Twee modellen zijn levensduur wordt gebruikt om te studeren veroudering in S. cerevisiae: RLS en CLS. De replicatieve (ontluikende) levensduur (RLS) is gebaseerd op de observatie dat gist moeder cellen een eindig aantal divisies 3-6 ondergaan. Zullen we ons richten op de chronologische levensduur (CLS), een model gebaseerd op de chronologische overleving van niet-delende gist in cultuur of op platen 7-11. Wild type gist groeit exponentieel voor 10-12 uur in synthetische dextrose complete (SDC) medium . Bij het glucose niveau verlaagt, gist overschakelt van fermentatie tot ademhaling, een proces genaamd diauxic verschuiven. Cellen langzaam blijven delen tijdens de post-diauxic fase voor ongeveer 48 uur vóór het binnenvaren G 0 arresteren. De stofwisseling van de cellen blijft hoog tot dag 5-6 (dag 0 is de inenting dag). Levensvatbaarheid van de cellen na verloop van tijd kan worden geopend met het percentage van de chronologisch verouderende cellen, bemonsterd om de twee dagen, die G 0 arrestatie en vormen kolonies op rijke YPED platen kunnen verlaten. 1. Gist chronologische levensduur (CLS) in vloeibare cultuur Inoculeren een enkele kolonie in 1 ml synthetisch volledige glucose-medium (SDC, tabel 1) en incubeer overnacht met schudden (220 rpm) bij 30 ° C. Drie inoculums van onafhankelijke kolonies moeten worden voorbereid voor elke stam om de biologische replica's te bieden. Verdun het 's nachts de cultuur in verse SDC medium (meestal 10 ml) tot OD = 0.05-0.1 (~ 1:100 verdunning) en incubeer met schudden (220 rpm) bij 30 ° C. Dit tijdstip wordt beschouwd als dag 0 van de chronologische veroudering. Handhaaf een 1:5 verhouding van cultuur / fles volume (10 ml cultuur in 50 ml, of voor een langere / grote experimenten 25 ml cultuur in 125 ml) om een goede beluchting zorgen. Vanaf dag drie, twee porties van 10 pi uit de kolf te verwijderen, verdunnen 10.000 keer in geautoclaveerd water, 10 ui verdund cultuur (dat wil zeggen, 10 4 -10) op YEPD (1% gistextract, 2% Bacto pepton, 2% glucose , 2% agar) platen, en incubeer bij 30 ° C voor 48-72 uur voordat kolonievormende verenigen (CFU) is geteld. Dag 3 CFU wordt beschouwd als 100% overleving. Verdunningsfactoren van vergrijzing cultuur in de daaropvolgende dagen moet dienovereenkomstig worden aangepast aan ~ 20-100 kolonies in de CFU-test (bijvoorbeeld 10 4 -10, 10 4 -30, 10 3 -10, etc.) te verzekeren. Voor wild-type cellen in de DBY746 achtergrond, de CLS bereikt 1% overleving rond dag 11. Variaties van in situ levensvatbaarheid test zijn onder meer: Caloriebeperking (CR) van glucose beperking. Verdunning van 's nachts cultuur in glucose beperkte SC medium (zoals 0,5 of 0,05% in plaats van de standaard 2% glucose) in het algemeen leiden tot een lagere dichtheid bevolking verzadiging op dag 3, maar veel langere gemiddelde en maximale (10% overleving) levensduur 12. Voor extreme CR / honger, was de dag 3 stationaire fase cultuur (meestal 10 ml, zoals in stap 3 hierboven) met geautoclaveerd water (resuspendeer cellen in gelijke hoeveelheid water en spin neer op 2500 rpm gedurende 5 minuten, herhaal 3 keer). Incubationof cellen in water bootst de honger voorwaarde dat de gist kunnen tegenkomen in het wild. Om de twee dagen daarna, moet veroudering cultuur gewassen met geautoclaveerd water en opnieuw gesuspendeerd in gelijke hoeveelheid water die alle voedingsstoffen vrijkomen uit gelyseerde dode cellen te verwijderen. Voer levensvatbaarheid assay door bemonstering van de vergrijzing van de cultuur zoals hierboven beschreven. Deze toestand zal hongersnood leidde tot bijna een verdubbeling van de gemiddelde CLS in het wild type DBY746 stam 12. 