Summary

En enkel droppe cellodling protokoll för generering av 3D spheroids

Published: May 06, 2011
doi:

Summary

Vi beskriver en enkel, snabb metod för att generera 3D vävnad-liknande spheroids och deras potential ansökan att kvantifiera skillnaderna i cell-cell interaktioner.

Abstract

Studier av cell-cell sammanhållning och cell-underlag vidhäftning har historiskt utförts på monolayer kulturer anhängare till styva substrat. Celler i en vävnad, men är vanligtvis inneslutet i ett tätt vävnad massa i vilka celler etablera intima förbindelser med många nära grannar och extracellulära matrix komponenter. Följaktligen kemiska miljö och fysiska krafter som upplevs av celler i en 3D-vävnad är fundamentalt annorlunda än de som upplevs av celler som odlas i monolager kultur. Detta har visat sig påtagligt påverkar cellulär morfologi och signalering. Flera metoder har utformats för att generera 3D cellkulturer, inklusive inkapsling av celler i kollagen geler 1 eller i biomaterial byggnadsställningar 2. Sådana metoder, medan användbara, inte rekapitulera inte det intima direkta cell-cell adhesion arkitektur som finns i normal vävnad. Snarare de närmare ungefärliga kultur system där enskilda cellerna är löst spridda inom ett 3D meshwork av ECM-produkter. Här beskriver vi en enkel metod där cellerna är placerade i droppe kultur och inkuberas under fysiologiska förhållanden tills de bildar äkta 3D spheroids i vilka celler i direkt kontakt med varandra och med extracellulära matrix komponenter. Metoden kräver ingen specialutrustning och kan anpassas för att inkludera tillägg av biologiska agens i mycket små mängder som kan vara av intresse för att belysa effekter på cell-cell eller cell-ECM interaktion. Metoden kan också användas för att samarbeta kultur två (eller fler) olika cellpopulationer så att klarlägga vilken roll av cell-cell eller cell-ECM interaktioner i specificera rumsliga relationer mellan celler. Cell-cell sammanhållning och cell-ECM vidhäftning är hörnstenarna i studier av embryonal utveckling, tumör-stromaceller cell interaktion i maligna invasion, sårläkning och för ansökningar till tissue engineering. Denna enkla metod kommer att ge en metod för att generera vävnad-liknande cellulära aggregat för mätning av biomekaniska egenskaper eller för molekylära och biokemiska analyser i en fysiologiskt relevant modell.

Protocol

1. Beredning av en enda cell Fjädring Vidhäftande cellkulturer bör odlas till 90% sammanflödet bör varefter monolager sköljas två gånger med PBS. Efter dränering väl, tillsätt 2 MLS (för 100 mm plattor) på 0,05% trypsin-1 mM EDTA, och inkubera vid 37 ° C tills cellerna lossnar. Sluta trypsinization genom att tillsätta 2 ml av kompletta medium och försiktigt använda en 5 ml-pipetten på mal sönder blandningen tills cellerna är i suspension. Överför celler till en 15 ml koniska rör. <…

Discussion

Studier har visat att odling celler i ett tredimensionellt sammanhang (3D) producerar distinkt cellulär morfologi och signalering jämfört med en stel tvådimensionell (2D) kultur-systemet 9. Till exempel fibroblast befolkade kollagen geler visa att fibroblast morfologi i 3D är helt skild från den som observerats i 2D 10,11. Likaså kan 3D kultur framkalla vävnadsspecifika differentiering av bröst epitelceller. 3D-kultur-system har använts för att skilja mellan normala och maligna celler oc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författaren vill tacka Dr Dongxuan Jia för tekniskt stöd. Några av bilderna som visas i denna artikel har i samarbete med Dr Malcolm S. Steinberg, Institutionen för molekylärbiologi, Princeton University. Författaren vill också tacka försvarsdepartementet Prostate Cancer Research Program (bidrag PC-030.482 och PC-991.552) och GNI / NIH (bidrag R01CA118755) för deras generösa stöd.

