Back to chapter

11.5:

Codon de démarrage alternatif

JoVE Core
Molecular Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Core Molecular Biology
Leaky Scanning

Languages

Share

Pendant la traduction eucaryote, les ribosomes scannent l’ARNm à partir de l’extrémité 5-prime jusqu’à ce qu’ils rencontrent la première séquance AUG, codon de démarrage et initient la synthèse des protéines. Cependant, un ARNm peut avoir deux ou plus codons AUG dans sa séquence. Les ribosomes ne reconnaîtront parfois pas le premier codon AUG et, au lieu de cela, démarreront la synthèse protéique à partir d’un codon d’initiation plus bas dans le brin d’ARNm.Ce phénomène est appelé balayage des fuites, et il permet la production de plusieurs types de protéines à partir du même ARNm. Une séquence consensuelle particulière, appelée séquence Kozak, détermine si un ribosome commencera la synthèse des protéines au premier codon d’initiation ou l’ignorera. Dans cette séquence, le A du premier codon d’initiation AUG est numéroté comme plus un.Les nucléotides après sont positifs, et les nucléotides avant sont négatifs. La séquence optimale se produit lorsqu’une purine est présente à la position moins trois et qu’une guanine est présente à la position plus quatre. Dans la position moins trois, l’adénine est plus efficace que la guanine pour initier la traduction.Les changements dans le reste de la séquence nucléotidique ont peu d’influence sur la synthèse des protéines. Lorsqu’une séquence optimale est présente, presque tous les ribosomes amorceront la synthèse des protéines sur ce codon AUG. En revanche, si une purine à la position moins trois ou une guanine à la position plus quatre est absente, seuls certains ribosomes initieront la traduction au premier codon AUG.La majorité des ribosomes ignoreront ce codon d’initiation, poursuivront l’acquisition de l’ARNm et initieront la traduction sur un codon d’initiation en aval avec une séquence de reconnaissance optimale. Dans le balayage des fuites, si les deux codons ont le même cadre de lecture, les protéines produites ne différeront que dans leur terminaisons finales. Cela permet aux cellules de produire des protéines sans signal spécifique à l’organite au niveau de l’extrémité N, par exemple.D’autre part, si le codon d’initiation en aval a un cadre de lecture différent de celui du premier codon d’initiation, il peut conduire à la production de différents types de protéines.

11.5:

Codon de démarrage alternatif

Au cours de la plupart des processus de traduction eucaryotes, la petite sous-unité du ribosome 40S scanne un ARNm de son extrémité 5' jusqu’à ce qu’il rencontre le premier codon d’initiation AUG. La grande sous-unité ribosomique 60S rejoint ensuite la plus petite pour initier la synthèse des protéines. Le L’emplacement de l’initiation de la traduction est en grande partie déterminé par les nucléotides proches du codon de départ, car il peut y avoir plusieurs sites d’initiation de la traduction présents sur l’ARNm. Marilyn Kozak a découvert que la séquence RCCAUGG (où R signifie adénine ou guanine) est une séquence de reconnaissance optimale pour l’initiation de la traduction. La purine à la position -3 et la guanine à la position +4 sont hautement conservées dans toutes les espèces animales et végétales et régulent l’initiation de la synthèse des protéines. Si le premier codon d’initiation n’a pas de purine à -3 et la guanine en position +4, alors cette séquence est dans un contexte faible. Par exemple, le virus du rabougrissement de l’arachide contient un ARN qui code pour deux protéines, p23 et p39. Le premier codon d’initiation est destiné à la synthèse de p23 et possède une séquence de reconnaissance faible, CUUAUGU. Environ 30% des ribosomes sauteront le premier codon de démarrage et initieront la traduction à un codon d’initiation en aval à la place, produisant la deuxième protéine, p39. Cette initiation de la traduction sur un site alternatif est connue sous le nom de « leaky scanning » et a été observée dans les ARNm de mammifères, de plantes et de virus.

La distance entre le codon de départ et les autres éléments du transcrit peut également provoquer des fuites d’analyse. Si le premier codon de départ est à moins de 12 nucléotides de l’extrémité 5' de la transcription, le premier AUG peut être sauté. Cela peut également se produire si deux codons de démarrage AUG sont étroitement espacés, comme on le voit dans le segment 6 du virus de la grippe B, où deux codons de démarrage sont séparés par seulement 4 nucléotides.

Leaky scanning permet aux organismes de produire différentes isoformes d’une protéine lorsque les deux codons d’initiation se trouvent dans le même cadre de lecture. Le gène du récepteur des glucocorticoïdes des mammifères est un bon exemple de ce type de balayage à fuite où deux isoformes différentes de la protéine sont produites – le plus grand 94 kDa GR1 et le plus petit 91 kDa GR2. Malgré sa taille plus petite, GR2 est deux fois plus efficace que GR1 dans la transactivation génique. D’autre part, si les premiers codons d’initiation et ceux en aval ont des cadres de lecture différents, cela peut conduire à la production de protéines complètement différentes. Par exemple, l’ARNm du segment 2 du virus de la grippe A peut coder pour 2 protéines différentes. La première protéine est un composant central de la polymérase virale qui est nécessaire à la réplication virale ; la seconde protéine favorise l’apoptose et n’est pas essentielle à la réplication du virus. 

Suggested Reading

  1. Firth, Andrew E., and Ian Brierley. "Non-canonical translation in RNA viruses." The Journal of General Virology 93, no. Pt 7 (2012): 1385.
  2. Yang, Xiaolong, Garry Chernenko, Yawei Hao, Zhihu Ding, Mary M. Pater, Alan Pater, and Shou-Ching Tang. "Human BAG-1/RAP46 protein is generated as four isoforms by alternative translation initiation and overexpressed in cancer cells." Oncogene 17, no. 8 (1998): 981-989.
  3. Ferreira, Joshua P., William L. Noderer, Alexander J. Diaz de Arce, and Clifford L. Wang. "Engineering ribosomal leaky scanning and upstream open reading frames for precise control of protein translation." Bioengineered 5, no. 3 (2014): 186-192.
  4. Yudt, Matthew R., and John A. Cidlowski. "Molecular identification and characterization of a and b forms of the glucocorticoid receptor." Molecular Endocrinology 15, no. 7 (2001): 1093-1103.
  5. Wise, Helen M., Cyril Barbezange, Brett W. Jagger, Rosa M. Dalton, Julia R. Gog, Martin D. Curran, Jeffery K. Taubenberger, Emma C. Anderson, and Paul Digard. "Overlapping signals for translational regulation and packaging of influenza A virus segment 2." Nucleic Acids Research 39, no. 17 (2011): 7775-7790.