2. Ter plaatse levensvatbaarheid assay In de vloeistof cultuur, een klein deel van de overlevende cellen kunnen de celcyclus opnieuw worden ingevoerd en te groeien gebruik te maken van de resterende voedingsstoffen of deze vrijgegeven vorm gelyseerd dode cellen in het medium, een fenotype genoemd hergroei / hijgend 13. We ontwikkelden een levensvatbaarheid-op-een-plaat systeem dat de auxotrofie van de DBY746 stam (trp1) gebruikt voor het omzeilen van de hergroei / hijgend probleem en ook laat het testen van het effect van constante blootstelling of ontbering van verschillende externe stimuli voedingsstoffen of op gist CLS 11. Deze in situ levensvatbaarheid assay bootst ook de replicatieve levensduur model zoals dat cellen voortdurend worden blootgesteld aan overvloedige voedingsstoffen voor de duur van de levensduur analyse. Inoculeren een enkele kolonie in 1 ml synthetisch volledige glucose-medium (SDC) en incubeer overnacht met schudden (220 rpm) bij 30 ° C. Ten minste drie inoculums van onafhankelijke kolonies moeten worden voorbereid voor elke stam om de biologische replica's te bieden. Laat de cultuur om te groeien tot ~ 10 8 cellen / ml (OD 600 = ~ 10), vul het culturewith geautoclaveerd water met 100-200 cell/10 ui (meestal 10 4-voudige verdunning) en 1.000 cells/10 il (10 3 -voudige verdunning). Bord twee aliquots van 10-30 ul van de verwaterde cultuur op een tryptofaan uitval SDC plaat. Voorr elke stam, bereiden een reeks van 8 tot 20 platen en geëtiketteerd overeenkomstig plating dichtheid (bv. 10 4-voudig verdund, plaat 10 ui of 10 4 -10, 10 4 -30, 10 3 -10, 10 -30 3 , enz.), die ervoor zorgen 10-100 kolonies kunnen worden geteld in afwachting van verminderde levensvatbaarheid tijdens het ouder worden. Incubeer de plaat ingesteld op 30 ° C voor de duur van de levensduur analyse. Op de dag van de beplating en om de 2 dagen daarna, verwijder een plaat en druppelsgewijs voeg 0,5 ml Tryptofaan (2 mg / ml), zodat levensvatbare cellen om te groeien. Incubeer de plaat bij 30 ° C voor extra 48-72 uur. Tel de CFU voor levensvatbaarheid op de dag van tryptofaan toevoeging. De CFU op de dag van plating wordt beschouwd als 100% overleving. Variaties van in situ levensvatbaarheid test zijn onder meer: Leeftijd van cellen op agarplaten (extreme honger conditie). Voeg 1 ml 2x YPED in plaats van tryptofaan op de volgende dagen aan de groei en CFU tellen 14 mogelijk te maken. Leeftijd cellen op platen met tryptofaan uitval synthetisch complete medium met verschillende koolstofbronnen, zoals verschillende concentraties van glucose (calorie beperking door glucose beperking), diverse koolstofbronnen, zoals ethanol, glycerol, azijnzuur 14. Voeg 1 ml glucose / tryptofaan-oplossing (20% glucose en 1mg/ml tryptofaan) om de groei en de CFU tellen mogelijk te maken. Andere voedingsstoffen manipulatie, zoals stikstof. 3. DNA-schade en mutatie frequentie tijdens chronologische veroudering Canavanine weerstand (Can r) en CAN1 sequencing Spontane mutatie frequentie kan worden geëvalueerd door het meten van de frequentie van de Canavanine weerstand (Can r) in chronologische veroudering culturen. Mutaties in het CAN1 (YEL063) gen, waarin het plasma arginine permease codeert, maken cellen resistent zijn tegen de arginine analoge L-canavanine.Can r kolonies verzameld op verschillende tijdstippen kunnen ook worden opgeslagen voor de extractie van genomisch DNA en de daarop volgende volgorde van de CAN1 gen, die kunnen zorgen voor mutaties spectrum van gegevens (met mutatie Surveyor, SoftGenetics). Base substituties (Trp + terugslaan) Stammen met trp1-289 bevatten, een amber mutatie (C403T) in de TRP1 coderende sequentie. Meting van de frequentie van trp1-289 tot Trp + reversion 15 maakt de schatting van de basis vervangen tarief tijdens de gist chronologische veroudering. Frame-shift mutaties De Leie – stam EH150 (Mata, lys2ΔBglII, trp1-Δ, his3-Δ200, ura3-52, ade2-1o) herbergt een lys2ΔBgl II mutatie die werd gebouwd door het invoegen van vier nucleotiden op een Bgl II restrictie-enzym site