Summary

Lentiviral بوساطة خلال ضربة قاضية السابقين فيفو تكون الكريات الحمر في الإنسان خلايا الجذعية المكونة للدم

Published: July 16, 2011
doi:

Summary

و<em> خارج الحي</em> بروتوكول ناضجة لتوليد خلايا الدم الحمراء من الجذعية المكونة للدم / أسلاف الموصوفة. بالإضافة إلى ذلك وصفنا فعال lentiviral التسليم طريقة لضربة قاضية في TAL1 عامل النسخ في الخلايا الأولية محمر. وأظهر كفاءة تسليم الفيروسة البطيئة بوساطة الجينات باستخدام الفيروسات GFP الإعراب.

Abstract

تكون الكريات الحمر هو نظام نموذجي تستخدم عادة لدراسة تمايز الخلايا. أثناء تكون الكريات الحمر ، والكبار الإنسان المحفزة الخلايا الجذعية المكونة للدم (HSCs) تفرق في oligopotent الأسلاف ، والسلائف ملتزمة وخلايا الدم الحمراء الناضجة 1. وينظم هذه العملية جزءا كبيرا على مستوى الجينات ، حيث عوامل النسخ النسب المحددة تنشيط جينات معينة في حين تقمع متزامنة الجينات التي هي محددة لأنواع الخلايا الأخرى 2. وكثيرا ما تتم الدراسات على عوامل النسخ التي تنظم تكون الكريات الحمر باستخدام خطوط الخلايا البشرية والفئران التي تمثل ، إلى حد ما ، والخلايا الحمر في مراحل معينة من التمايز 3-5. يمكن تحويل خطوط الخلية ولكن جزئيا فقط تحاكي الخلايا محمر والأهم من ذلك أنها لا تسمح لأحد لدراسة مفهومة التغيرات الدينامية التي تحدث مع تقدم الخلايا من خلال عدة مراحل من أجل مصيرهم محمر النهائي. ولذلك ، فإن التحدي الحالي لا يزال في وضع بروتوكول للحصول على السكان متجانسة نسبيا من الخلايا الأولية وHSCs محمر في مراحل مختلفة من التمايز في الكميات التي تكفي لإجراء التجارب والجينوميات البروتيوميات.

نحن هنا وصف خلية فيفو السابقين بروتوكول للحث على تمايز الثقافة محمر من الخلايا الجذعية البشرية / السلف للدم التي تم عزلها من دم الحبل السري سواء ، ونخاع العظام أو الدم المحيطي الكبار حشدت مع G – CSF (leukapheresis). ثقافة هذا النظام ، وضعت في البداية من قبل المختبر Douay 6 ، يستخدم السيتوكينات وشارك الثقافة على خلايا اللحمة المتوسطة لتقليد المكروية نخاع العظام. باستخدام هذا التمايز فيفو السابقين البروتوكول ، أن نلاحظ التضخيم قوية من أسلاف محمر ، وتحريض تمايز حصرا نحو النسب محمر والنضج الكامل إلى مرحلة منزوعة النواة خلايا الدم الحمراء. وبالتالي ، فإن هذا النظام يوفر فرصة لدراسة الآلية الجزيئية لتنظيم النسخي كما تقدم الخلايا الجذعية المكونة للدم على طول نسب محمر.

دراسة تكون الكريات الحمر على الصعيد الترانسكربتي يتطلب أيضا القدرة على عوامل محددة الإفراط في التعبير عن ضربة قاضية أو محمر في الخلايا الأولية. لهذا الغرض ، ونحن نستخدم تسليم الجين الفيروسة البطيئة بوساطة نظام يسمح لكفاءة كل من العدوى وعدم تقسيم تقسيم خلايا 7. هنا نظهر أننا قادرون على ضربة قاضية بكفاءة TAL1 عامل النسخ في الخلايا الأولية محمر الإنسان. بالإضافة إلى ذلك ، GFP التعبير يدل على كفاءة عدوى lentiviral ما يقرب من 90 ٪. وهكذا ، لدينا بروتوكول يوفر نظام مفيدا للغاية لتوصيف الشبكة التنظيمية للعوامل النسخ التي تكون الكريات الحمر السيطرة.

Protocol

Part I. ex vivo erythropoiesis of human hematopoietic stem/progenitor cells 1. Isolation of CD34+ human hematopoietic stem/progenitor cells Human CD34+ cell population, which contains a mixture of hematopoietic stem cells (HSCs) and early progenitors 8, is harvested from umbilical cord blood, peripheral blood mobilized with G-CSF (leukapheresis) or bone marrow (Figure 1-Step1). If using cord blood or peripheral blood, go direct…

