Summary

تطوير نموذج من جانب واحد lesioned الفأر 6 OHDA من مرض باركنسون

Published: February 14, 2012
doi:

Summary

يوصف بروتوكول للأداء من جانب واحد 6 OHDA الآفات من حزمة الدماغ الأمامي وسطي في الفئران. هذا الأسلوب لديه معدل وفيات منخفضة (13.3٪) مع 89٪ من الحيوانات على قيد الحياة يظهر> فقدان 95٪ من الدوبامين الجسم المخطط و90،63 -4،02٪ ± التحيز التناوب ipsiversive نحو الجانب من الآفة.

Abstract

أثبت lesioned من جانب واحد 6 hyroxydopamine (6-OHDA)-lesioned نموذج الفئران من مرض الشلل الرعاش (PD) أنها لا تقدر بثمن في تعزيز فهمنا للآليات التي تقوم عليها أعراض الشلل الارتعاشي، لأنه يلخص التغيرات التي طرأت على الدوائر العقد القاعدية والصيدلة التي لوحظت في مرضى الشلل الارتعاشي 1-4. ومع ذلك، فإن التغييرات الدقيقة الخلوية والجزيئية التي تحدث في القشرة الجسم المخطط نقاط الاشتباك العصبي للمسارات الانتاج في المخطط، والذي هو منطقة مدخلا رئيسيا من العقد القاعدية لا تزال بعيدة المنال، ويعتقد أن هذا الموقع حيث التشوهات المرضية الكامنة وراء أعراض باركنسونية تنشأ 3 (5).

في المشتريات، وفهم الآليات الكامنة وراء التغيرات في العقد القاعدية انحطاط الدوائر التالية من المسار nigro-الجسم المخطط قد تقدمت بشكل كبير من خلال تطوير كروموسوم اصطناعي البكتيرية (BAC) الفئران الإفراط في التعبير عن البروتينات الفلورية الخضراء مدفوعا تعزيز مما يسمح لهم درس في العزلة:؛: مسارات محددة للناتج اثنين الجسم المخطط (eGFP-D2 وeGFP A2A-طريقا غير مباشر eGFP-D1 طريق مباشر) روبية. على سبيل المثال، واشارت دراسات حديثة أن هناك تغيرات باثولوجية في اللدونة متشابك في الفئران باركنسونية 9،10. ومع ذلك، فإن هذه الدراسات تستخدم الفئران الأحداث، ونماذج من الشلل الرعاش الحاد. ومن غير الواضح ما إذا كانت التغييرات وصفها في الفئران البالغين مع آفات 6 OHDA مستقر تحدث أيضا في هذه النماذج. وقد حاولت جماعات أخرى لتوليد مستقرة من جانب واحد lesioned فأر بالغ 6-PD OHDA نموذج من قبل lesioning حزمة الدماغ المقدم الإنسية (MFB)، للأسف، كان معدل وفيات الأطفال في هذه الدراسة عالية جدا، مع 14٪ فقط على قيد الحياة لعملية جراحية لمدة 21 أيام أو أكثر 11. الدراسات الحديثة قد ولدت داخل nigral الآفات مع كل من معدل وفيات منخفض وكان> فقدان 80٪ من الخلايا العصبية الدوبامين، وحرية التعبير ولكن من خلل الحركة التي يسببها لام دوبا 11،12،13،14 متغيرفي هذه الدراسات. آخر نموذج الفأر راسخة من PD هو الفأر MPTP lesioned-15. في حين أثبت هذا النموذج مفيدة في تقييم وكلاء اعصاب محتمل 16، هو أقل ملاءمة لفهم الآليات التي يقوم عليها أعراض من المشتريات، وهذا النموذج غالبا ما يفشل للحث على العجز الحركي، ويظهر تفاوت كبير في مدى انتشار آفة 17 و 18 .

هنا وضعنا مستقر من جانب واحد الفأر نموذج 6-OHDA lesioned من المشتريات من قبل الادارة مباشرة من OHDA-6 في MFB، والذي يسبب باستمرار> فقدان 95٪ من الجسم المخطط الدوبامين (مقاسا HPLC)، فضلا عن إنتاج السلوكية لاحظ الخلل في توصيفه جيدا من جانب واحد نموذج الفئران 6-OHDA lesioned من المشتريات. وهذا نموذج الفأر وضعت حديثا من PD تثبت أداة قيمة لفهم الآليات التي يقوم عليها جيل من أعراض الشلل الارتعاشي.

