Combinatie van Adhesive-tape-gebaseerde Sampling en fluorescentie In situ Hybridisatie voor snelle detectie van Salmonella Op Fresh Produce
Summary
Dit protocol beschrijft een eenvoudige zelfklevende tape-gebaseerde aanpak voor de bemonstering van de tomaten en andere verse producten oppervlakken, gevolgd door een snelle volledige cel detectie van<em> Salmonella</em> Met behulp van fluorescentie<em> In situ</em> Hybridisatie (FISH).
Abstract
Dit protocol beschrijft een eenvoudige benadering voor lijm-tape-gebaseerde steekproef van tomaten en andere verse producten oppervlakken, gevolgd door on-tape fluorescentie in situ hybridisatie (FISH) voor snelle cultuur-onafhankelijke detectie van Salmonella spp. Cell-tapes opgeladen kan ook het gezicht naar beneden worden geplaatst op selectieve agar voor vaste-fase verrijking voorafgaand aan de detectie. Als alternatief kan een laag-volume vloeistof verrijkingen (vloeistofoppervlak miniculture) worden uitgevoerd op het oppervlak van de tape in niet-selectieve bouillon, gevolgd door FISH en analyse via flowcytometrie. Om te beginnen, steriele zelfklevende tape is in contact gebracht met verse producten, wordt lichte druk toegepast, en de tape is verwijderd, fysiek extraheren microben aanwezig zijn op deze oppervlakken. Tapes zijn gemonteerd sticky-kant naar boven op glas microscoop dia's en de bemonsterde cellen gefixeerd met 10% formaline (30 min) en gedehydrateerd met behulp van een ethanolreeks (50, 80, en 95%, 3 minuten elke concentratie). Vervolgens cel geladen tapes zijn gespot met een buffer met een Salmonella-gerichte DNA-probe cocktail en gehybridiseerd gedurende 15 – 30 min bij 55 ° C, gevolgd door een korte spoeling in een wasbuffer om ongebonden probe te verwijderen. Aanhanger, zijn FISH-gelabelde cellen vervolgens tegengekleurd met de DNA-kleurstof 4 ',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) en de resultaten worden bekeken met behulp van fluorescentie microscopie. Voor vaste-fase verrijking, worden cel-betalen tapes face-down geplaatst op een geschikte selectieve agar oppervlak en geïncubeerd om in situ groei van Salmonella microkolonies, gevolgd door FISH en microscopie zoals hierboven beschreven. Voor vloeistofoppervlak miniculture, zijn cel geladen tapes geplaatst kleverige kant omhoog en een siliconen perfusie kamer wordt toegepast, zodat de tape en het objectglaasje vormen de bodem van een waterdichte kamer waarin een klein volume (≤ 500 pi) van trypticasesoja bouillon (TSB) is geïntroduceerd. De inlaat poorten zijn afgesloten en de kamers zijn geïncubeerd bij 35 – 37 ° C, waardoor de groei-gebaseerde amplificatie van de tape-geëxtraheerde microben. Na de incubatie, inlaatpoorten zijn onverhard, cellen zijn vrijstaand en gemengd met krachtig heen en weer pipetteren, geoogst via centrifugeren en gefixeerd in 10% neutraal gebufferde formaline. Tot slot, worden monsters gehybridiseerd en onderzocht via flowcytometrie om de aanwezigheid van Salmonella spp onthullen. Zoals hier beschreven, kan onze "tape-FISH 'aanpak van eenvoudige en snelle bemonstering en opsporing van Salmonella op tomaten oppervlakken. We hebben ook gebruik gemaakt van deze aanpak voor de bemonstering andere soorten verse producten, waaronder spinazie en jalapeño pepers.
Protocol
Discussion
Eenvoudige en snelle methodes voor de detectie van pathogenen op de productie van oppervlakken kan helpen verzachten door voedsel overgedragen ziekten door het verstrekken van tijdige en bruikbare data. Zelfklevende tape op basis van bemonsteringsmethoden zijn gebruikt in milieu-, klinische en levensmiddelenmicrobiologie sinds de jaren 1950 en omvatten indrukken van "Scotch"-stijl tape aan oppervlakken voor het verwijderen van micro-organismen, gevolgd door direct microscopisch onderzoek of de overdracht van h…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
De financiering van dit werk werd geleverd door een Grow Iowa Values Fund toe te kennen aan BFBS.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Fungi-Tape sampling tape | Scientific Device Laboratory, Des Plaines, IL | 745 | http://www.scientificdevice.com/ | |
| Con-Tact-It sampling tape | Birko Corporation, Denver, CO | http://www.birkocorp.com/ | ||
| Clear office tape, generic | Various suppliers | Should be optically clear, have low intrinsic fluorescence | ||
| Food surface | Local grocery | Tomatoes (red tomatoes on the vine, not waxed or oiled) used here | ||
| Trypticase Soy Broth | Difco, Sparks, MD | 211768 | For non-selective liquid surface miniculture enrichment | |
| Xylose-lysine-Tergitol 4 agar base | Difco, Sparks, MD | 223420 | For Salmonella-selective agar (XLT-4) | |
| Xylose-lysine-Tergitol 4 agar supplement | Difco, Sparks, MD | 235310 | For Salmonella-selective agar (XLT-4) | |
| Formalin solution | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | HT5011 | 10% solution, neutral, buffered (cell fixative) | |
| Absolute ethanol | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | E7023 | Molecular biology grade (pre-hybridization dehydration) | |