Discussion

وقد تم استخدام عدد من الأساليب للتمييز من قبل الخلايا الحمر في الثقافة بدرجات متفاوتة من النجاح. على سبيل المثال ، بعض البروتوكولات بدون ثقافة مشتركة على MS – 5 يتيح التوسع في الخلايا محمر ولكن ليست فعالة في انتاج ناضجة تماما منزوعة النواة خلايا الدم الحمراء 12-17. ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر L. Douay ومولودية Giarratana (جامعة باريس السادسة ، فرنسا) للحصول على المشورة بشأن المفاضلة المجراة سابقا محمر ، D. ألان واتكينز H. (OHRI ، كندا) لتوفير عينات الدم (التي تم الحصول عليها تحت مستشفى أوتاوا مجلس أخلاقيات البحث # 2007804 – 01H) ، D. Trono (ايكول بوليتكنيك دي الاتحادية لوزان) لتوفير ناقلات lentiviral وFJ Dilworth (OHRI ، كندا) لقراءة نقدية للمخطوطة. وقد تم تمويل هذا المشروع من خلال منحة CIHR (MOP – 82813) لMBCGP هي المستفيدة من صندوق البحوث أونتاريو الحاسوبية زمالة التدريب Regulomics بعد الدكتوراة. MB يحمل كرسي أبحاث كندا في تنظيم التعبير الجيني.

References

  1. Orkin, S. H., Zon, L. I. Hematopoiesis: an evolving paradigm for stem cell biology. Cell. 132, 631-644 (2008).
  2. Kim, S. I., Bresnick, E. H. Transcriptional control of erythropoiesis: emerging mechanisms and principles. Oncogene. 26, (2007).
  3. Friend, C., Patuleia, M. C., De Harven, E. Erythrocytic maturation in vitro of murine (Friend) virus-induced leukemic cells. Natl Cancer Inst Monogr. 22, 505-522 (1966).
  4. Weiss, M. J., Yu, C., Orkin, S. H. Erythroid-cell-specific properties of transcription factor GATA-1 revealed by phenotypic rescue of a gene-targeted cell line. Mol Cell Biol. 17, 1642-1651 (1997).
  5. Lozzio, B. B., Lozzio, C. B., Bamberger, E. G., Feliu, A. S. A multipotential leukemia cell line (K-562) of human origin. Proc Soc Exp Biol Med. 166, 546-550 (1981).
  6. Giarratana, M. C. Ex vivo generation of fully mature human red blood cells from hematopoietic stem cells. Nat Biotechnol. 23, 69-74 (2005).
  7. Salmon, P., Trono, D. Production and titration of lentiviral vectors. Curr Protoc Neurosci. Chapter 4, (2006).
  8. Chao, M. P., Seita, J., Weissman, I. L. Establishment of a normal hematopoietic and leukemia stem cell hierarchy. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 73, 439-449 (2008).
  9. Amsellem, S., Ravet, E., Fichelson, S., Pflumio, F., Dubart-Kupperschmitt, A. Maximal lentivirus-mediated gene transfer and sustained transgene expression in human hematopoietic primitive cells and their progeny. Mol Ther. 6, 673-677 (2002).
  10. Laurenti, E. Inducible gene and shRNA expression in resident hematopoietic stem cells in vivo. Stem Cells. 28, 1390-1398 (2010).
  11. Palii, C. G. Differential genomic targeting of the transcription factor TAL1 in alternate haematopoietic lineages. EMBO J. 30, 494-509 (2011).
  12. Fibach, E., Manor, D., Oppenheim, A., Rachmilewitz, E. A. Proliferation and maturation of human erythroid progenitors in liquid culture. Blood. 73, 100-103 (1989).
  13. Wada, H. Expression of major blood group antigens on human erythroid cells in a two phase liquid culture system. Blood. 75, 505-511 (1990).
  14. Sui, X. Erythropoietin-independent erythrocyte production: signals through gp130 and c-kit dramatically promote erythropoiesis from human CD34+ cells. J Exp Med. 183, 837-845 (1996).
  15. Panzenbock, B., Bartunek, P., Mapara, M. Y., Zenke, M. Growth and differentiation of human stem cell factor/erythropoietin-dependent erythroid progenitor cells in vitro. Blood. 92, 3658-3668 (1998).
  16. Lindern, M. v. o. n. The glucocorticoid receptor cooperates with the erythropoietin receptor and c-Kit to enhance and sustain proliferation of erythroid progenitors in vitro. Blood. 94, 550-559 (1999).
  17. Freyssinier, J. M. amplification and characterization of a population of human erythroid progenitors. Br J Haematol. 106, 912-922 (1999).
  18. Malik, P. An in vitro model of human red blood cell production from hematopoietic progenitor cells. Blood. 91, 2664-2671 (1998).
  19. Carlile, G. W., Smith, D. H., Wiedmann, M. Caspase-3 has a nonapoptotic function in erythroid maturation. Blood. 103, 4310-4316 (2004).
  20. Mazurier, F. Rapid analysis and efficient selection of human transduced primitive hematopoietic cells using the humanized S65T green fluorescent protein. Gene Ther. 5, 556-562 (1998).
  21. Salmon, P. High-level transgene expression in human hematopoietic progenitors and differentiated blood lineages after transduction with improved lentiviral vectors. Blood. 96, 3392-3398 (2000).
check_url/2813?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Palii, C. G., Pasha, R., Brand, M. Lentiviral-mediated Knockdown During Ex Vivo Erythropoiesis of Human Hematopoietic Stem Cells. J. Vis. Exp. (53), e2813, doi:10.3791/2813 (2011).

View Video