in de LYS2 gen te creëren . De resulterende +4 verschuiving in de open reading frame resulteert in auxotrofie voor lysine die kan worden omgekeerd door kleine insertie / deletie mutaties 16-17. Bruto chromosomale herschikkingen (GCRs) Voor het detecteren van bruto chromosomale herschikkingen (GCRs) genereerden wij een mutante stam, waarin HXT13 (YEL069), dat codeert voor een zeer redundant hexose transporter, werd verstoord door een URA3 cassette 18. HXT13 ligt 7,5 kb telomere te CAN1 op chromosoom V. Mutaties in zowel CAN1 en URA3 genen maken cellen weerstand tegen L-Canavanine en 5-fluoroorotic zuur (5FOA), respectievelijk. Gezien de lage frequentie van punt mutaties die optreden in beide genen, de analyse van de Can r 5FOA r frequentie geeft een schatting van GCRs die resulteren in het verlies van beide genen. Homologe recombinatie en homeologous Voor het bewaken van het niveau van de homologe (100%) en homeologous recombinatie (91%) tijdens de chronologische veroudering, we gegenereerd mutanten waarin gelineariseerde plasmiden (HIS3:: intron-IR-URA3) dragen ofwel 100% homoloog inverted repeats (IRS) (pSR406 ) of 91% homeologous IRS (pSR407) aan de HIS3 locus 19. Recombinatie tussen de IRS kan de expressie van functionele HIS3 eiwit. Parallel met de normale levensvatbaarheid assay (zoals hierboven beschreven), wordt een geschikte hoeveelheid van cellen van de veroudering cultuur, voor Can r mutatie, te beginnen met ~ 2×10 7 cellen (200 ul van dag 3 cultuur); voor Trp + reversion, te beginnen met ~ 10 8 cellen (500-1000 ul van dag 3 cultuur); voor de Lys + frame-shift mutatie, te beginnen met ~ 10 8 cellen (500-1000 ul van dag 3 cultuur); voor GCRs, start met een 2-3×10 8 cellen (2-3 ml van dag 3 cultuur); voor homologe recombinatie en homeologous, begin bij en tilde; 5×10 7 cellen (200-500 ul van dag 3 cultuur); Pas de plating bedrag volgens de daling van de totale levensvatbaarheid en de toename van de mutatie frequentie tijdens chronologische veroudering (tabel 2). In het geval van stammen met hypermutator fenotype (zoals die met gebreken bij DNA-herstel), dienovereenkomstig te verminderen de bemonstering bedrag. Pellet van de cellen met bench-top centrifuge machine (6000 rpm gedurende 5 minuten). Resuspendeer cellen in 1 ml geautoclaveerd water, en pellet de cellen weer. Resuspendeer cel pellet in 100 ui van het water. Plaat cellen, voor Can r mutatie, op arginine-dropout synthetisch compleet medium platen (SDC-Arg, aangevuld met 60 ng / ml L-Canavanine sulfaat); voor Trp + reversion, op tryptofaan-dropout platen (SDC-Trp); voor de Lys + frame-shift mutatie, op lysine-dropout platen (SDC-Lys); voor GCRs op arginine-dropout platen (SDC-Arg), aangevuld met 5FOA (1 mg / ml) en L-Canavanine sulfaat (60 ug / ml); voor homologe recombinatie en homeologous op histidine-dropout platen aangevuld met galactose (2%). Count CFU's na 3-4 dagen incubatie bij 30 ° C. De mutatie frequentie wordt genormaliseerd naar het aantal levensvatbare cellen. Aanvulling op de in situ levensvatbaarheid assay, leeftijd-afhankelijke Trp + reversion, Lys + frame-shift mutatie, recombinatie, of 'Can r kan ook worden bestudeerd in cellen jaar oud op de plaat. Plaat-cellen (~ 10 8 cellen / plaat) op Trp-, Lys-, His-uitval, of L-Canavanine synthetisch compleet medium platen (zoals hierboven beschreven). Om de twee dagen (of op het tijdstip van belang), de score van de nieuwe opkomende koloniën. Mutatie frequentie wordt geschat door het normaliseren van nieuwe opkomende koloniën aan het totale aantal levensvatbare cellen van het specifieke dag. 4. Translesie synthese (TLS) De leeftijd-afhankelijke mutatie frequentie te verhogen kan betekenen verhoogde macromolecuul schade, verminderde cellulaire bescherming / reparatie, en de toegenomen foutieve DNA herstel (zoals Polζ-afhankelijke translesie