Materials

  • automatic cell counter (BioRad TC10)
  • shaking water bath with CO2 gable cover Model 3540 (Lab-line)

References

  1. Cukierman, E., Pankov, R., Yamada, K. M. Cell interactions with three-dimensional matrices. Curr Opin Cell Biol. 14, 633-639 (2002).
  2. Nelson, C. M., Bissell, M. J. Of extracellular matrix, scaffolds, and signaling: tissue architecture regulates development, homeostasis, and cancer. Annu Rev Cell Dev Biol. 22, 287-309 (2006).
  3. Davis, G. S., Phillips, H. M., Steinberg, M. S. Germ-layer surface tensions and &quot;tissue affinities&quot; in Rana pipiens gastrulae: quantitative measurements. Dev Biol. 192, 630-644 (1997).
  4. Schotz, E. M. Quantitative differences in tissue surface tension influence zebrafish germ layer positioning. HFSP J. 2, 42-56 (2008).
  5. Jia, D., Dajusta, D., Foty, R. A. Tissue surface tensions guide in vitro self-assembly of rodent pancreatic islet cells. Dev Dyn. 236, 2039-2049 (2007).
  6. Foty, R. A., Steinberg, M. S. The differential adhesion hypothesis: a direct evaluation. Dev Biol. 278, 255-263 (2005).
  7. Li, D. Expression of the casein kinase 2 subunits in Chinese hamster ovary and 3T3 L1 cells provides information on the role of the enzyme in cell proliferation and the cell cycle. J Biol Chem. 274, 32988-32996 (1999).
  8. Foty, R. A., Pfleger, C. M., Forgacs, G., Steinberg, M. S. Surface tensions of embryonic tissues predict their mutual envelopment behavior. Development. 122, 1611-1620 (1996).
  9. Wendt, D., Riboldi, S. A., Cioffi, M., Martin, I. Potential and bottlenecks of bioreactors in 3D cell culture and tissue manufacturing. Adv Mater. 21, 3352-3367 (2009).
  10. Berry, D. P., Harding, K. G., Stanton, M. R., Jasani, B., Ehrlich, H. P. Human wound contraction: collagen organization, fibroblasts, and myofibroblasts. Plast Reconstr Surg. 102, 124-131 (1998).
  11. Grinnell, F. Fibroblast biology in three-dimensional collagen matrices. Trends Cell Biol. 13, 264-269 (2003).
  12. Wang, F. Reciprocal interactions between beta1-integrin and epidermal growth factor receptor in three-dimensional basement membrane breast cultures: a different perspective in epithelial biology. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 14821-14826 (1998).
  13. Weaver, V. M. Reversion of the malignant phenotype of human breast cells in three-dimensional culture and in vivo by integrin blocking antibodies. J Cell Biol. 137, 231-245 (1997).
  14. Boudreau, N., Werb, Z., Bissell, M. J. Suppression of apoptosis by basement membrane requires three- dimensional tissue organization and withdrawal from the cell cycle. Proc Natl Acad Sci U S A. 93, 3509-3513 (1996).
  15. Croix, B., Rak, J. W., Kapitain, S., Sheehan, C., Graham, C. H., Kerbel, R. S. Reversal by hyaluronidase of adhesion-dependent multicellular drug resistance in mammary carcinoma cells. J. Nat. Cancer Inst. 88, 1285-1296 (1996).
  16. Bissell, M. J. Tissue structure, nuclear organization, and gene expression in normal and malignant breast. Cancer Res. 59, 1757-1763 (1999).
  17. Marrero, B., Messina, J. L., Heller, R. Generation of a tumor spheroid in a microgravity environment as a 3D model of melanoma. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 45, 523-534 (2009).
  18. Napolitano, A. P. Scaffold-free three-dimensional cell culture utilizing micromolded nonadhesive hydrogels. Biotechniques. 43, 494-496 (2007).
  19. Tibbitt, M. W., Anseth, K. S. Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cell culture. Biotechnol Bioeng. 103, 655-663 (2009).
check_url/2720?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Foty, R. A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720, doi:10.3791/2720 (2011).

View Video