장 장간막의 동맥 계단식으로 자궁 조직의 자동 이식에 의한 마우스 및 쥐에 endometriosis의 수술 유도의 설명입니다.
Endometriosis 누구의 병인 알려지지 않은 남아 만성, 고통스러운 질병입니다. 또한, endometriosis의 치료 복강경 병변의 제거, 및 / 또는 통증과 불임 현상 만성 제약 관리를 요구할 수 있습니다. endometriosis와 관련된 비용은 미국 1 연간 22,000,000,000 달러로 추산되었습니다. 이 수수께끼의 질병을 기본 메커니즘에 대한 우리의 이해를 더하기 위해 동물 모델은 고용되었습니다. 영장류는 자발적으로 endometriosis를 개발하기 때문에 영장류 모델은 가장 밀접하게 여성 질환과 유사. 설치류 모델은, 그러나, 효과적인 비용과 2 쉽게 사용할 수 있습니다. 우리가 여기서 설명하는 모델은 장의 장간막 (그림 1) 자궁 조직의 autologous 전송을 포함하고 먼저 쥐 3 개발하고 나중에 마우스 4 전송되었습니다. 수술 유도 endometriosis의 autologous 설치류 모델의 목적은 모방하는 것입니다여성의 질병. 우리와 다른 이전에 변경 유전자 발현 패턴이 마우스 또는 질병 5,6있는 여성에서 관찰 쥐의 미러에서 endometriotic 병변에서 관찰하는 것으로 나타났습니다. 마우스에서 수술을 집도할 중 하나 장점은 가능한 유전자 변형 마우스 종자의 풍부한은 설치 및 endometriosis의 성장에 중요한 특정 구성 요소의 역할을 결정하는 연구자 도움 수있다는 것입니다. excised 인간 자궁 내막 조각이 immunocompromised 생쥐의 복막을 소개하는 대안 모델도 널리 사용되고 있지만 endometriosis 2,7에서 중요한 것으로 생각되는 정상적인 면역 체계의 부족에 의해 제한됩니다. 중요한 것은 수술 유도 endometriosis의 마우스 모델은 면역 체계 8, 9,10 호르몬과 환경 요인 11,12가 fert에 endometriosis뿐만 아니라 endometriosis의 효과에 미치는 영향 연구하는 데 사용되었습니다 다재 다능한 모델입니다ility 13 고통 14.
생쥐에서 endometriosis의 수술 유도를 수행하는 동안 주목한다 몇 가지 중요한 매개 변수가 있습니다. 첫째, endometriosis는 에스 트로겐에 의존 질병 등이 수술로 손상 동물이나 또는 estrogens에 20 보충 ovariectomized 동물 수행해야합니다. 둘째, 동맥 폭포로 자궁 biopsies를 suturing 것은 극도의주의 수행해야합니다. 우리는 하나 두 비교적 느슨한 매듭을 사용하면 변의와 후속 조직 괴사 및 동물 죽음…
The authors have nothing to disclose.
최적화에서 지원 크리스 Kassotis이 원고의 중요한 검토 오드리 베일리와 박사 스콧 Korte, 요셉 Beeman, 앨리슨 Curfman, 폴 Kimball, 브리짓 Neibreggue, 야곱 Redel, 에이미 Schroder, Maija 스테인 버그, 그리고 스테이시 Winkeler 특별 감사 우리 연구실이 모델. 자금은 임상 Biodetectives 교육 그랜트 (NIH T90) (KEP), 미주리 생명 과학 대학 학부 연구 기회 프로그램, MU 연구위원회, 연구위원회 MU 부여와 NIH R21HD056441 (SCN)에 의해 제공되었다.
Name of the reagent/equipment | Company | Catalogue number |
Wax pencil | Fisher | NC9954135 |
Glass slide | Fisher | 12-550-433 |
Eyedropper | Fisher | S79383 |
Standard light microscope for evaluating vaginal cytology smears | ||
Buprenorphine HCL c3 (CARJET) 10X1ml | Butler Animal Health Supply | 022891 |
Sterile phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 14040-117 |
10,000U/ml Penicillin, 10,000μg/ml Streptomycin in 0.85% NaCl | Hyclone | SV30010 |
Isoflurane | Abbott Animal Health | 05260-05 |
Isoflurane non-rebreathing anesthetic system | ||
Recirculating hot water heating pad | ||
30 ml syringe sheath | Fisher | 14-823-16G |
Powder free sterile gloves | Fisherbrand | 19020558 |
Ophthalmic ointment | Major Pharmaceuticals | 10033691 |
Small electrical clippers | Wahl | 9861-600 |
Chlorhexidine scrub | Fisher | NC9863042 |
70% Ethanol | ||
Polylined sterile field | Busse Hospital Disposables | 696 |
Size 3 scalpel | Fisher | 22-079-657 |
Number 10 scalpel blades | Fisher | 22-079-681 |
Small surgical scissors | Roboz | RS-5850 |
Small serrated semi-curved forceps | Roboz | RS-5135 |
5-0 black braided silk suture | Ethicon | K870H |
Sterilized pyrex glass Petri dishes | Corning | 70160-101 |
2 mm biopsy punch | Miltex | 33-31 |
Sterile gauze | Kendall | 1806 |
6-0 black monofilament ethilon nylon suture | Ethicon | 697G |
Needle drivers (optional) | World Precision Instruments | 500023 |
5-0 undyed braided coated vicryl suture | Ethicon | J490G |
9mm Autoclip wound clips | Becton Dickinson | 427631 |
Autoclip applier & remover | Becton Dickinson | 427630 |
23G needle | Becton Dickinson | 305193 |
1cc syringe | Becton Dickson | 301025 |
5X magnifying glass stand (optional) | Fisher | 14-648-23 |
10% Buffered formalin | Fisher | SF100-4 |
Calipers | Roboz | RS-6466 |
Processing/embedding cassettes | Fisher | 15-197-700A |
Biopsy foam pads | Fisher | 22-038-222 |
RNAqueous RNA isolation kit | Ambion | AM1912 |
Liquid nitrogen | ||
Snap cap microcentrifuge flat top tube | Fisher | 02-681-240 |
Ketamine (optional) | Simga | K4138 |
Domitor (medetomidine hydrochloride) (optional) | Tocris | 2023 |
Antisedan (atipamezole) (optional) | Sigma | A9611 |