成人内皮细胞集落形成祖细胞的分离和大型规模扩张
Summary
内皮细胞集落形成祖细胞（ECFCs）是一种很有前途的的工具来研究血管稳态和维修。<sup> 1,2</sup本文介绍了一种新的动物血清，肝素成人外周血汇集人类血小板裂解液抗牛免疫的风险递减（pHPL）隔离和扩展ECFC方法。
Abstract
本文介绍了一个新颖的恢复策略，对内皮细胞集落形成祖细胞肝素（ECFCs），但在其他unmanipulated成人外周血内，平均12天。 > 1 × 10 8 ECFCs大规模扩张后可以得到进一步的测试。有利的是，通过使用pHPL人体细胞与牛血清抗原的接触可以被排除在外。通过流式细胞仪和免疫组化分离的细胞可以被定性为ECFC 和他们在体外的功能，形成像血管结构，可在基质胶实验测试。这些细胞可皮下注射的小鼠模型，以形成功能， 在体内血管灌注。经过长期的扩张和冷冻保存扩散，功能和基因组的稳定性出现3,4予以保留。
这种动物蛋白的隔离和扩展方法是很容易适用于生成大量的ECFCs。
Protocol
A）ECFC ISOLATON 第一天： 之前，请先准备实验的细胞培养液中血管内皮生长培养基- 2（EGM – 2）。补充500毫升内皮细胞基础培养基与肝素（000 U / ml的1毫升）2，青霉素/链霉素100X 5ml的解决方案（所有Sigma公司，圣路易斯，密苏里州; www.sigmaaldrich.com ），L -谷氨酰胺（终浓度为2毫米），并汇集人类血小板裂解液（pHPL）50毫升。然后添加2毫升hFGF…
Discussion
这种新颖的隔离和扩展方法是一种简单而有效的过程，更有效率和更短的时间消耗，避免任何细胞分离（不需要密度梯度），比传统技术更便宜。通过使用pHPL接触到牛抗原和公认的后续xenoimmunization被排除在外。文化期间可形成小血块，pHPL造成。根据我们的经验，这些凝块不影响细胞集落形成和细胞增殖或功能。
Acknowledgements
作者感谢提供优秀的技术协助pHPL和Margaretha Frühwirth和丹妮拉泰勒博士卡塔琳娜Schallmoser。
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Endothelial basal Medium-2 |
Lonza | 500ml | ||
| EGM-2 SingleQuots | Lonza | EGF, hFGF-B, VEGF, IGF-1, Hydrocortisone, ascorbic acid | ||
| preservative-free Heparin |
Biochrom AG | 10U/ml per EGM-2 | ||
| L-Glutamine | Sigma | 2mM per EGM-2 | ||
| Penicillin and Streptomycin |
Sigma | 100U/mL Penicillin and 100μg/mL Streptomycin per EGM-2 |
||
| Trypsin/1mM EDTA | Gibco Cell Culture, Invitrogen |
7ml for T75 flask 70ml for CF-4 |
||
| PBS | ||||
| Four-layered cell factory (CF-4) |
Corning | |||
| Sterile Funnel | Corning | |||
| T75cm2 culture flask (with vented cap) | Corning | |||
| 6 mL vacutainer tubes (preservative-free sodium heparin) |
Becton Dickenson | preloaded with 108 IU/6ml of preservative-free sodium heparin |
||
| 50ml Falcon tubes | Falcon | |||
| 5ml Stripetts | Costar | |||
| 25ml Stripetts | Costar | |||
| Squeezer | Costar | |||
| 0,2 pore size sterile filter |
Millipore | 2x 500ml per EGM-2 |
References
- Solovey, A., Lin, Y., Browne, P., Choong, S., Wayner, E., Hebbel, R. P. Circulating activated endothelial cells in sickle cell anemia. N Engl J Med. 337, 1584-1590 (1997).
- Yoder, M. C., Mead, L. E., Prater, D. Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals. Blood. 109, 1801-1809 (2007).
- Schallmoser, K. Rapid large-scale expansion of functional mesenchymal stem cells from unmanipulated bone marrow without animal serum. Tissue Eng Part C Methods. 14, 185-196 (2008).
- Reinisch, A. Humanized large-scale expanded endothelial colony-forming cells function in vitro and in vivo. Blood. , (2009).
- Ricardo, R., Phelan, K. Counting and Determining the Viability of Cultured Cells. J Vis Exp. , (2008).
Tags
IsolationLarge Scale ExpansionAdult HumanEndothelial Colony Forming Progenitor CellsRecovery StrategyHeparinized BloodPeripheral BloodPHPLBovine Serum AntigensFlow CytometryImmunohistochemistryIn Vitro FunctionalityVascular StructuresMatrigel AssaySubcutaneous InjectionMouse ModelPerfused VesselsCryopreservationProliferationGenomic StabilityAnimal-protein Free Isolation
Cite This Article
Hofmann, N. A., Reinisch, A., Strunk, D. Isolation and Large Scale Expansion of Adult Human Endothelial Colony Forming Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (32), e1524, doi:10.3791/1524 (2009).