX–1 (100x) Gibco 35050-061
Infrared heating lamp Cole Parmer 03057-00 Or use similar infrared lamp 
Insulin syringe 0.5 mL, U-100 29 G 0.5 in Becton Dickinson 309306
Isoflurane, USP Piramal Critical Care 6679401725
IVIS Spectrum in vivo imaging system Perkin Elmer 124262 Instrument for non-invasively collecting bioluminescent images of transplanted cells
Living Image Analysis Software Perkin Elmer 128113 Software for collecting and quantifying bioluminescent signal
Microcentrifuge tubes seal-rite, 1.5 mL USA Scientific 1615-5510 Or use similar sterile microcentrifuge tubes
NIT-1 ATCC CRL-2055 Pancreatic beta-celll line derived from NOD/Lt mice
NOD.Cg-Prkdcscid/J The Jackson Laboratory 001303 Mice homozygous for the severe combined immune deficiency spontaneous mutation Prkdcscid, commonly referred to as scid, are characterized by an absence of functional T cells and B cells, lymphopenia, hypogammaglobulinemia, and a normal hematopoietic microenvironment.
NOD/ShiLtJ The Jackson Laboratory 001976 The NOD/ShiLtJ strain of mice (commonly called NOD) is a polygenic model for autoimmune type 1 diabetes
PBS, pH 7.4 Thermo Fisher Scientific 10010031 No calcium, no magnesium, no phenol red
pCMV-VSV-G Addgene 8454
pLenti-luciferase-blast Made in-house Plasmid available upon request See Supplemental File 1
pMD2.G Addgene 12259
pMDLg/pRRE Addgene 12251
Polyethylenimine, Linear, MW 25,000, Transfection Grade (PEI 25K) Fisher Scientific NC1014320
pRSV-Rev Addgene 12253
Restrainer for rodents, broome-style round 1 in Fisher Scientific 01-288-32A
Scissors, sharp-pointed Fisher Scientific 08-940 Or use other scissors made of surgical-grade stainless steel
Tissue-culture treated culture dishes Millipore Sigma CLS430167-20EA Or use other sterile cell culture-treated Petri dishes
Tweezers/Forceps, fine precision medium tipped Fisher Scientific 12-000-157

Referências

  1. Katsarou, A., et al. Type 1 diabetes mellitus. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17016 (2017).
  2. Shapiro, A. M., Pokrywczynska, M., Ricordi, C. Clinical pancreatic islet transplantation. Nature Reviews Endocrinology. 13 (5), 268-277 (2017).
  3. Pagliuca, F. W., et al. Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  4. Russ, H. A., et al. Controlled induction of human pancreatic progenitors produces functional beta-like cells in vitro. EMBO Journal. 34 (13), 1759-1772 (2015).
  5. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 32 (11), 1121-1133 (2014).
  6. Vertex Announces Positive Day 90 Data for the First Patient in the Phase 1_2 Clinical Trial Dosed With VX-880, a Novel Investigational Stem Cell-Derived Therapy for the Treatment of Type 1 Diabetes. Businesswire Available from: https://www.businesswire.com/news/home/20211018005226/en/Vertex-Announces-Positive-Day-90-Data-for-the-First-Patient-in-the-Phase-12-Clinical-Trial-Dosed-With-VX-880-a-Novel-Investigational-Stem-Cell-Derived-Therapy-for-the-Treatment-of-Type-1-Diabetes (2021)
  7. Gamble, A., Pepper, A. R., Bruni, A., Shapiro, A. M. J. The journey of islet cell transplantation and future development. Islets. 10 (2), 80-94 (2018).
  8. Pearson, J. A., Wong, F. S., Wen, L. The importance of the Non Obese Diabetic (NOD) mouse model in autoimmune diabetes. Journal of Autoimmunity. 66, 76-88 (2016).
  9. Hamaguchi, K., Gaskins, R. H., Leiter, E. H. NIT-1, a pancreatic β-cell line established from a transgenic NOD/Lt mouse. Diabetes. 40 (7), 842-849 (1991).
  10. Christianson, S. W., Shultz, L. D., Leiter, E. D. Adoptive transfer of diabetes into immunodeficient NOD-scid/scid mice: Relative contribution of CD4+ and CD8+ T-cells from diabetogenic versus prediabetic NOD.NON-Thy1a donors. Diabetes. 42 (1), 44-55 (1993).
  11. Cai, E. P., et al. Genome-scale in vivo CRISPR screen identifies RNLS as a target for beta cell protection in type 1 diabetes. Nature Metabolism. 2 (9), 934-945 (2020).
  12. Parent, A. V., et al. Selective deletion of human leukocyte antigens protects stem cell-derived islets from immune rejection. Cell Reports. 36 (7), 109538 (2021).
  13. Brehm, M. A., et al. Lack of acute xenogeneic graft-versus-host disease, but retention of T-cell function following engraftment of human peripheral blood mononuclear cells in NSG mice deficient in MHC class I and II expression. FASEB Journal. 33 (3), 3137-3151 (2019).
  14. Abdulreda, M. H., et al. In vivo imaging of type 1 diabetes immunopathology using eye-transplanted islets in NOD mice. Diabetologia. 62 (7), 1237-1250 (2019).

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Citar este artigo
Stewart, T., Bode, K., Kissler, S., Yi, P. Bioluminescent Monitoring of Graft Survival in an Adoptive Transfer Model of Autoimmune Diabetes in Mice. J. Vis. Exp. (189), e64836, doi:10.3791/64836 (2022).

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