Summary

Quantificazione in vivo di G interazioni proteina recettore accoppiato con spettralmente risolte microscopia a due fotoni

Published: January 19, 2011
doi:

Summary

Utilizzando un spettralmente risolta a due fotoni sistema di imaging microscopia, a livello di pixel mappe di Förster Resonance Energy Transfer (FRET) efficienze sono ottenute per le cellule che esprimono recettori di membrana ipotizzato per formare omo-oligomeriche complessi. Dal FRET mappe efficienza, siamo in grado di stimare le informazioni stechiometrico sui complessi oligomeri in fase di studio.

Abstract

Lo studio delle interazioni delle proteine ​​nelle cellule viventi è una zona importante della ricerca perché le informazioni accumulate entrambe le applicazioni industriali vantaggi così come gli aumenti di base conoscenze di base biologica. Förster (fluorescenza) Resonance Energy Transfer (FRET) tra una molecola donatore in uno stato elettronicamente eccitato e una molecola accettore vicino è stato spesso utilizzato per lo studio di interazioni proteina-proteina nelle cellule viventi. Le proteine ​​di interesse sono contrassegnati da due diversi tipi di sonde fluorescenti ed espressi in cellule biologiche. Le sonde fluorescenti vengono eccitati, in genere utilizzando la luce laser, e le proprietà spettrali delle emissioni di fluorescenza provenienti dalle sonde fluorescenti vengono raccolti e analizzati. Le informazioni relative al grado di interazioni proteina è incorporato nei dati di emissione spettrale. Tipicamente, la cellula deve essere analizzato un certo numero di volte in modo da accumulare abbastanza informazioni spettrali di quantificare con esattezza la portata delle interazioni proteina per ogni regione di interesse all'interno della cellula. Tuttavia, la composizione molecolare di queste regioni può cambiare durante il corso del processo di acquisizione, limitando la determinazione spaziale dei valori quantitativi di apparente efficienza FRET ad una media di cellule intere. Per mezzo di un spettralmente risolta microscopio a due fotoni, siamo in grado di ottenere un set completo di immagini spettralmente risolta solo dopo una scansione completa eccitazione del campione di interesse. Da questi dati spettrali a livello di pixel, una mappa di FRET efficienza per tutta la cella è calcolato. Applicando una semplice teoria di FRET in complessi oligomeriche alla distribuzione sperimentalmente ottenuto di FRET efficienza in tutta la cellula, una singola scansione spettralmente risolta rivela informazioni stechiometrico e strutturali per il complesso oligomeri in fase di studio. Qui si descrive la procedura di preparazione di cellule biologiche (il lievito Saccharomyces cerevisiae) che esprimono recettori di membrana (sterile 2 recettori α-factor) taggati con due diversi tipi di sonde fluorescenti. Inoltre, illustrare i fattori critici coinvolti nella raccolta di dati utilizzando la fluorescenza spettralmente risolta a due fotoni sistema di imaging microscopia. L'utilizzo di questo protocollo può essere estesa allo studio di qualsiasi tipo di proteina che può essere espresso in una cellula vivente con un marcatore fluorescente collegato ad esso.

Protocol

1. Progettazione plasmide Le proteine ​​di interesse sono fuse in una delle due etichette diverse fluorescenti, come descritto di seguito. Le etichette fluorescenti non solo forniscono informazioni sulla posizione delle proteine ​​all'interno della cellula, ma anche informazioni quantitative in materia di omo-oligomerizzazione della proteina 1. La tecnica della fluorescenza Resonance Energy Transfer (FRET) 2-4 viene usato per raccogliere le informazioni sulle …

Discussion

In questa presentazione, abbiamo illustrato come determinare le dimensioni e informazioni strutturali su un complesso proteico oligomeri in vivo. Mentre i dati presentati è stato ottenuto da un recettore di membrana specifico (cioè Ste2p) espressa in cellule di lievito, il metodo è onnicomprensivo, nel senso che può essere applicata a qualsiasi tipo di proteina espressa in qualsiasi tipo di cellula, la unica condizione è che le proteine sono contrassegnati con i marcatori fluorescenti appropriato. Future m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dal UW-Milwaukee Research Initiative crescita, l'Istituto Wisconsin e tecnologie biomediche per la salute e la Fondazione Bradley.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Peptone   Fisher Scientific BP1420  
Yeast Extract   Fisher Scientific BP1422  
Polyethlyene Glycol 4000   Hampton Research HR2-605  
Yeast Nitrogen Base w/o (NH4)2SO4 and amino acids   Fisher Scientific DF0335-15-9  
Yeast Synthetic Drop-out Medium Supplements   Sigma Aldrich Y2001  
D-Glucose   Fisher Scientific D16-1  
Agar   Fisher Scientific S70210  
Ammonium Sulfate   Fisher Scientific A702-500  
Potassium Chloride   Acros Organics 424090010  
Leucine   Fisher Scientific BP385  
Histidine   Fisher Scientific BP382  
Plan Achromat Infinity Corrected 100x Oil Immersion Objective NA=1.43   Nikon    
Spectrally resolved two photon microscope        

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Cite This Article
Stoneman, M., Singh, D., Raicu, V. In vivo Quantification of G Protein Coupled Receptor Interactions using Spectrally Resolved Two-photon Microscopy. J. Vis. Exp. (47), e2247, doi:10.3791/2247 (2011).

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