Protocol

1. الإسكان وإعداد من الفئران الحفاظ على مستعمرة من الصبغي الاصطناعي البكتيري (BAC) مدفوعة الفئران المعدلة وراثيا 8 (المسخ للمصادر والفأر مركز (MMRRC) FVB في دورة 12:12 ضوء الظلام ساعة مع حرية الوصول إلى الغذاء والماء. هذه ?…

Discussion

هذا البروتوكول وصفا لطريقة لتوليد مستقرة من جانب واحد الفأر نموذج 6-OHDA lesioned من مرض باركنسون، والذي هو تكرار للغاية، مع نسبة نجاح عالية الآفة، ومعدل وفيات منخفض. ويمكن لنجاح عملية جراحية آفة 6 OHDA يقدر بسهولة عن طريق قياس السلوك العفوي مع التناوب> تناوب ipsiversive 70٪ يدل عل…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل وزارة الشؤون الخارجية والتجارة الدولية (حكومة كندا)، وجامعة تورنتو كونوت الصندوق، ومؤسسة الكندي للابتكار، NSERC، ومؤسسة Krembil وتثق به لعلاج الشلل الرعاش.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
desipramine HCl Sigma-Aldrich, Oakville, ON, Canada D125 25mg/kg
pargyline HCl Sigma-Aldrich, Oakville, ON, Canada P8013 5mg/kg
6-OHDA HBr Sigma-Aldrich, Oakville, ON, Canada H116 3mg / mouse
stereotaxic Frame Kopf Instruments, Tujunga, CA, USA Model 900  
mouse ear cups Kopf Instruments, Tujunga, CA, USA Model 921 Zygoma Ear Cups  
mouse incisor bar Kopf Instruments, Tujunga, CA, USA Model 923B  
mouse anaesthesia mask Kopf Instruments, Tujunga, CA, USA Model 923B  
priming kit (containing 250ml syringe) Hamilton Company, Reno, NV, USA PRMKIT 81120  
RN compression fitting kit (1 mm) Hamilton Company, Reno, NV, USA 55750-01    
PEEK tubing from RN compression fitting kit< (1/16th inch) Hamilton Company, Reno, NV, USA 55751-01  
dual small hub RN Coupler Hamilton Company, Reno, NV, USA 55752-01    
luer to small hub RN adaptor Hamilton Company, Reno, NV, USA 55753-01    
1ml 25S syringe model 7001KH Hamilton Company, Reno, NV, USA 80100  
*33G removable needle (RN) pack of 6. . Custom 1 inch with 45<° bevel Hamilton Company, Reno, NV, USA 7803-05  
Scissors Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada. 14084-08  
Scalpel Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada 10003-12  
Scalpel blades Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada 10035-20  
Forcep Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada 11608-15  
Hemostats Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada. 13004-14  
Isoflurane Abbot 02241315 2-3%
Suters (Vicryl 4.0) Syneture SS-683  
Steriliser Fine Science Tools, Vancouver, BC, Canada 18000-45  
Infusion Pump Harvard Apparatus PhD 22/2000  
Needles (27G) Becton Dickinson 305109  
Needles (25G) Becton Dickinson 305127  
Syringes (1ml) BD syringe 309692  
Anaesthesia trolley LEI medical M2000  
Baytril CDMV, St. hyacinthe, QC 102207  
Lidocaine CDMV, St. hyacinthe, QC 3914  
Betadine solution CDMV, St. hyacinthe, QC 19955  

