El método IP-FCM se presenta, lo que permite un sensible, sólida evaluación, bioquímicos nativos de interacciones proteína-proteína, sin necesidad de la ingeniería genética o muestras de gran tamaño.
Inmunoprecipitación detectada mediante citometría de flujo (IP-FCM) es un método eficaz para la detección y cuantificación de interacciones proteína-proteína. El principio básico es extensivo de ELISA sandwich, en la cual puede ser el analito capturado primaria detectados junto con otras moléculas físicamente asociados dentro de los complejos multiproteico. El procedimiento consiste en el acoplamiento covalente de microesferas de látex de poliestireno con inmunoprecipitación anticuerpos monoclonales (mAb) específico para una proteína de interés, la incubación de estas cuentas con lisados de células, el sondeo capturado complejos de proteínas con el conjugado a un fluorocromo sondas, y el análisis de cuentas asociadas a fluorescencia por citometría de flujo. IP-FCM es extremadamente sensible, permite el análisis de proteínas en su país natal (no desnaturalizado) del estado, y se presta a ninguno de los análisis semi-cuantitativo o cuantitativo. Como ventajas adicionales, IP-FCM no requiere de la ingeniería genética o equipo especializado, que no sea un citómetro de flujo, y puede ser fácilmente adaptada para aplicaciones de alto rendimiento.
Información acerca de las interacciones proteína-proteína es altamente relevante para el análisis de muchos procesos celulares como la transducción de señales, la maduración del linaje, la progresión del ciclo celular, apoptosis y cascadas. IP-FCM proporciona una forma rápida, cuantitativa y sensible para examinar la interacción de las proteínas y complejos de definir los miembros de multiproteico en su conformación nativa. Cuentas se pueden acoplar y se incubaron con lisados de células en un día y se puede probar y analizar al día siguiente. Un formato de placa de 96 pocillos permite un gran número de muestras a analizar a la vez que ofrezcan servicios de recogida de datos eficiente para fines estadísticos o de tamizaje. Utilizando fluorescentes estándares de cuentas, el número de proteínas capturadas por cada cuenta puede ser estimado. Muy poco material de origen es necesaria para la captura y detección, lo que las muestras limitadas y analitos escasos todavía se pueden analizar las interacciones múltiples. A pesar de IP-FCM no requiere de la ingeniería genética, epítopo de etiquetado, desnaturalización, o in vitro, la mezcla de proteínas en un entorno no-fisiológico, se puede acoplar con estas y otras técnicas, por lo que es un instrumento valioso y accesible, con aplicabilidad a muchos sistemas biológicos.
Solución de problemas:
Muchos IP-FCM experimentos generar datos útiles de interacción de proteínas de la primera vez que se intentó. Sin embargo, la optimización de IP-FCM puede mejorar la conjugación de anticuerpos a los granos, la captura de proteínas complejas, y la sonda fluorescente vinculante.
La eficiencia de la conjugación de anticuerpos IP puede ser determinado mediante el sondeo cuentas directamente acoplado con un anticuerpo anti-inmunoglobulina. Si esta eficiencia es baja, el aumento de la concentración de anticuerpos en la reacción de acoplamiento puede permitir que mayor cantidad de anticuerpos IP para conectar a cada cuenta. Esto puede aumentar la capacidad de unión de los lotes de cuentas IP, lo que resulta en la captura de mejora y la detección de analitos. Otros productos primarios-las moléculas que contienen aminas (por ejemplo, Tris, albúmina sérica bovina) no debe estar presente durante la reacción de acoplamiento, ya que pueden competir con el MAB para la fijación de cuentas y en consecuencia bajo acoplamiento mAb. Si la conjugación de mAb de cuentas resulta problemática por otras razones, en lugar de cuentas puede ser acoplado a avidina / estreptavidina, y posteriormente anticuerpos con biotina puede ser no-covalente y se utiliza para immunprecipitation.
A pesar de una buena conjugación de anticuerpos, la detección inicial de cordón-fluorescencia asociada puede ser baja. La primera captura, el complejo en sí mismo puede ser baja. Debido a que IP-FCM depende de la concentración de los analitos, lo que aumenta el número de células lisadas por unidad de volumen de lisis puede aumentar la captura y detección de analitos. Además, la captura puede ser mejorada al reducir el número de cuentas de IP se incubaron con el lisado, que distribuye a través de complejos de captura menos granos, y los resultados de la fluorescencia mayor promedio por bolas al investigado. En segundo lugar, es posible que el acceso de los anticuerpos de la sonda a los complejos de captura es estéricamente impedido por el anticuerpo inmunoprecipitación. En este caso, el problema puede abordarse mediante el uso de diferentes anticuerpos para capturar y / o la sonda.
Este trabajo fue apoyado por el Premio a la Innovación Águilas (Fraternal Order of Eagles) y por la Fundación Mayo.
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
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carboxylate-modified polystyrene latex (CML) beads (5mm surfactant-free) | Reagent | Interfacial Dynamics Corporation/Molecular Probes | 2-5000 | Store at 4°C. |
Rainbow Calibration Particles | Reagent | Spherotech, Inc. | RCP-30-5A | Store at 4°C. |
2-[N-Morpholino] ethanesulfonic acid (MES) | Reagent | Sigma | M-5287 | |
1-Ethyl-3-(3-dimethylaminopropl) carbodiimide HCl (EDAC) | Reagent | Pierce Sigma |
22980 E-6383 |
Store at -20°C under desiccating conditions. |
Protease Inhibitor General Use Cocktail, containing AEBSF, Bestatin, Aprotinin, EDTA, E-64, and Leupeptin | Reagent | Sigma | P-2714 | Prepare 100x stock solution in H2O. Aliquot and store at -20°C. Handle with gloves. |
PCR plates, 96-well 0.2mL, natural, tall chimney | Reagent | Fisher | 08-408-230 | For use in place of microcentrifuge tubes during FCM staining |