synthese, TLS) bij het ouder worden. Bijvoorbeeld, de lange levensduur sch9 Δ mutanten vertonen verhoogde expressie van SOD2, en verminderde de expressie van de foutgevoelige DNA-reparatie-enzym Rev.1 20. Hier beschrijven we een test te combineren beschadigde DNA template en hele nucleaire extract om de TLS te evalueren in vitro. Bereid kernextract zoals beschreven door Wang et al., 21;. Kwantificeren de eiwitconcentratie door BCA assay (Pierce). Voeg 0, 5, 10 of 20 ug van nucleaire extracten tot 50 ui (uiteindelijk volume) reacties met TLS buffer (20 mM HEPES, 7 mM MgCl2, 1 mM DTT, 25 mM NaCl, pH 7,8), 200 μMdNTPs en 100 nm 5'-32 P-gelabelde 12-mer primer (5'-TGG CGA TAC GGA-3 '), gegloeid om een 48-mer template met daarin DNA-schade van belang (5'-TCG ATA CTG GTA CTA ATG ATT AAC GAC TXA AGC ACG TCC GTA CCA TCG-3 ', waarin X is de aangetaste locatie, bijvoorbeeld abasic site, 8-oxo-G, etc.). Incubeer het mengsel bij 30 ° C gedurende 30 min, beëindigen de reactie met de toevoeging van 2,5 ul EDTA (20 mm) en 2 pl proteinase K (10 mg / ml). Zuiver DNA met fenol extractie en ethanol precipitatie. Resuspendeer DNA in 50 ul van gel laadbuffer (98% formamide, 20 mM EDTA, en kleurstof). Het oplossen van de translesie synthese producten op 19% polyacrylamide gels. Kwantificeren van de TLS met phosphorimaging (figuur 1). 5. Representatieve resultaten We meestal de CFU tellingen waren vroeger op dag 3 als 100 procent overleving in de standaard vloeistof CLS-analyse. Het percentage overleving in de volgende dagen kan worden uitgerust met het gemiddelde (50% overleving) te berekenen en maximum (10% overleving) levensduur 12. Levensduur resultaten van de in situ levensvatbaarheid test zijn over het algemeen overeen met die welke met behulp van de vloeistof CLS-test, maar met verminderde de gemiddelde levensduur, die deels te wijten aan het feit dat cellen voortdurend worden blootgesteld aan voedingsstoffen. Aanwezigheid van glucose remt de activiteit van cellulaire bescherming toonde door de verminderde transactivatie van stress respons transcriptiefactor, zoals Msn2 / 4 en Gis1 12. Leeftijdsafhankelijke mutatie frequentie is sterk afhankelijk van de stam achtergrond, genetische manipulatie, kweekomstandigheden, en leeftijd. Tabel 2 toont de typische resultaten die zijn verkregen in het wild-type stam (DBY746). Bestanddeel g / L D-glucose 20 Ammoniumsulfaat 5 Basis van stikstof (-AS/-AA) 1.8 NaH2PO4 1.4 mg / L Adenine 80 L-Arginine 40 L-Asparaginezuur 100 L-Glutaminezuur 100 L-Histidine 80 L-Isoleucine 60 L-Leucine 120 L-Lysine 60 L-Methionine 80 L-Fenylalanine 60 L-Serine 400 L-Threonine 200 L-Tryptofaan 80 L-Tyrosine 40 L-Valine 150 Uracil 80 Tabel 1. Synthetic volledige glucose-medium, SDC (aanpassen aan pH 6.0 met NaOH). 4-voudige overmaat van histidine, zijn leucine, tryptofaan, en uracil opgenomen om het auxotrofie van de DBY746 stam te compenseren. Dag 3 (gemiddelde ± SEM) Tot (gedurende het ouder worden) Kunnen r 1.76 ± 0.12 x10 -6 6-8 x10 -6 Trp + reversion 6.60 ± 1.70 x10 -8 1,60 x10 -6 Lys + frame-shift mutatie 3.00 ± 0.78 x10 -8 0,70 x10 -6 GCRs 0.62 ± 0.10 x10 -8 0,30 x10 -6 Homologe recombinatie 5.55 ± 2.74 x10 -6 27,00 x10 -6 Homeologous recombinatie 0.12 ± 0.04 x10 -6 0,48 x10 -6 Tabel 2. Typische mutatie frequenties van wild-type cellen (DBY746) tijdens de chronologische veroudering. Figuur 1. Resultaat van translesie synthese (TLS) 20. Nucleaire extracten van 3 dagen oud, stationaire fase wild-type (DBY746) en sch9 Δ mutant cellen werden geïncubeerd met onbeschadigde of abasic site-DNA bevat sjablonen voor 30 min bij 30 ° C. TLS producten worden aangeduid met solide (met onbeschadigde template) of gestippeld (met beschadigde sjabloon) lijnen. Er was geen translesie synthese waargenomen in nucleaire uittreksel uit sch9 Δ mutanten. Gratis primers worden aangeduid met de open pijl.