References

  1. Costall, B., Naylor, R. J., Pycock, C. Non-specific supersensitivity of striatal dopamine receptors after 6-hydroxydopamine lesion of the nigrostriatal pathway. Eur. J. Pharmacol. 35, 276-283 (1976).
  2. Maneuf, Y. P., Mitchell, I. J., Crossman, A. R., Brotchie, J. M. On the role of enkephalin cotransmission in the GABAergic striatal efferents to the globus pallidus. Exp. Neurol. 125, 65-71 (1994).
  3. Robertson, G. S., Robertson, H. A. Evidence that L-dopa-induced rotational behavior is dependent on both striatal and nigral mechanisms. J. Neurosci. 9, 3326-3331 (1989).
  4. Ungerstedt, U., Arbuthnott, G. W. Quantitative recording of rotational behavior in rats after 6-hydroxy-dopamine lesions of the nigrostriatal dopamine system. Brain Res. 24, 485-493 (1970).
  5. Brotchie, J. M. Novel approaches to the symptomatic treatment of parkinsonian syndromes: alternatives and adjuncts to dopamine-replacement. Curr. Opin. Neurol. 10, 340-345 (1997).
  6. Besson, M. J., Graybiel, A. M., Nastuk, M. A. [3H]SCH 23390 binding to D1 dopamine receptors in the basal ganglia of the cat and primate: delineation of striosomal compartments and pallidal and nigral subdivisions. Neuroscience. 26, 101-119 (1988).
  7. Gerfen, C. R. D1 and D2 dopamine receptor-regulated gene expression of striatonigral and striatopallidal neurons. Science. 250, 1429-1432 (1990).
  8. Schiffmann, S. N., Jacobs, O., Vanderhaeghen, J. J. Striatal restricted adenosine A2 receptor (RDC8) is expressed by enkephalin but not by substance P neurons: an in situ hybridization histochemistry study. J. Neurochem. 57, 1062-1067 (1991).
  9. Hutchison, W. D. Differential neuronal activity in segments of globus pallidus in Parkinson’s disease patients. Neuroreport. 5, 1533-1537 (1994).
  10. Pan, H. S., Penney, J. B., Young, A. B. Gamma-aminobutyric acid and benzodiazepine receptor changes induced by unilateral 6-hydroxydopamine lesions of the medial forebrain bundle. J. Neurochem. 45, 1396-1404 (1985).
  11. Pan, H. S., Walters, J. R. Unilateral lesion of the nigrostriatal pathway decreases the firing rate and alters the firing pattern of globus pallidus neurons in the rat. Synapse. 2, 650-656 (1988).
  12. Gong, S. A gene expression atlas of the central nervous system based on bacterial artificial chromosomes. Nature. 425, 917-925 (2003).
  13. Kreitzer, A. C., Malenka, R. C. Endocannabinoid-mediated rescue of striatal LTD and motor deficits in Parkinson’s disease models. Nature. 445, 643-647 (2007).
  14. Shen, W., Flajolet, M., Greengard, P., Surmeier, D. J. Dichotomous dopaminergic control of striatal synaptic plasticity. Science. 321, 848-851 (2008).
  15. Lundblad, M., Picconi, B., Lindgren, H., Cenci, M. A. A model of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned mice: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiol. Dis. 16, 110-123 (2004).
  16. Grealish, S., Mattsson, B., Draxler, P., Bjorklund, A. Characterisation of behavioural and neurodegenerative changes induced by intranigral 6-hydroxydopamine lesions in a mouse model of Parkinson’s disease. Eur. J. Neurosci. 31, 2266-2278 (2010).
  17. Dauer, W., Przedborski, S. Parkinson’s disease: mechanisms and models. Neuron. 39, 889-909 (2003).
  18. Francardo, V. Impact of the lesion procedure on the profiles of motor impairment and molecular responsiveness to L-DOPA in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. Neurobiol. Dis. 42, 327-340 (2011).
  19. Jakowec, M. W., Petzinger, G. M. 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-lesioned model of parkinson’s disease, with emphasis on mice and nonhuman primates. Comp. Med. 54, 497-513 (2004).
  20. Visanji, N. P., Brotchie, J. M. MPTP-Induced Models of Parkinson’s Disease in Mice and Non-Human Primates. Curr. Protoc. Pharmacol. Chapter 5, 42-42 (2005).
  21. Sedelis, M., Schwarting, R. K., Huston, J. P. Behavioral phenotyping of the MPTP mouse model of Parkinson’s disease. Behav. Brain Res. 125, 109-125 (2001).
  22. Schallert, T., Fleming, S. M., Leasure, J. L., Tillerson, J. L., Bland, S. T. CNS plasticity and assessment of forelimb sensorimotor outcome in unilateral rat models of stroke, cortical ablation, parkinsonism and spinal cord injury. Neuropharmacology. 39, 777-787 (2000).
  23. Paul, M. L., Currie, R. W., Robertson, H. A. Priming of a D1 dopamine receptor behavioural response is dissociated from striatal immediate-early gene activity. Neuroscience. 66, 347-359 (1995).
  24. Breese, G. R., Traylor, T. D. Effect of 6-hydroxydopamine on brain norepinephrine and dopamine evidence for selective degeneration of catecholamine neurons. J. Pharmacol Exp. Ther. 174, 413-420 (1970).
  25. Breese, G. R., Chase, T. N., Kopin, I. J. Metabolism of tyramine-3H and octopamine-3H by rat brain. Biochem. Pharmacol. 18, 863-869 (1969).
  26. Frankin, K. B. J., Paxinos, G. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2008).
  27. Cornell-Bell, A. H., Finkbeiner, S. M., Cooper, M. S., Smith, S. J. Glutamate induces calcium waves in cultured astrocytes: long-range glial signaling. Science. 247, 470-473 (1990).
  28. Iancu, R., Mohapel, P., Brundin, P., Paul, G. Behavioral characterization of a unilateral 6-OHDA-lesion model of Parkinson’s disease in mice. Behav. Brain Res. 162, 1-10 (2005).
  29. Tan, Y., Williams, E. A., Lancia, A. J., Zahm, D. S. On the altered expression of tyrosine hydroxylase and calbindin-D 28kD immunoreactivities and viability of neurons in the ventral tegmental area of Tsai following injections of 6-hydroxydopamine in the medial forebrain bundle in the rat. Brain Res. 869, 56-68 (2000).
  30. Thiele, S. L. Generation of a model of L-DOPA-induced dyskinesia in two different mouse strains. J. Neurosci. Methods. 197, 193-208 (2011).
  31. Henry, B., Crossman, A. R., Brotchie, J. M. Characterization of a rodent model in which to investigate the molecular and cellular mechanisms underlying the pathophysiology of L-dopa-induced dyskinesia. Adv. Neurol. 78, 53-61 (1998).
check_url/3234?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Thiele, S. L., Warre, R., Nash, J. E. Development of a Unilaterally-lesioned 6-OHDA Mouse Model of Parkinson’s Disease. J. Vis. Exp. (60), e3234, doi:10.3791/3234 (2012).

View Video