| 1.5 ml microcentrifuge tubes | Various suppliers | RNase- and DNase-free | ||
| Microscope slides and cover slips | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | |||
| NaCl solution | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | S5150 | Molecular biology grade, 5M solution (hybridization buffer component) | |
| Tris-EDTA buffer solution (100X concentrate) | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | T9285 | 1M Tris [pH 8.0], 0.1M EDTA (hybridization buffer component) | |
| Sodium dodecyl sulfate solution | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | L4522 | 10% solution in 18 megohm water (hybridization buffer component) | |
| Sal3 and Salm-63 oligonucleotide probes | Integrated DNA Technologies, Coralville, IA | 5’-labeled with 6-carboxyfluorescein (FAM) or Texas Red (for microscopy) or Cy5 (for cytometry), HPLC-purified | ||
| Variable speed microcentrifuge | Various suppliers | Use rotor diameter to calculate RPM needed for RCF values described in protocol | ||
| CoverWell perfusion chamber | Grace Bio-Labs Inc., Bend, OR | PC1R-2.0 | Non-sterile | |
| Gel loading pipette tips (FS MultiFlex) | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | 05-408-151 | Long, thin tips for easy access to small sampling ports and maneuverability within chamber | |
| Aluminum heat block or precision-controlled heating station | Various suppliers | Eppendorf Thermomixer R dry block heating and cooling shaker used here | ||
| Bambino mini hybridization oven | Boekel Scientific, Feasterville, PA | Model 230300 | Slides are placed in 50 ml polypropylene centrifuge tubes for hybridization, heat transfer not direct | |
| Slide Moat slide hybridizer | Boekel Scientific, Feasterville, PA | Model 240000 | Provides rapid, direct transmission of heat through glass slide | |
| Vectashield H-1200 mounting medium with 4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Vector Laboratories, Inc., Burlingame, CA | H-1200 | Minimizes quenching of fluorescence during microscopy, provides DAPI counterstain | |
| Fluorescence microscope | Various suppliers | Leitz Laborlux S used here | ||
| Digital camera | Various suppliers | Canon PowerShot A640 camera used here | ||
| Image acquisition software | Various suppliers | Axiovision software v. 4.6 (Carl Zeiss) used | ||
| Adobe Photoshop | Adobe Inc. | For minimal processing of images (overlay of images taken in different channels) | ||
| Flow cytometer | Various suppliers | FACSCanto flow cytometer (BD Biosciences, San Jose, CA) with red (647 nm) excitation used | ||
| Flow cytometry analysis software | Various suppliers | FlowJo software v. 8.7.1 (Tree Star, Inc.) used |
References
- Almeida, C., Azevedo, N. F., Fernandes, R. M., Keevil, C. W., Vieira, M. J. Fluorescence in situ hybridization method using a peptide nucleic acid probe for the identification of Salmonella spp. in a broad spectrum of samples. Appl. Environ. Microbiol. 76, 4476-4485 (2010).
- Barnetson, R. S., Milne, L. J. R. Skin sampling for Candida with adhesive tape. Br. J. Dermatol. 88, 487-491 (1973).
- Bisha, B., Brehm-Stecher, B. F. Simple adhesive-tape-based sampling of tomato surfaces combined with rapid fluorescence in situ hybridization for Salmonella detection. Appl. Environ. Microbiol. 75, 1450-1455 .
- Bisha, B., Brehm-Stecher, B. F. Flow-through imaging cytometry for characterization of Salmonella subpopulations in alfalfa sprouts, a microbiologically complex food system. Biotechnol. J. 4, 880-887 (2009).
- Edwards, R. W., Hartman, E. A simple technique for collecting fungus specimens from infected surfaces. Lloydia. 15, 39-39 (1952).
- Evancho, G. M., Sveum, W. H., Moberg, L. J., Frank, J. F., Pouch Downes, F., Ito, K. Microbiological monitoring of the food processing environment. Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods. , (2001).
- Fung, D. Y. C., Lee, C. Y., Kastner, C. L. Adhesive tape method for estimating microbial load on meat surfaces. J. Food. Prot. 43, 295-297 (1980).
- Kutter, S., Hartmann, A., Schmid, M. Colonization of barley (Hordeum vulgare) with Salmonella enterica and Listeria spp. FEMS Microbiol. Ecol. 56, 262-271 (2006).
- La Cono, V., Urz, C. Fluorescent in situ hybridization applied on samples taken with adhesive tape strips. J. Microbiol. Meth. 55, 65-71 (2003).
- Lakshmanan, C., Schaffner, D. W. Understanding and controlling microbiological contamination of beverage dispensers in university foodservice operations. Food Prot. Trends. 26, 27-31 (2005).
- Langvad, F. A simple and rapid method for qualitative and quantitative study of the fungal flora of leaves. Can. J. Microbiol. 26, 666-670 (1980).
- Nordentoft, S., Christensen, H., Wegener, H. C. Evaluation of a fluorescence-labelled oligonucleotide probe targeting 23S rRNA for in situ detection of Salmonella serovars in paraffin-embedded tissue sections and their rapid identification in bacterial smears. J. Clin. Microbiol. 35, 2642-2648 (1997).
